Summary

Desthiobiotin-streptavidine-affiniteit gemedieerde zuivering van eiwitten in cellen van mesothelioom RNA-interactie

Published: April 25, 2018
doi:

Summary

Desthiobiotin labeling van een synthetische 25-nucleotide RNA oligo, die een motief adenine-rijke element (ARE) bevat, kunt specifieke binding van cytosolische ARE-bindend-proteïne.

Abstract

De in vitro RNA-pulldown is nog steeds grotendeels gebruikt in de eerste stappen van de protocollen die zijn gericht op het identificeren van RNA-bindende proteïnen die specifieke RNA structuren en motieven herkennen. In dit protocol van RNA-pulldown, commercieel gesynthetiseerde sondes van RNA worden aangeduid met een gewijzigde vorm van biotine, desthiobiotin, aan de 3′-eindpunt van de RNA-strand, dat omkeerbaar bindt aan streptavidine en dus kunt elutie van eiwitten onder meer fysiologische voorwaarden. Het RNA-desthiobiotin is geïmmobiliseerd door middel van interactie met daar op magnetische kralen, die worden gebruikt voor pull-down eiwitten die specifiek interactie met de RNA van belang. Niet-gedenatureerd en actieve eiwitten uit de cytosolische afvalfractie mesothelioom cellen worden gebruikt als de bron van eiwitten. De hier beschreven methode kan worden toegepast om de interactie tussen bekende RNA-bindende proteïnen en een 25-nucleotide (nt) lang RNA sonde met een opeenvolging van belang te detecteren. Dit is handig voor het voltooien van de functionele karakterisering van stabiliseren of destabiliserende elementen aanwezig zijn in de molecules van RNA bereikt met behulp van een verslaggever vector assay.

Introduction

Genexpressie en het uiteindelijke niveau van het gen-product kunnen worden strak geregeld beïnvloeden het mRNA stabiliteits- en mRNA vertaling tarief1. Deze post-transcriptional regulerende mechanismen worden uitgeoefend door de interacties van niet-coderende RNA en/of RNA-bindende eiwitten (RBPs) met gerichte mRNA. Het is meestal de 3′ niet-vertaalde regio van mRNA (3′ UTR – die behoren tot de niet-coderende deel van het genoom2) waarin specifieke cis-regelgevende elementen (CRE), die worden erkend door trans-factoren zoals miRNA of RBPs handelen 3. de best bestudeerde cis-element binnen de 3′ UTR, is het motief van adenine-rijke element (ARE), dat wordt erkend door specifieke AU-bindende proteïnen (AUBP), en, op zijn beurt, induceert ofwel mRNA afbraak/deadenylation (zijn-gemedieerde verval) of mRNA stabilisatie4.

De grootte van de 3-‘ UTR van calretinin is mRNA (CALB2) 573 bp lang en bevat een vermeende AUUUA pentamer, zoals voorspeld door AREsite2, een bioinformatic gereedschap5. In overeenstemming met de aanwezigheid van een vermeende zijn motief, de bepaling van de vector-reporter pmirGLO aangetoond de rol van een stabilisatie van dit element binnen CALB2 mRNA6. Ten slotte de in vitro RNA-pulldown werd gebruikt voor het identificeren van de AUBP die calretinin stabiliseert mRNA via het motief zijn.

Aangezien alle niet-coderende RNAs interactie met eiwitten7, is de in vitro RNA-pulldown een goede manier en een eerste-van-keuze assay voor het identificeren van RNA-interactors om te helpen bij het ontcijferen van de moleculaire mechanismen. Bij deze methode RNA-pulldown werden commercieel gesynthetiseerde RNA sondes, die waren gelabeld met een gewijzigde vorm van Biotine (desthiobiotin) in het terminus 3′ van de streng RNA, gebruikt. Het RNA-desthiobiotin is geïmmobiliseerd door middel van interactie met daar op magnetische kralen, die worden gebruikt voor pull-down eiwitten die specifiek interactie met de gebonden-RNA van belang. Niet-gedenatureerd en actieve eiwitten uit de cytosolische afvalfractie mesothelioom cellen worden gebruikt als de bron van eiwitten. Dergelijke RNA-afhankelijke eiwitten worden van de magnetische kralen, uitgevoerd door een 12% SDS-pagina gel, overgebracht naar een membraan en peilden met verschillende antilichamen geëlueerd.

Volgens de standaard streptavidine-Biotine affiniteit zuivering, harde denaturatie voorwaarden moet worden voldaan aan het verstoren van de sterke onomkeerbare Biotine-streptavidine bond om elueer de afhankelijke eiwitten8, kan leiden tot de dissociatie van eiwitcomplexen. In tegenstelling tot biotine, desthiobiotin omkeerbaar bindt aan streptavidine en concurrerend wordt verplaatst met een gebufferde oplossing van biotine, rekening houdend met de zachte elutie van eiwitten, en het vermijden van het isolement van natuurlijk biotinyleerd moleculen9, suggereren dat de techniek ideaal is voor het isoleren van inheemse eiwitcomplexen inheemse omstandigheden.

In vitro bindende voorwaarden en striktheid, die worden bepaald door de zoutconcentratie, reductoren en wasmiddel percentage, moet dicht bij de aanwezigen in het cellulaire kader teneinde waar in vivo interacties. De bindende voorwaarden hierin geïmplementeerd hebben eerder aangetoond zo geschikt is voor de identificatie van de HuR als een AU-bindende eiwit10. Deze aanpak bespaart tijd, omdat optimalisatie van goede bindende voorwaarden kan tijdrovend en uitdagend. Bovendien, deze methode kan worden gebruikt als een startende protocol voor elke RNA-pulldown experiment en geleidelijk kan worden geoptimaliseerd door het veranderen van de concentratie van zouten en detergenten, het wijzigen van het percentage glycerol en andere zouten toe te voegen. Bovendien, we laten zien dat zelfs een korte 25-nucleotide RNA-sonde herbergen een pentamer zijn-motief kan worden gebruikt om aan te tonen van de interactie met een specifieke AUBP.

Protocol

1. bereiding van cytosolische en nucleaire eiwitoplossing Plaat 4 x 106 ACC-MESO-4 cellen in een kolf met cel cultuur van T150 is gegroeid in RPMI – 1640 medium aangevuld met 10% FBS, 1 x penicilline/streptomycine (100 x) en 2 mM L-Glutamine (200 mM). Wanneer cellen bereikt een samenvloeiing van 80-90% (~5-5.5 x 106 cellen), gaat u verder met eiwit extractie van nucleaire en cytosolische breuk.Opmerking: ACC-MESO-4 cellijn is verkregen uit de RIKEN BioResource centrum…

Representative Results

In dit experiment, was een lang fragment van 25-nt calretinin 3′ UTR herbergen zijn motief (CALB2 3′ UTR (ARE) 25-nt) gebruikt om te testen of het bindt specifiek aan de mens-antigeen R (HuR) eiwit, een bekende mRNA-stabilisator. Als u wilt testen van de specificiteit van het zijn element, een 25-nt-RNA was sonde CALB2 3′ UTR (mtARE) met een mutatie zijn-motief, die eerder af te schaffen het stabilisatie-effect van het zijn motief werd getoond, gebruikte6. De derde…

Discussion

3′ UTRs behoren tot de niet-coderende genoom3, en alle niet-coderende RNAs kunnen communiceren met eiwitten om te oefenen hun functie7. Wanneer het genoom van zoogdieren bleek te worden pervasively getranscribeerd en een aanzienlijk deel van lang noncoding RNAs16geproduceerd, opkomende bewijzen aangetoond dat deze lange-noncoding RNAs functioneren bij de regulering van de expressie van genen zoals ze met interageren chromatine-remodeling complexen<su…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door de Zwitserse National Science Foundation Sinergia grant CRSII3 147697, de Stiftung für Angewandte Krebsforschung en Zürich Krebsliga.

Materials

NE-PER Nuclear and cytoplasmic extraction kit Thermo Fisher Scientific  78833
Pierce Protease Inhibitor Tablets, EDTA-free Thermo Fisher Scientific A32965
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Fisher Scientific 23225
Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit  Thermo Fisher Scientific 20164 Includes magnetic beads and therefore the kit need to be stored at 4 °C
Pierce RNA 3’ End Desthiobiotinylation Kit  Thermo Fisher Scientific 20163 The kit is a part of the "Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit", and needs to be stored at -20 °C unlike the pull-down kit (4 °C).
DynaMag-2,  magnetic stand Thermo Fisher Scientific 12321D
Anti – HuR (MOUSE) monoclonal antibody Thermo Fisher Scientific The antibody is included in the Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit  – 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – rabbit anti-mouse secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – α – tubulin (MOUSE) monoclonal antibody Santa Cruz 8035 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – rabbit anti-mouse secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – PARP (RABBIT) Polyclonal antibody Cell Signaling 9542 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – goat anti-rabbit secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – Mesothelin (MOUSE) Monoclonal Antibody  Rockland 200-301-A87
Secondary goat anti-rabbit antibody Cell Signaling 7074
Secondary rabbit anti-mouse antibody Sigma-Aldrich A-9044
RPMI – 1640 medium Sigma-Aldrich R8758
FBS – Filtrated Bovine Serum Pan Biotech  P40-37500
Penicillin – streptomycin (100x) Sigma-Aldrich  P4333
L-Glutamine solution (200 mM) Sigma-Aldrich  G7513
0.25% Trypsin-EDTA (1x) Gibco by Life technologies  25200-056
Mini-PROTEAN 3 Cell Bio-Rad 1653301
Mini Protean System Glass Plates  Bio-Rad 1653308
Mini-PROTEAN Spacer Plates with 1.5 mm integrated spacer Bio-Rad 1653312
Mini-PROTEAN Comb, 10-well, 1.5 mm, 66 µL Bio-Rad 1653365
Mini-PROTEAN Tetra Cell Casting Modules Bio-Rad 1658050
RNaseZap RNase Decontamination Solution Thermo Fisher Scientific AM9780
Rotiphorese gel 30 – aqueous 30% acrylamide and bisacrylamide stock solution at a ration of 37.5:1 Roth 3029
20% SDS  PanReac AppliChem A3942
PVDF transfer membrane  Perkin Elmer NEF1002 Need to be activated by incubating in pure methanol for 1 min followed by washing in water for 2 min 
Trans-Blot SD semi-dry transfer cell  Bio-Rad 1703940
Clarity Western ECL Substrate Bio-Rad 1705061
FusionFX  Digital Imager Vilber
RNA oligo synthesis Mycrosynth AG, Switzerland the synthesis scale – 0.04 µmol – HPLC purified
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A7030
Hydrochloric Acid (HCl) 6 M PanReac AppliChem 182883.1211
Ultra Pure 1 M Tris, pH 7.5  Thermo Fisher Scientific 15567027
Glycerol  Thermo Fisher Scientific 17904 50% sterile aliquots to be stored at -20°C
Pierce Streptavidin magnetic beads  Thermo Fisher Scientific 88817 Please note that these magnetic beads have an average diameter of 1 µm (range from 0.5 – 1.5 µm). Furthermore, Dynabeads-M280 Streptavidin, which are beads of homogenouse size 2.8 µm, are also used in RNA-pulldown but be aware that this may affect purification process.
TEMED Sigma-Aldrich T9281
Ammonium persulfate  Sigma-Aldrich A3678
Coomassie G-250 Applichem A3480
Aluminiumsulfate-(14-18)-hydrate  Sigma-Aldrich 368458
ortho-phosphoric acid  Applichem A0637

Referencias

  1. Glisovic, T., Bachorik, J. L., Yong, J., Dreyfuss, G. RNA-binding proteins and post-transcriptional gene regulation. FEBS Letters. 582 (14), 1977-1986 (2008).
  2. Mayr, C. Evolution and biological roles of alternative 3’UTRs. Trends in Cell Biology. 26 (3), 227-237 (2016).
  3. Matoulkova, E., Michalova, E., Vojtesek, B., Hrstka, R. The role of the 3′ untranslated region in post-transcriptional regulation of protein expression in mammalian cells. RNA Biology. 9 (5), 563-576 (2012).
  4. von Roretz, C., Di Marco, S., Mazroui, R., Gallouzi, I. E. Turnover of AU-rich-containing mRNAs during stress: a matter of survival. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 2 (3), 336-347 (2011).
  5. Fallmann, J., Sedlyarov, V., Tanzer, A., Kovarik, P., Hofacker, I. L. AREsite2: An enhanced database for the comprehensive investigation of AU/GU/U-rich elements. Nucleic Acids Research. 44, D90-D95 (2016).
  6. Kresoja-Rakic, J., et al. Posttranscriptional regulation controls calretinin expression in malignant pleural mesothelioma. Frontiers in Genetics. 8 (70), (2017).
  7. Chu, C., Spitale, R. C., Chang, H. Y. Technologies to probe functions and mechanisms of long noncoding RNAs. Nature Structural & Molecular Biology. 22 (1), 29-35 (2015).
  8. Diamandis, E. P., Christopoulos, T. K. The biotin-(strept)avidin system: principles and applications in biotechnology. Clinical Chemistry. 37 (5), 625-636 (1991).
  9. Hirsch, J. D., et al. Easily reversible desthiobiotin binding to streptavidin, avidin, and other biotin-binding proteins: Uses for protein labeling, detection, and isolation. Analytical Biochemistry. 308 (2), 343-357 (2002).
  10. . Magnetic bead technology for better assay development Available from: https://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/LSG/brochures/1602577-Magnetic-Bead-Technology-Brochure.pdf (2013)
  11. Usami, N., et al. Establishment and characterization of four malignant pleural mesothelioma cell lines from Japanese patients. Cancer Science. 97 (5), 387-394 (2006).
  12. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  13. Coulson, R. M., Cleveland, D. W. Ferritin synthesis is controlled by iron-dependent translational derepression and by changes in synthesis/transport of nuclear ferritin RNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (16), 7613-7617 (1993).
  14. Leibold, E. A., Munro, H. N. Cytoplasmic protein binds in vitro to a highly conserved sequence in the 5′ untranslated region of ferritin heavy- and light-subunit mRNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 85 (7), 2171-2175 (1988).
  15. Srikantan, S., Gorospe, M. HuR function in disease. Frontiers in Bioscience (Landmark Edition). 17, 189-205 (2012).
  16. Morris, K. V., Mattick, J. S. The rise of regulatory RNA. Nature Reviews: Genetics. 15 (6), 423-437 (2014).
  17. Rinn, J. L., et al. Functional demarcation of active and silent chromatin domains in human HOX loci by noncoding RNAs. Cell. 129 (7), 1311-1323 (2007).
  18. Zhao, J., Sun, B. K., Erwin, J. A., Song, J. J., Lee, J. T. Polycomb proteins targeted by a short repeat RNA to the mouse X chromosome. Science. 322 (5902), 750-756 (2008).
  19. McHugh, C. A., et al. The Xist lncRNA interacts directly with SHARP to silence transcription through HDAC3. Nature. 521 (7551), 232-236 (2015).

Play Video

Citar este artículo
Kresoja-Rakic, J., Felley-Bosco, E. Desthiobiotin-Streptavidin-Affinity Mediated Purification of RNA-Interacting Proteins in Mesothelioma Cells. J. Vis. Exp. (134), e57516, doi:10.3791/57516 (2018).

View Video