Summary

해삼 장 세포의 1 차적인 배양에 있는 세포자멸 유도 그리고 탐지

Published: January 21, 2020
doi:

Summary

이 프로토콜은 해삼 Apostichopus japonicus에서 장 세포를 배양하는 다루기 쉬운 방법을 제공하며 에키노더마타, 연체 동물 및 갑각류를 포함한 해양 생물에서 널리 이용 가능한 다양한 조직 샘플과 호환됩니다.

Abstract

1 차 배양 세포는 생물학적 물질의 기능적 평가 또는 특정 생물학적 활동의 특성화를 위한 매우 중요한 도구로서 다양한 과학 분야에서 사용된다. 그러나, 보편적으로 적용 가능한 세포 배양 배지 및 프로토콜의 부족으로 인해, 해양 생물에 대한 잘 설명된 세포 배양 방법은 여전히 제한적이다. 한편, 해양 무척추 동물 세포의 일반적으로 발생하는 미생물 오염 및 다색 특성은 해양 무척추 동물에 대한 효과적인 세포 배양 전략의 수립을 더욱 방해합니다. 여기서, 우리는 해삼 Apostichopus japonicus에서장 세포를 배양하기위한 다루기 쉬운 방법을 설명합니다. 추가적으로, 우리는 1 차적인 배양된 장 세포에 있는 시험관 내 apoptosis 유도 그리고 탐지의 보기를 제공합니다. 더욱이, 본 실험은 적절한 배양 배지 및 세포 수집 방법에 대한 세부정보를 제공한다. 기재된 프로토콜은 에키노더마타, 연체루스카 및 갑각류를 포함한 해양 생물로부터 널리 이용 가능한 다양한 조직 샘플과 호환되며, 여러 체외 실험 응용 분야에 충분한 세포를 제공할 수 있다. 이 기술은 연구원이 해양 무척추 동물에서 1 차적인 세포 배양을 능률적으로 조작하고 세포에 표적으로 한 생물학 물질의 기능적인 평가를 촉진하기 위하여 가능하게 할 것입니다.

Introduction

인위적으로 통제된 조건하에서 세포를 배양하는 것은 자연 환경이 아니라 생물학적 연구를 위한 균일한 실험 물질을 제공하며, 특히 실험실 환경에서 쉽게 배양할 수 없는 종에 대해 균일한 실험 물질을 제공합니다. 해양 무척추 동물은 모든 동물 종의 30 % 이상을차지하며,재생2,3,스트레스 반응 4 및 환경 적응5,6과같은 특정 생물학적 과정의 규제 메커니즘에 대한 연구를 수행하기위한 수많은 생물학적 물질을 제공합니다.

해삼, 아포스코푸스 japonicus,북태평양 해안을 따라 온대 바다를 서식하는 가장 연구 된 echinoderm 종 중 하나입니다. 그것은 잘 상업적으로 중요한 종으로 알려져 있으며, 특히 중국7,동아시아에서 대규모로 마리 컬쳐. A. japonicus에관한 수많은 과학적 질문, 억제 후 장 재생 기본 규제메커니즘을 포함 하 여 8 및 aestivation에서 변성9,대사 제어10,11,그리고 면역 반응12,13 열 또는 병원 성 스트레스 에서, 연구원의 관심을 끌고 있다. 그러나, 잘 연구된 모형 동물과 비교해, 기초 연구, 특히 세포 수준에, 고급 세포 배양 방법의 부족과 같은 기술적인 병목 현상에 의해 제한됩니다.

연구원은 세포주 를 확립하기 위하여 많은 노력을 바쳤습니다, 그러나 또한 많은 도전을 직면하고 어떤 해양 무척추 동물에게서 세포주도 아직14설치되지않았습니다. 그러나, 해양 무척추 동물에서 1 차적인 세포 배양은 지난 수십 년 동안15,16에서진보하고, 그(것)들은 세포 수준에 실험을 위한 기회를 제공했습니다. 예를 들어, A. japonicus로부터의 재생 인테신은 해양 무척추동물(17)의1차 세포 배양에 대한 실용적인 방법을 제공하는 장기 세포 배양용 세포의 공급원으로 활용되고 있다. 이 프로토콜은 결합및 최적화된 무척추동물 세포 배양 접근법과 해삼 또는 다른 해양 무척추동물에 대한 널리 적합한 1차 배양 방법을 개발하였다.

세포 사멸은 다양한 외인성 및 내인성 자극에 의해 유발되는 본질적인 세포 자살 프로그램입니다. 조율된 아포토시스는 많은 생물학적 계에18,19,및 수거 9 시 동안 해삼의 장 회귀에 연루되어있다. 관심있는 유기체에서 세포 사멸 과정을 조사하기 위해 Hoechst 염색 및 현미경 분석법을 포함한 일련의 방법이20개 확립되고 성공적으로 적용되었습니다. 여기에서, 우리는 해양 무척추 동물의 생물학 연구결과에 있는 1 차적인 세포의 유용성을 평가하기 위하여 해삼의 1 차배양된 장세포에서 apoptosis 유도 그리고 탐지를 실시했습니다. 일반적으로 사용되는 합성 글루코코르티코스테로이드(21) 중하나인 덱사메타손은 해삼에서 배양된 장세포에서 세포사멸을 유도하는데 사용되었으며, 현저한 Hoechst 33258 신호는 형광 현미경검사법에 의해 염색된 세포에서 성공적으로 검출되었다.

Protocol

1. 세포 배양 배지 준비 Coelomic 유체 준비 Coelomic 유체 수집: 멸균 조건하에서 건강한 해삼 (85-105g의 젖은 무게)을 해부하고, coelomic 액체를 수집하고 멸균 유리 플라스크에 보관하십시오. Coelomic 세포 제거: 50 mL 원심분리기 튜브에서 50 mL 원심분리기 튜브에서 5 분 동안 1,700 x g의 coelomic 유체를 원심 분리하고 상구체를 새로운 멸균…

Representative Results

여기에서, 우리는 A. japonicus의 1 차적인 장 세포 배양을 설치하고 세포를 통과했습니다. 그림 1은 배양의 상이한 단계에서 둥근 세포를 나타낸다. 그리고 EdU 염색 검정은 나중 단계에서 이들 둥근 세포의 증식 활성을 밝히기 위한 직접적인 증거를제공한다(도 2). 우리는 또한 약간 프로토콜을 조정, 대신 여과 된 세포의 다진 조직 블록을 배양; 또?…

Discussion

광범위한 연구 노력은 지난 수십 년 동안 세포주 확립에 전념해 왔지만, 해양 무척추 동물14,22로부터세포의 장기 배양에 진전을 이루기는 여전히 어렵다. 홀로투리안 조직을 재생시키는 것으로부터 배양된 세포는 장기간 생존가능하고 증식의 높은 활성이 특이적세포(17,23)에서검출될 수 있다고 보고되었다. ?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 그의 기술적 조언과 사용하기 위해 자신의 실험실의 장비를 만들기위한 절강 대학에서 Naiming 저우 교수에게 감사드립니다. 이 작품은 중국 국립 자연 과학 재단 (보조금 번호 41876154, 41606150, 및 41406137)과 절강 성 대학 및 연구 기관의 기초 연구 기금 [보조금 번호 2019JZ00007)에 의해 재정적으로 지원되었습니다. ].

Materials

0.1 μm filter Millipore SLVV033RS
0.22 μm filter Millipore SLGP033RB
0.25% Trypsin Genom GNM25200
100 μm filter Falcon 352360
4 cm dishes ExCell Bio CS016-0124
4% paraformaldehyde solution Sinopharm Chemical Reagent 80096618 in PBS
Benchtop Centrifuges Beckman Allegra X-30R
BeyoClick EdU-488 kit Beyotime C0071S
CaCl2 Sinopharm Chemical Reagent 10005817
Constant temperature incubator Lucky Riptile HN-3
Dexamethasone Sinopharm Chemical Reagent XW00500221
Electric thermostatic water bath senxin17 DK-S28
Ethanol Sinopharm Chemical Reagent 80176961 75%
Fibroblast Growth Factor(FGF) PEPROTECH 100-18B
Fluorescent microscope Leica DMI3000B DMI3000B
Garamycin Sinopharm Chemical Reagent XW14054101
Glucose Sinopharm Chemical Reagent 63005518
Hoechst33258 Staining solution Beyotime C1017
Insulin Sinopharm Chemical Reagent XW1106168001
Insulin like Growth Factor(IGF) PEPROTECH 100-11
KCl Sinopharm Chemical Reagent 10016308
Leibovitz's L-15 Genom GNM41300
L-glutamine (100 mg/mL) Genom GNM-21051
MgCl2 Sinopharm Chemical Reagent XW77863031
Na2SO4 Sinopharm Chemical Reagent 10020518
NaCl Sinopharm Chemical Reagent 10019308
NaOH Sinopharm Chemical Reagent 10019718
PBS Solarbio P1020 pH7.2-7.4
Penicillin-Streptomycin Genom GNM15140
PH meter Bante A120
Taurine SIGMA T0625
VE Seebio 185791

Referencias

  1. Naganuma, T., Degnan, B. M., Horikoshi, K., Morse, D. E. Myogenesis in primary cell cultures from larvae of the abalone, Haliotis rufescens. Molecular Marine Biology and Biotechnology. 3 (3), 131-140 (1994).
  2. Reinardy, H. C., Emerson, C. E., Manley, J. M., Bodnar, A. G. Tissue regeneration and biomineralization in sea urchins: role of Notch signaling and presence of stem cell markers. Plos One. 10 (8), 0133860 (2015).
  3. Schaffer, A. A., Bazarsky, M., Levy, K., Chalifa-Caspi, V., Gat, U. A transcriptional time-course analysis of oral vs. aboral whole-body regeneration in the Sea anemone Nematostella vectensis. Bmc Genomics. 17, 718 (2016).
  4. Chiaramonte, M., Inguglia, L., Vazzana, M., Deidun, A., Arizza, V. Stress and immune response to bacterial LPS in the sea urchin Paracentrous lividus (Lamarck, 1816). Fish and Shellfish Immunology. 92, 384-394 (2019).
  5. Meng, J., Wang, T., Li, L., Zhang, G. Inducible variation in anaerobic energy metabolism reflects hypoxia tolerance across the intertidal and subtidal distribution of the Pacific oyster (Crassostrea gigas). Marine Environmental Research. 138, 135-143 (2018).
  6. Han, G., Zhang, S., Dong, Y. Anaerobic metabolism and thermal tolerance: The importance of opine pathways on survival of a gastropod after cardiac dysfunction. Integrative Zoology. 12 (5), 361-370 (2017).
  7. Zhang, X., et al. The sea cucumber genome provides insights into morphological evolution and visceral regeneration. PLoS Biology. 15 (10), 2003790 (2017).
  8. Sun, L., et al. iTRAQ reveals proteomic changes during intestine regeneration in the sea cucumber Apostichopus japonicus. Comparative Biochemistry and Physiology Part D: Genomics and Proteomics. 22, 39-49 (2017).
  9. Xu, K., et al. Cell loss by apoptosis is involved in the intestinal degeneration that occurs during aestivation in the sea cucumber Apostichopus japonicus. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. 216, 25-31 (2018).
  10. Yang, H. S., et al. Metabolic characteristics of sea cucumber Apostichopus japonicus (Selenka) during aestivation. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 330 (2), 505-510 (2006).
  11. Xiang, X. W., et al. Glycolytic regulation in aestivation of the sea cucumber Apostichopus japonicus: evidence from metabolite quantification and rate-limiting enzyme analyses. Marine biology. 163 (8), 1-12 (2016).
  12. Jiang, L., et al. A feedback loop involving FREP and NF-kappaB regulates the immune response of sea cucumber Apostichopus japonicus. International Journal of Biological Macromolecules. 135, 113-118 (2019).
  13. Zhou, X., Chang, Y., Zhan, Y., Wang, X., Lin, K. Integrative mRNA-miRNA interaction analysis associate with immune response of sea cucumber Apostichopus japonicus based on transcriptome database. Fish and Shellfish Immunology. 72, 69-76 (2018).
  14. Cai, X., Zhang, Y. Marine invertebrate cell culture: a decade of development. Journal of Oceanography. 70 (5), 405-414 (2014).
  15. Maselli, V., Xu, F., Syed, N. I., Polese, G., Di Cosmo, A. A Novel Approach to Primary Cell Culture for Octopus vulgaris Neurons. Frontiers in Physiology. 9, 220 (2018).
  16. Pinsino, A., Alijagic, A. Sea urchin Paracentrotus lividus immune cells in culture: formulation of the appropriate harvesting and culture media and maintenance conditions. Biology Open. 8 (3), (2019).
  17. Odintsova, N. A., Dolmatov, I. Y., Mashanov, V. S. Regenerating holothurian tissues as a source of cells for long-term cell cultures. Marine Biology. 146 (5), 915-921 (2005).
  18. Rastogi, R. P., Richa, R. P., Sinha, R. P. Apoptosis: Molecular Mechanisms and Pathogenicity. Excli Journal. 8, 155-181 (2009).
  19. Wan, L., et al. Apoptosis, proliferation, and morphology during vein graft remodeling in rabbits. Genetics and Molecular Research. 15 (4), (2016).
  20. Kasibhatla, S., et al. Staining of suspension cells with hoechst 33258 to detect apoptosis. Cold Spring Harbor Protocols. 2006 (3), (2006).
  21. Mikiewicz, M., Otrocka-Domagala, I., Pazdzior-Czapula, K., Rotkiewicz, T. Influence of long-term, high-dose dexamethasone administration on proliferation and apoptosis in porcine hepatocytes. Research in Veterinary Science. 112, 141-148 (2017).
  22. Rinkevich, B. Cell cultures from marine invertebrates: new insights for capturing endless stemness. Marine Biotechnology. 13 (3), 345-354 (2011).
  23. Bello, S. A., Abreu-Irizarry, R. J., Garcia-Arraras, J. E. Primary cell cultures of regenerating holothurian tissues. Methods in Molecular Biology. 1189, 283-297 (2015).
  24. Yu, H., et al. Impact of water temperature on the growth and fatty acid profiles of juvenile sea cucumber Apostichopus japonicus (Selenka). Journal of Thermal Biology. 60, 155-161 (2016).

Play Video

Citar este artículo
Wang, T., Chen, X., Xu, K., Zhang, B., Huang, D., Yang, J. Apoptosis Induction and Detection in a Primary Culture of Sea Cucumber Intestinal Cells. J. Vis. Exp. (155), e60557, doi:10.3791/60557 (2020).

View Video