Summary

מבדק נפח קטן להערכה בקטריאלי / הפיטופלנקטון Co-תרבות שימוש במים-Pulse-Amplitude-אופנן (WATER-PAM) Fluorometry

Published: March 11, 2015
doi:

Summary

The goal of this procedure is to demonstrate the reproducibility and adaptability of using a microtiter plate format for microalgal screening. This rapid screen combines WATER-Pulse-Amplitude-Modulated (WATER-PAM) fluorometry to measure photosynthetic yield as an indicator of Photosystem II (PSII) health with small volume bacterial-algal co-cultures.

Abstract

שיטות מקובלות למניפולציה ניסויית של microalgae יש מועסקי כמויות גדולות של התרבות (20 מיליליטר עד 5 L), כך שהתרבות יכולה להיות subsampled לאורך הניסוי 1-7. Subsampling של כמויות גדולות יכול להיות בעייתי מכמה סיבות: 1) זה גורם לשינוי בשטח פן הנפח והכולל: יחס נפח של התרבות במהלך הניסוי; 2) פסאודו-שכפול (כלומר, לשכפל דגימות מאותו בקבוק הטיפול 8) לעתים קרובות מועסק ולא משכפל אמיתי (דגימה כלומר, מטיפולים לשכפל); 3) משך הניסוי מוגבל על ידי הנפח הכולל; ו 4) תרבויות axenic או חיידקי חיידקים הרגילים קשים לשמור במהלך ניסויים לטווח ארוך כזיהום מתרחש בדרך כלל במהלך subsampling.

השימוש בצלחות microtiter מאפשרת כרכי 1 מיליליטר תרבות שישמשו לכל לשכפל, עם עד 48 טיפולים נפרדים בתוךצלחת סנטימטר 12.65 x 8.5 x 2.2, ובכך להקטין את הנפח הניסיוני ומאפשר לשכפול נרחב ללא subsampling כל טיפול. בנוסף, טכניקה זו יכולה להיות שונה כדי להתאים מגוון רחב של פורמטים ניסיוניים כוללים: שיתוף תרבויות חיידקים-אצות, בדיקות פיזיולוגיה של אצות, ורעלן הקרנת 9-11. בארות בודדות עם אצה, חיידק ו / או שיתוף תרבויות ניתן לדגום לנוהלי מעבדה רבים, כולל, אך לא מוגבלת ל: WATER-Pulse-Amplitude-אופנן (WATER-PAM) fluorometry, מיקרוסקופיה, יחידת מושבת חיידקי יוצרים (CFU) רוזנים וcytometry זרימה. השילוב של fluorometry פורמט צלחת microtiter ומים-PAM מאפשר מדידות מהירות מרובות של תשואת פוטו ופרמטרים אחרים פוטו עם שונות נמוכות בין דגימות, שחזור גבוה וימנע את החסרונות רבים של subsampling בַּקבּוּק או בקבוק חרוטי במהלך ניסוי .

Introduction

הפיסיולוגיה הפיטופלנקטון באופן מסורתי למדה בניסויים טווינה-סולם הנעים בין 20 מיליליטר בצלוחיות חרוטי עד 5 L בcarboys 1-7. בקנה מידה ניסיוני זה דורש subsampling לניטור ניסוי, כהקרבת דגימות לשכפל לכל נקודת זמן יוצרת הגדרת ניסוי בלתי ניתנת לניהול.

היכולת להגדיל את מספר ניסויים בלתי תלויים תוך השימוש באותו מרחב חממה יומית על ידי miniaturizing הנפח הניסיוני לניסויי פיזיולוגיה אצות יהיה להפחית או לבטל את המגבלות של subsampling ופסאודו-שכפול מכמויות גדולות. פורמט צלחת microtiter פותח עבור bioassays אצות באמצעות 1 מיליליטר נפח תרבות לניסוי מניפולציה אצות בתנאים משתנים. נפח קטן וניסיוני זה מאפשר למספר החזרות להיות מוגבר, מגדיל שחזור ניסוי בשל השתנות ירד בין דגימות ולשכפלניסויים, ומאפשר שכפול אמיתי תוך שמירה על בקרת ניסוי (כלומר, תרבויות אצות axenic) עבור 140 ימים (איור 2) 12.

פורמט צלחת microtiter זה מותאם בקלות למגוון רחב של שאלות ניסיוניות, כגון: האם יש חיידק אינטראקציה סימביוטית, ניטראלית או פתוגניים עם מארח האצות שלה? האם התוספת של מגרה מתחם או רעילה לאצה? שאלות אלו ואחרות ניתן לטפל באופן תפוקה גבוהה מהיר באמצעות פורמט חדש זה 9-11.

צלחת תרבות microtiter 48 היטב מאפשרת לכל 1 מיליליטר גם להיות התקנה ניסיונית עצמאית שתדגם בנקודת זמן אחת. ניתן לדגום פרמטרים שונים מזה 1 מיליליטר כולל נפח, אך לא רק: הקרינה כלורופיל ופרמטרי פוטו באמצעות fluorometry במים Pulse-Amplitude-אופנן (WATER-PAM) (ראה חומרים וציוד שולחן) 13. Fluorometry במים PAM הוא טכניקה מהירה ולא פולשנית, שניתן להשתמש כדי לפקח על ניסויים שבוצעו עם אצות 13. זה מאפשר מדידה של יעילות פוטוסינתזה ובריאות PSII מקטן נפח תרבות (150-300 μl של התרבות בדילול מלא במדיום ל2-4 מיליליטר נפח מים-PAM) 14,15. בנוסף לfluorometry במים PAM, התקנה זו יכולה לשמש כדי למדוד מגוון של פרמטרים אחרים, כולל, אך לא מוגבלת ל: מיקרוסקופיה לדמיין את החיידקים מצורפים לתאים ושינויים במורפולוגיה של תאי אצות אצות; מושבת חיידקים יוצרת יחידת ספירה (CFU); וcytometry זרימה לספירת תאי אצות ותת-אוכלוסיות זיהוי.

Protocol

1. חישובים להתקנה ניסיונית חשב את הנפח של אצות ו / או תרבויות חיידקים זקוקים לבקרה שתידרש לניסוי כולו על ידי שימוש במשוואה 1: איפה y שווה למספר הבקרות הדרושות ליום וz שוו?…

Representative Results

קריאות fluorometry במים PAM. במים Pulse-Amplitude-אופנן (PAM) fluorometry היא שיטה מהירה ויעילה כדי לקבוע את הקרינה (proxy עבור תוכן כלורופיל) ותשואת פוטוסינתזה (בריאות PSII) של תרבויות אצות. תוכנת PAM WinControl יוצרת גיליון אלקטרוני של ערכי נתונים גולמיים ל( להלן ?…

Discussion

צמיחת אצות בפורמט מיניאטורי.

המזעור של תרבויות אצות למיליליטר 1 נפח תרבות בצלחת microtiter מאפשר לשכפול בניסוי להיות מוגבר. זה חשוב כדי להבטיח את האצה היא בריאה לאורך ניסוי; לבצע עקומת צמיחה (איור 2), תוך שימוש בפורמט צלחת microtiter ?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (grant 402105), Canadian Foundation for Innovation (grant 129087) and Alberta Education and Training (grant AAETRCP-12-026-SEG) to RJC.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
10 cu. ft. Diurnal Incubator (6012-1) Caron Corporate 112310-6012-1-11 www.caronproducts.com
Nunc EasYFlask 25cm2, Vent/Close Cap, 7mL working volume, 200/Cs  Thermo Fisher Scientific N156340 www.fishersci.ca
Multiwell TC Plates – 48 Well BD Biosciences Discovery Labware 353078 www.bdbiosciences.com
P1000 Gilson The Pipetting Standard—Gilson's Pipetman Mandel Scientific Company Inc. GF-F123602 www.mandel.ca
P10mL Gilson The Pipetting Standard—Gilson's Pipetman Mandel Scientific Company Inc. GF-F161201 www.mandel.ca
Wide Orifice Tips nonsterile [100–1250 µL] VWR International 89079-468 www.ca.vwr.com
Ultrafine Tips nonsterile [100–1250 µL] VWR International 89079-470 www.ca.vwr.com
Finntip 10mL [Vol: 1-10mL] Thermo Fisher Scientific 9402151 www.fishersci.ca
WATER-Pulse Amplitude Modulation (Water-ED) Heinz Walz GmbH, Effeltrich, Germany EDEE0232 www.walz.com
15 mm diameter quartz glass cuvette (WATER-K) Caron Corporate www.caronproducts.com
Sodium Chloride (Crystalline/Certified ACS), Fisher Chemical Thermo Fisher Scientific Thermo Fisher Scientific www.fishersci.ca
BD Difco Marine Broth 2216 BD Biosciences Discovery Labware BD Biosciences Discovery Labware www.bdbiosciences.com
BD Bacto Agar BD Biosciences Discovery Labware BD Biosciences Discovery Labware www.bdbiosciences.com
L1 Medium Kit, 50L NCMA [National Center for Marine Algae and Microbiota NCMA [National Center for Marine Algae and Microbiota www.ncma.bigelow.org

Referencias

  1. Scarratt, M. G., Marchetti, A. Assessing microbial responses to iron enrichment in the Subarctic Northeast Pacific: Do microcosms reproduce the in situ condition?. Deep Sea Res Part II Top. Stud. Oceanogr. 53 (20-22), 2182-2200 (2006).
  2. Bidle, K. D., Haramaty, L., Barcelos E Ramos, J., Falkowski, P. Viral activation and recruitment of metacaspases in the unicellular coccolithophore, Emiliania huxleyi. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 104 (14), 6049-6054 (2007).
  3. Moore, L. R., Goericke, R., Chisholm, S. W. Comparative physiology of Synechococcus and Prochlorococcus: influence of light and temperature on growth, pigments, fluorescence and absorptive. Mar. Ecol. Prog. Ser. 116, (1995).
  4. Iglesias-Rodriguez, M. D., Halloran, P. R. Phytoplankton calcification in a high-CO2 world. Science. 320 (5874), 336-340 (2008).
  5. Chen, M., Tang, H., Ma, H., Holland, T. C., Ng, K. Y. S., Salley, S. O. Effect of nutrients on growth and lipid accumulation in the green algae Dunaliella tertiolecta. Bioresour. Technol. 102 (2), 1649-1655 (2011).
  6. Lv, J. -. M., Cheng, L. -. H., Xu, X. -. H., Zhang, L., Chen, H. -. L. Enhanced lipid production of Chlorella vulgaris by adjustment of cultivation conditions. Bioresour. Technol. 101 (17), 6797-6804 (2010).
  7. Geider, R., Graziano, L., McKay, R. M. Responses of the photosynthetic apparatus of Dunaliella tertiolecta (Chlorophyceae) to nitrogen and phosphorus limitation. Eur. J. Phycol. 33 (4), 315-332 (1998).
  8. MacIntyre, H. L., Cullen, J. J. Using Cultures to Investigate the Physiological Ecology of Microalgae. Algal Cult. Tech. , 287-326 (2005).
  9. Blaise, C., Vasseur, P. Algal microplate toxicity test. Small-scale Freshw. Toxic. Investig. Vol. 1 Toxic. Test Methods. , 137-179 (2005).
  10. Skjelbred, B., Edvardsen, B., Andersen, T. A high-throughput method for measuring growth and loss rates in microalgal cultures. J. Appl. Phycol. 24, 1589-1599 (2012).
  11. Nagai, T., Taya, K., Annoh, H., Ishihara, S. Application of a fluorometric microplate algal toxicity assay for riverine periphytic algal species. Ecotoxicol. Environ. Saf. 94, 37-44 (2013).
  12. Seyedsayamdost, M. R., Case, R. J., Kolter, R., Clardy, J. The Jekyll-and-Hyde chemistry of Phaeobacter gallaeciensis. Nat. Chem. 3 (4), 331-335 (2011).
  13. Schreiber, U., Schliwa, U., Bilger, W. Continuous recording of photochemical and non-photochemical chlorophyll fluorescence quenching with a new type of modulation fluorometer. Photosynth. Res. 10 (1-2), 51-62 (1986).
  14. Jones, R. J., Ward, S., Amri, A. Y., Hoegh-Guldber, O. Changes in quantum efficiency of photosystem II of symbiotic dinoflagellates of corals after heat stress, and of bleached corals sampled after the 1998 Great Barrier Reef mass bleaching event. Mar. Freshw. Res. 51 (345), 659-668 (1998).
  15. Beer, S., Larsson, C., Poryan, O., Axelsson, L. Photosynthetic rates of Ulva (Chlorophyta) measured by pulse amplitude modulated fluorometry. Eur. J. Phycol. 35 (1), 69-74 (2000).
  16. . . WATER-PAM Chlorophyll Fluorometer. Instrument Description and Information for Users. , (2013).
  17. Maxwell, K., Johnson, G. M., Heers, J. Chlorophyll fluorescence–a practical guide. J. Exp. Bot. 51 (345), 659-668 (2000).
  18. Herigstad, B., Hamilton, M., Heersink, J. How to optimize the drop plate method for enumerating bacteria. J. Microbiol. Methods. 44 (2), 121-129 (2001).
  19. Kooten, O., Snel, J. The use of chlorophyll fluorescence nomenclature in plant stress physiology. Photosynth. Res. 25 (3), 147-150 (1990).
  20. Maxwell, K., Johnson, G. N. Chlorophyll fluorescence–a practical guide. J. Exp. Bot. 51 (345), 659-668 (2000).
  21. Schreiber, U. Pulse-Amplitude-Modulation (PAM) Fluorometry and Saturation Pulse Method: An Overview. Chlorophyll a Fluoresc. A Signat. Photosynth. , 279-319 (2004).
  22. Roháček, K., Barták, M. Technique of the modulated chlorophyll fluorescence: basic concepts, useful parameters, and some applications. Photosynthetica. 37 (3), 339-363 (1999).
  23. Da Silva, J. M., da Silva, A. B., Pádua, M. Modulated chlorophyll a fluorescence: a tool for teaching photosynthesis. J. Biol. Educ. 41 (4), 178-183 (2007).
  24. Vieira, S., Ribeiro, L., Jesus, B., Cartaxana, P., da Silva, J. M. Photosynthesis assessment in microphytobenthos using conventional and imaging pulse amplitude modulation fluorometry. Photochem. Photobiol. 89 (1), 97-102 (2013).

Play Video

Citar este artículo
Bramucci, A. R., Labeeuw, L., Mayers, T. J., Saby, J. A., Case, R. J. A Small Volume Bioassay to Assess Bacterial/Phytoplankton Co-culture Using WATER-Pulse-Amplitude-Modulated (WATER-PAM) Fluorometry. J. Vis. Exp. (97), e52455, doi:10.3791/52455 (2015).

View Video