Summary

小鼠牙龈细胞的分离,处理和分析

Published: July 02, 2013
doi:

Summary

本研究中描述了一种有效的技术,用于隔离和处理,以产生一个单一的细胞培养的小鼠口腔牙龈组织。得到的细胞可进一步用于流式细胞分析和分子水平的研究。

Abstract

我们已经开发出一种技术,能够精确地隔离和处理流式细胞术及分子生物学研究的小鼠牙龈组织。牙龈是一个独特而重要的组织来研究,因为它是免疫机制参与宿主的免疫反应,可能会导致牙周疾病对口腔生物膜。此外,靠近牙龈牙槽骨组织,也能学习骨重塑炎症条件下。我们的方法会产生大量的免疫细胞,允许甚至罕见的细胞群,如朗格汉斯细胞和调节性T细胞的分析,为大家展示了以前1。用人小鼠研究参与齿槽骨丧失在牙周疾病的局部免疫反应是有利的,因为各种免疫学和实验工具的可用性。然而,由于其体积小,小鼠牙龈相对交通不便,许多研究避免氏检查关键组织。在这项工作中所描述的方法可促进牙龈的分析,希望将增加我们在牙周疾病的口服免疫系统,它的作用低估。

Introduction

牙龈是宫颈部的牙齿周围的软组织和覆盖肺泡的过程( 图1)。齿龈是一种咀嚼粘膜,粘膜上皮和结缔组织(也被称为粘膜下层或固有层),并且可以进一步分离成不同的。牙龈和牙齿相邻的解剖结构,使细菌居住和发展斑块(生物膜)局部免疫系统,不断挑战。其结果是,炎症反应的发展的牙龈,这在某些情况下变得有破坏性的-这种情况称为牙周疾病2。基本上可分为牙龈炎和牙周炎,牙斑引起的牙周病理学。牙龈炎局限于牙龈的局部炎症反应是一个可逆的条件。牙周炎,在另一方面,是一种不可逆的破坏过程,其中所述附接装置(牙槽骨,牙周韧带,牙骨质和牙龈)被摧毁3。

牙龈提出服务效应和感性的网站,在牙周疾病4。人类的研究表明,在应对牙菌斑,免疫效应细胞和分子动态渗透或出发的牙龈5-7。这项活动被证明发挥了重要作用,在牙周破坏8,9。鉴于这些研究提供了有价值的信息,关于这个病理过程,与人体组织所产生的数据具有重大的伦理,技术和实验的局限性。开发实验模型允许因果experimentations通过采用转基因小鼠体内干预10。因此,我们的知识在牙周疾病所涉及的机制大大增加,在过去的二十年。即便如此,由于牙周疾病的复杂性,有正在进行的辩论,关于促进组织破坏局部免疫反应的性质。还有一个在我们的理解缺乏牙龈牙周疾病的中枢免疫细胞的功能。因此,必须研究病理在靶组织的疾病,牙龈炎症发生的事件。

Protocol

提前准备: PBS + 2%FCS PBS + 2%FCS与胶原酶II型和1毫克/毫升的DNA酶I型(1毫升,每样2毫克/​​毫升) 消毒手术器械 0.5 M EDTA溶液 1。上牙龈切除技术安乐死小鼠使用批准IACUC指导。 切口腔两侧脸颊和下颌支与锐/钝直剪刀。 拉下颌骨。 切割软硬组织在一个假想的线1毫米标准剪刀三分之二磨牙后面。直接剪刀垂直于…

Representative Results

作为对牙龈细胞的流式细胞仪分析。汇集从2小鼠牙龈细胞运行在一个LSR II流式细胞仪,使用FlowJo软件分析表明牙龈细胞的分布图3A从一个侧面散射(SSC)与前向散射(FSC)情节天真的小鼠。选通策略,以确定(一)淋巴细胞(ⅱ)单核细胞/树突状细胞,粒细胞及(iii)表示。比较而言,我们还提出了流式细胞仪示出了牙龈细胞纯化P.牙龈卟啉单胞菌感染小鼠灌胃后21天在一个设…

Discussion

颌骨牙龈组织从一个单一的鼠标得到足够的用于分析的T和B淋巴细胞的子种群,以及他们的能力,表达细胞外和细胞内的分子,如我们之前描述1。然而,如果还罕见的细胞种群(例如区议会),它是建议到池组织从2-3只小鼠。值得注意的是,如果优选的话,它有可能剥离腭和牙龈组织,然后切除牙龈(修改步骤1.8-1.9)。还应该提到,下颌牙龈,以及可以收集的是,它的隔离是更复杂的,?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

该研究得到了补助,以色列科学基金会(第1418/11号)AHH(第1933/12号)AW,年轻的研究者(GIF年轻)的德国以色列基金会AHH,我博士希伯来大学哈达萨学校的牙科医学AHH​​和AW Cabakoff研究基金。

Materials

Comments (optional) Catalogue number Company Name of the reagent
CLS-2 Worthington Biochemical Corp. Collagenase Type II
DN25-1G SIGMA DNAse I
E6758-100G SIGMA EDTA
D8537 SIGMA Dulbecco’s PBS
Heat Inactivated 04-121-1 Biological Industries Fetal Bovine Serum
FPE-204-500 Jet Biofil Vacuum-Driven Filter
352052 BD Falcon 5 ml Polystyrene Round-Bottom Tube
93070 SPL Lifesciences Cell Strainer 70 μm
153066 NUNC Tissue Culture Dish 35×10 mm
554714 BD BD Cytofix/Cytoperm
Clone N418 117305 Biolegend Anti-mouse CD11c antibody
Clone 104 109819 Biolegend Anti-mouse CD45.2 antibody
Clone GK1.5 100413 Biolegend Anti-mouse CD4 antibody
Clone 53-6.7 100733 Biolegend Anti-mouse CD8a antibody
Clone 17A2 100214 Biolegend Anti-mouse CD3 antibody
Clone G8.8 118219 Biolegend Anti-mouse CD326 (Ep-CAM) antibody
Clone 929F3.01 DDX0362D Imgenex Anti-mouse CD207 (Langerin) antibody
Clone 39-10-8 115010 Biolegend Anti-mouse I-Ad (MHC-II) antobody
BD Biosciences LSR II Flow Cytometer
Tree Star FlowJo Software v 7.6.5

Referencias

  1. Arizon, M., et al. Langerhans cells down-regulate inflammation-driven alveolar bone loss. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 7043-7048 (2012).
  2. Listgarten, M. A. Pathogenesis of periodontitis. J. Clin. Periodontol. 13, 418-430 (1986).
  3. Kinane, D. F. Causation and pathogenesis of periodontal disease. Periodontol. 25, 8-20 (2000).
  4. Jotwani, R., et al. Mature dendritic cells infiltrate the T cell-rich region of oral mucosa in chronic periodontitis: in situ, in vivo, and in vitro studies. J. Immunol. 167, 4693-4700 (2001).
  5. Graves, D. T., et al. Interleukin-1 and tumor necrosis factor antagonists inhibit the progression of inflammatory cell infiltration toward alveolar bone in experimental periodontitis. J. Periodontol. 69, 1419-1425 (1998).
  6. Kabashima, H., Yoneda, M., Nagata, K., Hirofuji, T., Maeda, K. The presence of chemokine (MCP-1, MIP-1alpha, MIP-1beta, IP-10, RANTES)-positive cells and chemokine receptor (CCR5, CXCR3)-positive cells in inflamed human gingival tissues. Cytokine. 20, 70-77 (2002).
  7. Moughal, N. A., Adonogianaki, E., Kinane, D. F. Langerhans cell dynamics in human gingiva during experimentally induced inflammation. J. Biol. Buccale. 20, 163-167 (1992).
  8. Cochran, D. L. Inflammation and bone loss in periodontal disease. J. Periodontol. 79, 1569-1576 (2008).
  9. Taubman, M. A., Valverde, P., Han, X., Kawai, T. Immune response: the key to bone resorption in periodontal disease. J. Periodontol. 76, 2033-2041 (2005).
  10. Graves, D. T., Kang, J., Andriankaja, O., Wada, K., Rossa, C. Animal models to study host-bacteria interactions involved in periodontitis. Front Oral Biol. 15, 117-132 (2012).
check_url/es/50388?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Mizraji, G., Segev, H., Wilensky, A., Hovav, A. Isolation, Processing and Analysis of Murine Gingival Cells. J. Vis. Exp. (77), e50388, doi:10.3791/50388 (2013).

View Video