Summary

Análisis de la marcha de deficiencias motoras dependientes de la edad en ratones con neurodegeneración

Published: June 18, 2018
doi:

Summary

En este estudio, se demuestra el uso del análisis cinemático de la marcha en plano ventral de imágenes para monitorear los cambios sutiles en la coordinación motora, así como la progresión de la neurodegeneración con edad en modelos de ratón (por ejemplo, endophilin mutante avanzada base líneas de ratón).

Abstract

Pruebas de comportamiento motor se utilizan comúnmente para determinar la relevancia funcional de un modelo de roedor y probar recién desarrollado tratamientos en estos animales. Específicamente, el análisis de la marcha permiten recuperación enfermedad fenotipos relevantes que se observan en pacientes humanos, especialmente en las enfermedades neurodegenerativas que afectan a motor habilidades tales como la enfermedad de Parkinson (EP), enfermedad de Alzheimer (EA), amiotrófica esclerosis lateral (ELA) entre otros. En los primeros estudios en esta línea, la medición de parámetros de marcha era laborioso y dependía de factores que eran difíciles de controlar (por ejemplo, velocidad, corriente funcionamiento continuo). El desarrollo de sistemas de representación (VPI) en plano ventral hecho factible para realizar el análisis de la marcha a gran escala, haciendo este método una herramienta útil para la evaluación de la conducta motora en roedores. Aquí, presentamos un protocolo detallado de cómo utilizar el análisis de la cinemática de la marcha para examinar la progresión depende de la edad del déficit motor en modelos de ratón de la neurodegeneración; líneas de ratón con disminución de los niveles de endophilin, que daños neurodegenerativos aumenta progresivamente con la edad, se utilizan como ejemplo.

Introduction

Enfermedades neurodegenerativas imponen una carga significativa en los pacientes, las familias y la sociedad y se convertirá en motivo de preocupación aún mayor conforme aumenta la esperanza de vida, y la población mundial sigue a la edad. Uno de los síntomas más comunes de las enfermedades neurodegenerativas son problemas de equilibrio y movilidad. Así, la caracterización del comportamiento motor en envejecimiento mamífero (p. ej., roedores) modelos o modelos que muestran fenotipos neurodegenerativas, es una herramienta valiosa para demostrar la importancia de en vivo del modelo animal específico, o terapéutico tratamientos que tienen como objetivo mejorar los síntomas de la enfermedad. Casi cada enfoque para el tratamiento de enfermedades neurodegenerativas, en definitiva, requiere pruebas en un modelo animal antes de la iniciación de un ensayo clínico en seres humanos. Por lo tanto, es fundamental contar con pruebas de comportamiento fiable y reproducible que pueden utilizarse para cuantificar sistemáticamente enfermedades relevantes fenotipos a lo largo de la progresión de la edad, con el fin de asegurar que un fármaco candidato que demostró el potencial en un modelo en vitro , puede efectivamente mejorar el fenotipo de un animal vivo.

Un aspecto de la evaluación de la conducta motora en roedores es análisis cinemático de la marcha, que se puede realizar por VPI (también llamado plano ventral videografía)1,2. Este método establecido capitaliza el registro continuo de la parte inferior de los roedores caminando sobre una cinta transparente y motorizado correa1,2,3,4. Análisis del vídeo datos crea “impresiones de la pata digital” de los cuatro miembros que dinámicamente y confiablemente recapitulan patrón de caminar de roedor, originalmente descrito por Kale et al. 2 y Amende et al. 3.

El principio de análisis basado en la proyección de imagen del paso es medir el área de la pata en contacto con la correa de la cinta de correr con el tiempo, para cada pata individual. Cada postura está representada por un aumento en el área de la pata (en la fase de frenado) y una disminución en el área de la pata (en la fase de propulsión). Esto es seguido por la fase en que se detecte ninguna señal. Swing y postura junto forman un paso. Además de parámetros de la dinámica de marcha, parámetros de postura pueden extraerse también de los vídeos grabados. Parámetros de ejemplares y su definición se enumeran en la tabla 1 incluyen postura anchura (SW; la distancia combinada de las patas delanteras o traseras al eje de la cola de hocico), paso largo (SL; la distancia media entre dos pasos de la misma pata) y colocación de la pata ángulo (el ángulo de la pata al eje de la cola de hocico). Los datos de dinámica de la postura y marcha permiten establecer conclusiones de dibujos sobre equilibrio animal (por parámetros de postura y su variabilidad sobre varios pasos) y coordinación (por parámetros de dinámica de marcha). Otros parámetros, tales como coeficiente de ataxia (la variabilidad del SL calculada por [(max. SL−min. SL) significa SL /]), extremidades comparten posición tiempo (que ambos miembros posteriores están en contacto con la correa), o arrastrar la pata (área total de la pata de la correa de posición completo a despegue de la pata) también puede ser extraído y se han divulgado para cambiar en varios neurodegenerative di Sease modelos5,6,7,8 (ver tabla 1).

Parámetro Unidad Definición
tiempo de oscilación MS duración de tiempo que la pata no está en contacto con la correa
tiempo de postura MS duración de tiempo que la pata esté en contacto con la correa
freno de % % de tiempo de postura porcentaje del tiempo de postura de las patas son en la fase de freno
propulsar a % % de tiempo de postura porcentaje del tiempo de postura de las patas son en la fase de propulsión
anchura de la postura cm distancia combinada de las patas delanteras o traseras al eje de la cola de hocico
longitud de zancada cm distancia media entre dos pasos de la misma pata
frecuencia de zancada avances/s número de pasos completos por segundo
ángulo de colocación de la pata DEG ángulo de la pata en relación con el eje de cola del hocico del animal
coeficiente de ataxia a.u. Variabilidad SL calculado por [(max SL-min SL) Media SL]
% posición compartida % de postura tiempo de postura de extremidades compartido; momento en que ambos miembros posteriores están en contacto con la correa al mismo tiempo
pata de arrastre mm2 área total de la pata de la correa de posición completo a despegue de la pata
carga de la extremidad cm2 MÁXIMO dA/dT; máxima tasa de cambio de zona de la pata en la fase de ruptura
variabilidad del ángulo de paso DEG desviación del ángulo entre las traseras de las patas como una función del SL y SW

Tabla 1. Definición de parámetros clave de paso que puede probar mediante la proyección de imagen de plano ventral.

Evaluar el comportamiento motor de los modelos de roedores para enfermedades neurodegenerativas puede ser difícil dependiendo de la severidad del fenotipo de un modelo específico a una determinada edad. Varias enfermedades, principalmente paladio, mostrar comportamiento motor fuerte (locomoción) los déficits, tanto en pacientes como en modelos animales. Uno de los cuatro síntomas fundamentales en la EP es la bradicinesia, que progresa con la edad y se manifiesta en deficiencias severas de la marcha ya en etapas tempranas de PD9. Estudios del modelo PD agudo, roedores tratados con 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridin (MPTP), han utilizado VPI gait análisis10,11,12. Sin embargo, dada la naturaleza aguda de este modelo, estos estudios no abordan la relacionada con la edad la progresión del déficit motor. Varios estudios recientes han llevado a cabo análisis de la marcha en ratones envejecidos con cambios neurodegenerativos, por ejemplo13,14,15, haciendo hincapié en la importancia de entender la progresión de la enfermedad con edad avanzada .

Además de déficit motor, modelos animales de enfermedades neurodegenerativas a menudo tienen dificultades para centrarse en las tareas de examen y mostrar las debilitaciones cognoscitivas prominentes, en particular con edad avanzada. Tal un fenotipo puede influir en el resultado de las pruebas de comportamiento motor. Es decir, una de las pruebas más utilizadas para examinar el déficit motor, el ensayo rotarod16, depende de la cognición, la atención y tensión17,18. Mientras que la voluntad de caminar en una caminadora motorizada también depende de estos factores, la lectura grabada está en marcha, que es una característica más estandarizada y mucho menos influenciada por cognición alterada. Efectos del estrés y atención pueden ser visibles en parámetros específicos, como el tiempo de oscilación/postura para el estrés y SL para atención19,20, pero no en capacidad de funcionamiento general.

El enfoque de análisis cinemático de la marcha además ofrece la ventaja de tener opciones para ajustar el desafío para los modelos de roedores. La caminadora con ángulo ajustable y velocidad permite a poca velocidad de 0.1 – 99,9 cm/s, para que los roedores con graves impedimentos a pie todavía pueden ser capaces de correr a una velocidad lenta (~ 10 cm/s). Animales con problemas no pueden medirse en correr más rápido velocidades (30 – 40 cm/s). La observación de los animales probados son capaces de correr a cierta velocidad si o no proporciona un resultado por sí mismo. Además, el roedor puede ser impugnado además correr hacia arriba en una pendiente, o por una caída, inclinando la cinta a un ángulo deseado con la ayuda de un goniómetro, o colocando un trineo cargado para extremidades traseras de ratón o rata.

Además de numerosos estudios de proteínas individuales que están mutados en los pacientes, existe una conciencia cada vez más recientes de los vínculos entre la defectuosa endocitosis proceso y neurodegeneración13,21,22, 23,24,25,26,27,28. Modelos con niveles reducidos de endophilin-A del ratón (en lo sucesivo endophilin), un jugador clave en ambos endocitosis mediada por clatrina13,21,,29,30,31 , 32 , 33 , se encontraron 45 y endocytosis clathrin-independiente34, para mostrar la neurodegeneración y el deterioro depende de la edad en actividad locomotor13,21. Tres genes que codifican la familia de proteínas endophilin: endophilin 1, endophilin 2 y endophilin 3. En particular, el fenotipo resultante del agotamiento de endophilin proteínas varía grandemente dependiendo del número de desaparecidos endophilin genes13,21. Mientras triple knock-out (KO) de todos los genes endophilin es mortal sólo unas horas después de nacer y los ratones sin tanto endophilin 1 y 2 no crecen y mueren dentro de 3 semanas después del nacimiento, KO solo para cualquiera de los tres endophilins no muestra ningún fenotipo obvio probado condiciones21. Otros genotipos mutantes endophilin muestran reducida vida útil y desarrollan deficiencias motoras con el aumento de edad13. Por ejemplo, endophilin 1KO-2HT-3KO ratones pantalla poca alteraciones y problemas de coordinación motora (como prueba rotarod y el análisis de la cinemática de la marcha) ya a los 3 meses de edad, mientras que sus hermanos de camada, endophilin 1KO-2WT-3KO animales, mostrar un significativo reducción en coordinación motora sólo a los 15 meses de edad13. Debido a la gran diversidad de fenotipos en estos modelos, es necesario identificar y aplicar una prueba que permite integrar una variedad de desafíos correspondiente al motor del animal y capacidades de cognición, así como la edad. Aquí detallamos los procedimientos experimentales que capitalizan el análisis cinemático de la marcha para evaluar la aparición y progresión de las deficiencias motoras en un modelo de ratón que muestra cambios neurodegenerativos (es decir, mutantes de endophilin). Esto incluye la medición de parámetros de marcha en distintas edades y diferentes niveles de gravedad de discapacidades de la locomoción.

Protocol

Todos los experimentos con animales divulgados aquí se llevan a cabo según las directrices europeas para el bienestar animal (2010/63/UE) con la aprobación por la Niedersächsisches Landesamt für Verbraucherschutz und Lebensmittelsicherheit (LAVES), número de registro 14 / 1701. 1. diseño del estudio Como trabajo del comportamiento de los animales requiere una planificación cuidadosa, considerar los siguientes parámetros de diseño del experimento. Número de animales…

Representative Results

Para ilustrar el uso de análisis de la cinemática de la marcha, hemos realizado análisis de la marcha en ratones C57BL/6J WT con avance de edad, así como varias líneas mutantes de endophilin, mediante instrumentación disponible en el mercado y el software (consulte la tabla de Materiales). En esta configuración, una cámara de alta velocidad en una cinta transparente registra el funcionamiento de un ratón (figura 1A). El software reco…

Discussion

Estudiar la coordinación motora es un enfoque útil en la caracterización de modelos de enfermedades neurodegenerativas, especialmente para enfermedades como el PD que coordinación motora es severamente afectado. Con la ayuda de un análisis funcional del análisis cinemático de la marcha, podemos identificar cambios sutiles en el andar de los animales en el inicio de problemas de locomoción, o en modelos de neurodegeneración débil y por lo tanto relativamente modesto fenotipo. Dada la amplia gama de fenotipos en …

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a cuidadores de animales en el Animalario de la ENI para ayuda con la crianza y el Dr. Nuno Raimundo útiles comentarios sobre el manuscrito. I.M. es apoyado por las becas de la Fundación de investigación alemana (DFG) a través del centro de investigación colaborativa SFB-889 (proyecto A8) y SFB-1190 (proyecto P02) y el premio al investigador joven Emmy Noether (1702/1). C.M.R. es apoyado por la beca de la escuela de postgrado de Göttingen para Neurociencias y Biofísica Molecular Biosciences (GGNB).

Materials

DigiGait Mouse Specifics, Inc., Framingham, Massachusetts, USA DigiGait Imager and Analysis Software are included with the hardware
non-transparent blanket or dark cloth cover the test chamber to reduce the animal's feeling of exposure/stress
balance e.g. Satorius balance with 0.1 g accuracy and a maximum load of at least 100 g
red finger paint e.g. Kreul or Staedtler for increasing the contrast between paws and animal’s body
small paint brush soft brush to apply finger paint to the animal paws
diluted detergent for cleaning
disinfectant, e.g. Meliseptol or 70% ethanol e.g. B.Braun for desinfection

Referencias

  1. Clarke, K. A., Still, l. J. Gait analysis in the mouse. Physiology and Behavior. 66, 723-729 (1999).
  2. Kale, A., Amende, I., Meyer, G. P., Crabbe, J. C., Hampton, T. G. Ethanol’s effects on gait dynamics in mice investigated by ventral plane videography. Alcohol Clin Exp Res. 28 (2), 1839-1848 (2004).
  3. Amende, I., Kale, A., McCue, S., Glazier, S., Morgan, J. P., Hampton, T. Gait dynamics in mouse models of Parkinson’s disease and Huntington’s disease. J Neuroeng Rehabil. 25, 2-20 (2005).
  4. Herbin, M., Hackert, R., Gasc, J. P., Renous, S. Gait parameters of treadmill versus overground locomotion in mouse. Behavioural Brain Res. 181 (2), 173-179 (2007).
  5. Powell, E., Anch, A. M., Dyche, J., Bloom, C., Richtert, R. R. The splay angle: A new measure for assessing neuromuscular dysfunction in rats. Physiol Behav. 67 (5), 819-821 (1999).
  6. Blin, O., Ferrandez, A. M., Serratrice, G. Quantitative analysis of gait in Parkinson patients: increased variability of stride length. J Neurol Sci. 98 (1), 91-97 (1990).
  7. Švehlík, M. D., et al. Gait Analysis in Patients With Parkinson’s Disease Off Dopaminergic Therapy. Arch Phys Med Rehabil. 90 (11), 1880-1886 (2009).
  8. Roome, R. B., Vanderluit, J. L. Paw-dragging: a novel, sensitive analysis of the mouse cylinder test. J Vis Exp. (98), e52701 (2015).
  9. Roiz Rde, M., Cacho, E. W., Pazinatto, M. M., Reis, J. G., Cliquet, A., Barasnevicius-Quagliato, E. M. Gait analysis comparing Parkinson’s disease with healthy elderly subjects. Arg Neuropsiquiatr. 68 (1), 81-86 (2010).
  10. Wang, X. H., et al. Quantitative assessment of gait and neurochemical correlation in a classical murine model of Parkinson’s disease. BMC Neurosci. 13, 142 (2012).
  11. Lao, C. L., Kuo, Y. H., Hsieh, Y. T., Chen, J. C. Intranasal and subcutaneous administration of dopamine D3 receptor agonists functionally restores nigrostriatal dopamine in MPTP-treated mice. Neurotox Res. 24 (4), 523-531 (2013).
  12. Zhao, Q., Cai, D., Bai, Y. Selegiline rescues gait deficits and the loss of dopaminergic neurons in a subacute MPTP mouse model of Parkinson’s disease. Int J Mol Med. 32 (4), 883-891 (2013).
  13. Murdoch, J. D., et al. Endophilin-A deficiency induces the FoxO3a-Fbxo32 network in the brain and causes dysregulation of autophagy and the ubiquitin-proteasome system. Cell Rep. 17 (4), 1071-1086 (2016).
  14. Dai, M., et al. Progression of Behavioral and CNS Deficits in a Viable Murine Model of Chronic Neuronopathic Gaucher Disease. PLoS One. 11 (9), e0162367 (2016).
  15. Szalardy, L., et al. Lack of age-related clinical progression in PGC-1α-deficient mice – implications for mitochondrial encephalopathies. Behav Brain Res. , 272-281 (2016).
  16. Rustay, N. R., Wahlsten, D., Crabbe, J. C. Influence of task parameters on rotarod performance and sensitivity to ethanol in mice. Behavioural Brain Research. 141 (2), 237-249 (2003).
  17. Majdak, P., et al. A new mouse model of ADHD for medication development. Sci Rep. 6, 39472 (2016).
  18. Ishige, A., Sasaki, H., Tabira, T. Chronic stress impairs rotarod performance in rats: implications for depressive state. Comportamiento. (1-2), 79-84 (2002).
  19. Fukui, D., Kawakami, M., Matsumoto, T., Naiki, M. Stress enhances gait disturbance induced by lumbar disc degeneration in rat. European Spine Journal. 27 (1), 205-213 (2017).
  20. Stuart, S., Galna, B., Delicato, L. S., Lord, S., Rochester, L. Direct and indirect effects of attention and visual function on gait impairment in Parkinson’s disease: influence of task and turning. Eur J Neuroscience. 46 (1), 1703-1716 (2017).
  21. Milosevic, I., et al. Recruitment of endophilin to clathrin coated pit necks is required for efficient vesicle uncoating after fission. Neuron. 72 (4), 587-601 (2011).
  22. Shi, M., et al. Identification of glutathione S-transferase pi as a protein involved in Parkinson disease progression. Am. J. Pathol. 175 (1), 54-65 (2009).
  23. Arranz, A. M., et al. LRRK2 functions in synaptic vesicle endocytosis through a kinase-dependent mechanism. J. Cell Sci. 128, 541-552 (2015).
  24. Quadri, M., et al. Mutation in the SYNJ1 gene associated with autosomal recessive, early-onset Parkinsonism. Hum. Mutat. 34 (9), 1208-1215 (2013).
  25. Krebs, C. E., et al. The Sac1 domain of SYNJ1 identified mutated in a family with early-onset progressive Parkinsonism with generalized seizures. Hum. Mutat. 34 (9), 1200-1207 (2013).
  26. Edvardson, S., et al. A deleterious mutation in DNAJC6 encoding the neuronal-specific clathrin-uncoating co-chaperone auxilin, is associated with juvenile parkinsonism. PLoS ONE. 7 (5), e36458 (2012).
  27. Cao, M., Milosevic, I., Giovedi, S., De Camilli, P. Upregulation of parkin in endophilin mutant mice. J neurosci. 34 (49), 16544-16549 (2014).
  28. Cao, M., et al. Parkinson sac domain mutation in synaptojanin 1 impairs clathrin uncoating at synapses and triggers dystrophic changes in dopaminergic axons. Neuron. 93 (4), 882-896 (2017).
  29. Farsad, K., Ringstad, N., Takei, K., Floyd, S. R., Rose, K., De Camilli, P. Generation of high curvature membranes mediated by direct endophilin bilayer interactions. J. Cell Biol. 155, 193-200 (2001).
  30. Ringstad, N., Nemoto, Y., De Camilli, P. The SH3p4/Sh3p8/SH3p13 protein family: binding partners for synaptojanin and dynamin via a Grb2-like Src homology 3 domain. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94 (16), 8569-8574 (1997).
  31. Ringstad, N., et al. Endophilin/SH3p4 is required for the transition from early to late stages in clathrin-mediated synaptic vesicle endocytosis. Neuron. 24 (1), 143-154 (1999).
  32. Ringstad, N., Nemoto, Y., De Camilli, P. J. Differential expression of endophilin 1 and 2 dimers at central nervous system synapses. Biol. Chem. 276 (44), 40424-40430 (2001).
  33. Verstreken, P., et al. Endophilin mutations block clathrin-mediated endocytosis but not neurotransmitter release. Cell. 109 (1), 101-112 (2002).
  34. Boucrot, E., et al. Endophilin marks and controls a clathrin-independent endocytic pathway. Nature. 517, 460-465 (2015).
  35. Takezawa, N., Mizuno, T., Seo, K., Kondo, M., Nakagawa, M. Gait disturbances related to dysfunction of the cerebral cortex and basal ganglia. Brain Nerve. 62 (11), 1193-1202 (2010).
  36. Wahlsten, D. . Mouse Behavioral Testing: How to Use Mice in Behavioral Neuroscience. , (2010).
  37. Guillot, T. S., Asress, S. A., Richardson, J. R., Glass, J. D., Miller, G. D. Treadmill Gait Analysis Does Not Detect Motor Deficits in Animal Models of Parkinson’s Disease or Amyotrophic Lateral Sclerosis. J Mot Behav. 40 (6), 568-577 (2008).
  38. Hampton, T. G., Amende, I. Treadmill gait analysis characterizes gait alterations in Parkinson’s disease and amyotrophic lateral sclerosis mouse models. J Mot Behav. 42 (1), 1-4 (2010).
  39. Glajch, K. E., Fleming, S. M., Surmeier, D. J., Osten, P. Sensorimotor assessment of the unilateral 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease. Behav Brain Res. 230 (2), 309-316 (2012).
  40. Takayanagi, N., et al. Pelvic axis-based gait analysis for ataxic mice. J Neurosci Methods. 219 (1), 162-168 (2013).
  41. Zhou, M., et al. Gait analysis in three different 6-hydroxydopamine rat models of Parkinson’s disease. Neurosci Lett. 584, 184-189 (2015).
  42. Geldenhuys, W. J., Guseman, T. L., Pienaar, I. S., Dluzen, D. E., Young, J. W. A novel biomechanical analysis of gait changes in the MPTP mouse model of Parkinson’s disease. PeerJ. 3, e1175 (2015).
  43. Baldwin, H. A., Koivula, P. P., Necarsulmer, J. C. Step Sequence is a Critical Gait Parameter of Unilateral 6-OHDA Parkinson’s Rat Models. Cell Transplant. 26 (4), 659-667 (2017).
  44. Carter, R. J., Morton, J., Dunnett, S. B. Motor coordination and balance in rodents. Curr Protoc Neurosci. , (2001).
  45. Milosevic, I. Revisiting the Role of Clathrin-Mediated Endocytosis in Synaptic Vesicle Recycling. Front Cell Neurosci. , (2018).
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Citar este artículo
Rostosky, C. M., Milosevic, I. Gait Analysis of Age-dependent Motor Impairments in Mice with Neurodegeneration. J. Vis. Exp. (136), e57752, doi:10.3791/57752 (2018).

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