Kanser Hücre Invasion Uygulama ile Tümör Stromal mikroçevresinin Doku Mühendisliği
Summary
Doku mühendisliği fibroblast türevli doğal matris epitel hücre çoğalmasını ve farklılaşmasını destekleyen bir stromal alt-tabakayı üretmek için gelişmekte olan bir araçtır. Burada tümör hücre biyolojisi farklı stromal hücre tiplerinin etkisini değerlendirmek için bu yöntemi uygulayarak bir protokol sunulmuştur.
Abstract
Mezenkimal hücreler ile gömülü bir matriks üzerinde, epitel hücrelerinin 3 boyutlu Organotipik kültürler geniş epitelyal hücre farklılaşması ve işgali incelemek için kullanılır. I kolajen ve / veya Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkom hücrelerinden elde edilen matris geleneksel mezenkimal hücreler (genellikle fibroblastları) doldurulur içine matris ya da stromal mikro modellemek için alt-tabakalar olarak kullanılmıştır sıçan kuyruğu tip. Bu matrisler kullanılarak deneyler çok bilgilendirici olmakla birlikte, bu iddia edilebilir nedeniyle (örneğin tip I kolajen gibi) tek bir protein ya da temel zar bileşenlerinin ve bu tür fareden türetilen matriks olarak büyüme faktörleri (içeriği yüksek bir baskın varlığı sarkom hücreleri), bu alt-tabakalar en stromal hücreleri tarafından yapılan matris bileşime katkı yansıtmamaktadır. Bir tümör eğilimli, genetik kabarma bozukluğu (resesif distrofik olan hastalardan izole edilen primer dermal fibroblastlar tarafından üretilen ana matrisler incelemekepidermolisis bülloza), biz tümör hücre işgali incelemek için varolan yerli matris protokolü adapte var. Fibroblastlar kültürde uzun bir süre boyunca kendi matrisi üretmek üzere uyarılmaktadır. Bu yerli matrisi daha sonra kültür çanağı ayrılır ve tüm kokültürü hava-sıvı arayüzü yükseltilmektedir önce epitel hücreleri bunun üzerine tohumlanır. Hücresel farklılaşma ve / veya istila ardından zaman içinde değerlendirilebilir. Bu teknik, tek dezavantajı yerel matrisi üretmek için gereken zaman uzun süre olmak üzere, bir sentetik ya da yabancı bir matris için gerek kalmadan bir 3 boyutlu bir ortamda epitel-mezenkimal hücre etkileşiminin belirlenmesi olanağı sağlar. Burada tümör hücre istilasını inhibe etmek için fibroblastlar tarafından ifade edilen tek bir molekülün yeteneği, tip kolajen VII, değerlendirmek için bu tekniğin uygulanmasını tarif eder.
Introduction
3 boyutlu doku kültüründe biyo materyalin kullanılması 2B yapışma ve bir plastik alt-tabaka ile bir değinmeyecek daha fazla bir in vivo ortamda daha fazla benzer fizyolojik koşullar altında laboratuarda hücre davranışını incelemek için araştırmacılar sağladı. Özellikle, büyük adımlar ileriye hava-sıvı arayüzü 1-4 3D kültür yöntemlerinin benimsenmesi ile tabakalı epitel modelleme yapılmıştır. Bu tür teknikler sadakatle keratinosit farklılaşması ve bu süreçleri inceleyen araştırmacılar için daha fazla esneklik ve sadakat sağlayarak tümör hücresi istilasını taklit. Stromal ortamı taklit etmek için biyo-malzeme alt-tabaka seçimi temel olarak tip I kollajenin, Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkom matris ve de-epidermized dermişin kullanımı dahil oldu. Örneğin, kanser ile ilgili fibroblastlar stromal-epitelial etkileşimleri 6,7 ile kanser istilası 5, başlatma ve progresyon doğru katkıda gösterilmiştir when, alt tabakalar yetiştirilir.
Deride stromal çevreyi taklit için altın standart, bu tür teknikler kullanılarak en büyük ve en çok çalışılan tabakalı epitel, insan dermis (DED) de-epidermized edilmesi kabul edilir. DED hazırlanması insan kadavra derisi 3,4 ikinci tripsinizasyon veya fiziksel ayrışması ile epidermisin kaldırılmasını içerir. Ancak, bu tür cilt için erişim klinik kurumları ile ilişkili olmayan laboratuarlar için çok zor olabilir, ve hastalıklı dermis elde yakınında mümkün değildir. Bir alternatif olarak, laboratuarlar sık I kollajen (sıçan kuyrukları izole) ve / veya Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkomu matris tipi bir arada kullanın.
Bu kollajen 8 Nageotte tarafından 1927 yılında keşif kolayca asetik asit ve tuz çökelmesini kullanılarak izole edilebilir sonra, doku kültürü için uygulanması, daha sonra Huzel öncüleridirla ve arkadaşları 9. Kolajen kaplama Ehrmann ve Gey'de 9 tarafından sorgulanan olarak 29 suşları ve doku eksplantlarında hücre kültürü için cama göre daha üstün olduğu kanıtlanmıştır. Şu anda, doku kültüründe kullanılan kolajen önemli bir tipi, fare kuyruk tendon izole edilir ve genellikle ticari kaynaklardan satın alınır. Bununla birlikte, alt-tabaka sadık tekrarlama için dezavantajı, fare kuyruk kolajeni insan kolajen, tür I ve III kollajen ana bileşenler olarak mevcut olan insan dermiş, özdeş değildir ve izole edilmiş fare kuyruk kolajeni her zaman bölünmüş olmasıdır.
Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkomu matris kültüre Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkoma hücreleri 10 tarafından salgılanan jelatinimsi bir protein karışımıdır. Ana bileşen laminin, tip IV kolajen, heparin sülfat proteoglikan, Entactin ve nidogen ve bu proteinlerin kesin oranları partiden partiye değişecektir. Kenara yapısal Proproteinlerden, bu matris, aynı zamanda, bir büyüme faktörü β, epidermal büyüme faktörü, insüline benzer büyüme faktörü, 1 sığır fibroblast büyüme faktörü ve hücre davranışını değiştirecek 11,12 trombosit türevli transforme edici büyüme faktörü gibi büyüme faktörlerinin önemli düzeyde içerir. Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkom matris sırf karmaşıklığı dönük, 1.851 proteinlerin toplam yeni proteomik çalışmada 13 tespit edilmiştir. Yorumlanması ve bunun 11 kullanımı ile, farklı deneyler karşılaştırırken Bu matrisin zengin ve karmaşık doğası ışığında, dikkatli tavsiye edilmiştir.
Bizim laboratuvarları genetik deri hastalıkları, kutanöz skuamöz hücreli karsinom (CSCC) 14 gelişmekte olan bir yatkınlığı olan özellikle bir ilgi var. Resesif distrofık epidermoliz bullosa (RDEB), COL7A1 gen mutasyonu germline ile ciddi bir kabarma hastalık durumunda <s> 15-17 kadar, biz bu hastalarda dermal mikroçevresinin 18 teşvik tümör olduğunu tespit ettik. Bu çalışmanın seyri sırasında kolajen ile I / Engelbreth-Holm-Swarm fare sarkomu matris gömülü ve hücrelerin kendi, yerli matris değerlendirilmesi yollarını araştırmıştır dermal fibroblast özellikleri teşvik tümörü değerlendirmek için koyamadık. Bunu başarmak için, biz insan cildi üzerinde çalışan 19,20 Eşdeğer Lucie Germain laboratuarından bir önceki tekniği değiştirilmiş. Germain teknik, sentetik ya da kadavra iskele yokluğunda primer insan keratinosit ve fibroblast hücreleri kullanılarak iyi organize bazal membran ile insan derisinin yeniden başardı.
Bu yazıda kutanöz tümör stromal mikroortam (yerli matris) özetlemek için kullanılan adımlar in vitro birincil stromal fibroblastlar doğrudan elde 18 açıklanmıştır. Native matrisler pfibroblast uzun süreli kültüründen roduced CSCC hücre istilası için tahlil eşdeğer bir dermal olarak kullanılmıştır. Biz, (VII tipi kolajen (C7) in eksik) RDEB fibroblastlar veya retroviral olarak tümör ile ilgili tek bir kolajen derin bir etki oluşturmak ve göstermek ifade eden bir tür VII kollajen ile transduse RDEB fibroblastlar salgılanan dışı matris ya da türetilmiş doğal matrisi kullanılarak veri mevcut hücre işgali.
Protocol
Representative Results
Discussion
Bu nedenle deney doğası gereği, tamamlanması için gereken toplam süre, iki aya kadar olabilir. Bu süre boyunca, son derece dikkatli ve steril doku kültürü uygulamaları mikrobiyal kontaminasyonu önlemek için istihdam edilmelidir.
Yanı sıra hidroksiprolin ve kolajenlerin hidroksilizin sentezinde bir kofaktör olarak rolünden, askorbik asit, fibroblastlar 22 kollagen özel mRNA ifadesini uyarır. Burada tercih edilen askorbik asit daha kara…
Divulgaciones
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
APS Debra International ve İngiliz Cilt Vakfı tarafından desteklenmektedir. Dundee Ortaklık Doktora Programı Üniversitesi – Yzn A * STAR tarafından desteklenmektedir.
Materials
| L-Ascorbic acid 2-phosphate | Sigma | A8960 | |
| DMEM with l-glutamine, | Life Technologies | 11995-073 | |
| 4,500 mg/L d-glucose, 110 mg/L sodium pyruvate | |||
| 100x Penicillin-Streptomycin | Life Technologies | 15070 | |
| Vaseline | VWR | PROL28908.290 | |
| Clonal cylinders | Sigma | Z370789 | |
| Nylon Net Filter Disc Hydrophilic 100um 25um diameter 100/pk | Millipore | NY1H02500 | |
| Bent stainless steel wire mesh support | Made in house | Dimensions were made so that the mesh would fit into 6-well plates |
Referencias
- Bell, E., Ehrlich, H. P., Buttle, D. J., Nakatsuji, T. Living tissue formed in vitro and accepted as skin-equivalent tissue of full thickness. Science. 211 (4486), 1052-1054 (1981).
- Asselineau, D., Bernhard, B., Bailly, C., Darmon, M. Epidermal morphogenesis and induction of the 67 kD keratin polypeptide by culture of human keratinocytes at the liquid-air interface. Exp. Cell Res. 159 (2), 536-539 (1985).
- Pruniéras, M. M., Régnier, M. M., Woodley, D. D. Methods for Cultivation of Keratinocytes with an Air-Liquid Interface. J. Invest. Dermatol. 81 (1 Suppl), 28-33 (1983).
- Prunieras, M., Régnier, M. New procedure for culturing human epidermal cells on allogenic or xenogenic skin: preparation of recombined grafts. Ann. Chir. Plast. 24 (4), 357-362 (1979).
- Gaggioli, C. Fibroblast-led collective invasion of carcinoma cells with differing roles for RhoGTPases in leading and following cells. Nature. 9 (12), 1392-1400 (2007).
- Bhowmick, N. A., Neilson, E. G., Moses, H. L. Stromal fibroblasts in cancer initiation and progression. Nature. 432 (7015), 332-337 (2004).
- Erez, N., Truitt, M., Olson, P., Hanahan, D. Cancer-Associated Fibroblasts Are Activated in Incipient Neoplasia to Orchestrate Tumor-Promoting Inflammation in an NF-κB-Dependent. Manner. Cancer Cell. 17 (2), 135-147 (2010).
- Harkness, R. D., Marko, A. M., Muir, H. M., Neuberger, A. The metabolism of collagen and other proteins of the skin of rabbits. Biochem. J. 56 (4), 558-569 (1954).
- Ehrmann, R. L., Gey, G. O. The growth of cells on a transparent gel of reconstituted rat-tail collagen. J. Natl. Cancer Inst. 16 (6), 1375-1403 (1956).
- Kleinman, H. K. Basement membrane complexes with biological activity. Bioquímica. 25 (2), 312-318 (1986).
- Vukicevic, S., Kleinman, H. K., Luyten, F. P., Roberts, A. B., Roche, N. S., Reddi, A. H. Identification of multiple active growth factors in basement membrane Matrigel suggests caution in interpretation of cellular activity related to extracellular matrix components. Exp. Cell Res. 202 (1), 1-8 (1992).
- . BD Biosciences – Discover Labware. SPC-356230 Rev 5.0 at Rev 5.0. , .
- Hughes, C. S., Postovit, L. M., Lajoie, G. A. Matrigel: a complex protein mixture required for optimal growth of cell culture. Proteomics. 10 (9), 1886-1890 (2010).
- Ng, Y. Z., Dayal, J. H., South, A. P. Genetic Predisposition to Cutaneous Squamous Cell Carcinoma. , .
- Christiano, A. M. A., Greenspan, D. S. D., Lee, S. S., Uitto, J. J. Cloning of human type VII collagen. Complete primary sequence of the alpha 1(VII) chain and identification of intragenic polymorphisms. J. Biol. Chem. 269 (32), 20256-20262 (1994).
- Hovnanian, A. A. Genetic linkage of recessive dystrophic epidermolysis bullosa to the type VII collagen gene. J. Clin. Invest. 90 (3), 1032-1036 (1992).
- Ryynänen, M. M., Ryynänen, J. J., Sollberg, S. S., Iozzo, R. V. R., Knowlton, R. G. R., Uitto, J. J. Genetic linkage of type VII collagen (COL7A1) to dominant dystrophic epidermolysis bullosa in families with abnormal anchoring fibrils. J. Clin. Invest. 89 (3), 974-980 (1992).
- Ng, Y. Z. Fibroblast-derived dermal matrix drives development of aggressive cutaneous squamous cell carcinoma in patients with recessive dystrophic epidermolysis bullosa. Cancer Res. 72 (14), 3522-3534 (2012).
- Larouche, D., Paquet, C., Fradette, J., Carrier, P., Auger, F. A., Germain, L. Chapter 15. Methods Mol. Biol. 482, 233-256 (2009).
- Pouliot, R. R. Reconstructed human skin produced in vitro and grafted on athymic mice). Transplantation. 73 (11), 1751-1757 (2002).
- Purdie, K. J., Pourreyron, C., South, A. P. Isolation and culture of squamous cell carcinoma lines. Methods Biol. 731, 151-159 (2011).
- Pinnell, S. R. Regulation of collagen biosynthesis by ascorbic acid: a review. Yale J. Biol. Med. 58 (6), 553-559 (1985).
- Hata, R., Senoo, H. L-ascorbic acid 2-phosphate stimulates collagen accumulation, cell proliferation, and formation of a three-dimensional tissuelike substance by skin fibroblasts. J. Cell. Physiol. 138 (1), 8-16 (1988).
