Summary

Un système Explant pour les études d’imagerie time-lapse de l’assemblage de circuits olfactifs chez la drosophile

Published: October 13, 2021
doi:

Summary

Ce protocole décrit la procédure de dissection, l’état de culture et l’imagerie en direct d’un système d’explantation antenne-cerveau pour l’étude de l’assemblage du circuit olfactif.

Abstract

Les neurones sont précisément interconnectés pour former des circuits essentiels au bon fonctionnement du cerveau. Le système olfactif de la drosophile fournit un excellent modèle pour étudier ce processus puisque 50 types de neurones récepteurs olfactifs (ORN) des antennes et des palpes maxillaires projettent leurs axones à 50 glomérules identifiables dans le lobe de l’antenne et forment des connexions synaptiques avec les dendrites de 50 types de neurones de projection de second ordre (NP). Les études précédentes se sont principalement concentrées sur l’identification de molécules importantes qui régulent le ciblage précis dans le circuit olfactif à l’aide de tissus fixes. Ici, un système d’explantation antenne-cerveau qui récapitule les étapes clés du développement de l’assemblage du circuit olfactif en culture est décrit. En disséquant la cuticule externe et en nettoyant les corps gras opaques recouvrant le cerveau nymphal en développement, des images de haute qualité de neurones uniques provenant de cerveaux vivants peuvent être collectées à l’aide de la microscopie à deux photons. Cela permet l’imagerie en accéléré d’un seul axone ORN ciblant à partir de tissus vivants. Cette approche aidera à révéler les contextes biologiques cellulaires importants et les fonctions importantes de gènes importants précédemment identifiés et à identifier les mécanismes qui sous-tendent le processus dynamique d’assemblage de circuits.

Introduction

Les neurones sont précisément interconnectés pour former des circuits essentiels au bon fonctionnement du cerveau. Depuis plus de 100 ans, les neuroscientifiques tentent de comprendre comment les neurites s’étendent vers leurs cibles intermédiaires et finales avec une extrême précision. En conséquence, ils ont identifié des gènes importants qui codent des signaux de guidage pour le développement de processus neuronaux1. Le système olfactif de la drosophile fournit un excellent modèle pour étudier ce processus puisque les neurones récepteurs olfactifs (ORN, les neurones sensoriels primaires) projettent à 50 glomérules identifiables avec une taille, une forme et une position relative stéréotypées, où ils forment des connexions synaptiques avec des dendrites à partir de 50 types de neurones de projection (NP) de second ordre, chacun envoyant des dendrites à l’un des 50 glomérules2 (Figure 1A ). Par conséquent, il est relativement facile d’identifier des phénotypes mutants à résolution synaptique (glomérulaire) dans le système olfactif de la mouche. Cela a conduit à la découverte de gènes importants qui régulent l’assemblage du circuitolfactif 3.

L’assemblage du circuit olfactif de la mouche repose sur des processus de développement coordonnés temporellement et spatialement3. Les ORN et les NP acquièrent des destins cellulaires distincts, ce qui met en place le programme pour leurs spécificités de câblage. Ensuite, les dendrites PN prémodèlent le lobe de l’antenne (Figure 1B). Les axones des ORN font ensuite le tour du lobe de l’antenne ipsilatérale et traversent la ligne médiane du cerveau pour atteindre le lobe de l’antenne controlatérale. Par la suite, les axones ORN envahissent les lobes antennes ipsi- et controlatéral et forment des synapses avec des dendrites de leurs PN partenaires dans des glomérules spécifiques. Ce modèle grossier pour l’assemblage de circuits olfactifs a été proposé sur la base de la caractérisation d’échantillons fixes à partir de points temporels intermédiaires au cours du développement. La mauvaise résolution temporelle et l’incapacité à suivre les mêmes processus neuronaux tout au long du développement à partir de tissus fixes limitent la compréhension mécaniste du processus d’assemblage de circuits.

Il est techniquement difficile de vivre des processus ORN et PN d’image in vivo, car le processus de câblage se produit dans la première moitié du stade nymphal lorsque le lobe de l’antenne est entouré d’un corps gras opaque à l’intérieur du boîtier nymphal. Il est donc impossible d’imager directement le circuit olfactif en développement à partir de pupes intactes. Les tissus disséqués cultivés ex vivo peuvent contourner l’opacité tissulaire et ont été utilisés avec succès pour étudier le développement neuronal 4,5,6. Le défi d’utiliser une stratégie de culture explant ex vivo similaire pour étudier le câblage neuronal dans le cerveau nymphal est de savoir s’il récapitule le ciblage précis des neurones dans une condition de culture. Sur la base d’une condition de culture ex vivo précédemment rapportée pour le complexe œil-cerveau de la mouche7, une explante qui contient l’ensemble du cerveau nymphal, les antennes et les nerfs antennenaires de connexion intacts a été récemment développée, qui conserve un ciblage précis du circuit olfactif et peut être soumise à une imagerie en direct basée sur la microscopie à deux photons jusqu’à 24 h à la fréquence de toutes les 20 min8 . Ici, un protocole détaillé de la culture et de l’imagerie des explants est décrit. Le système explant fournit une méthode puissante pour étudier l’assemblage du circuit olfactif et potentiellement d’autres circuits dans le cerveau central.

Protocol

1. Préparation des réactifs REMARQUE: Toutes les étapes de ce protocole sont effectuées à température ambiante (20-25 ° C), sauf indication contraire. Pour préparer la boîte de culture à l’immobilisation de l’explante lors de l’imagerie en accéléré, posez le Sylgard de 0,5 cm d’épaisseur (mélangez soigneusement deux composants liquides au rapport 10:1 avant utilisation) sur la surface inférieure d’une boîte de Petri de 60 mm x 15 mm et lais…

Representative Results

Les axones ORN arrivent au lobe de l’antenne entre 18 h et 36 h APF. Ils naviguent ensuite dans le lobe de l’antenne, traversent la ligne médiane et innervent les glomérules. La vidéo 1 est une vidéo représentative montrant l’ensemble du processus pour plusieurs axones identifiables individuellement, prise à la fréquence de toutes les 20 minutes pendant 24 h. Avant l’enregistrement à l’aide de TurboReg, les axones présentent une certaine dérive latérale à mesure que le cerveau se d?…

Discussion

L’explante cerveau antennes-drosophiles conserve un ciblage normal du circuit olfactif. Nous avons remarqué que le développement est 2 fois plus lent ex vivo par rapport à in vivo. Il est à noter que le système explant ne retient pas le palpe maxillaire, qui héberge six types d’ORN. Pour assurer un développement normal récapitulé ex vivo, l’étirement des nerfs antennels doit être évité pendant la dissection explant. Au cours de la culture ex vivo, la croissa…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions N. Özel et R. Hiesinger pour leurs conseils sur la culture des explants; M. Wagner pour l’aide technique de la microscopie à deux photons; D.J. Luginbuhl pour la génération de mouches transgéniques; D. Friedmann pour des suggestions d’analyse de logiciels fidjiens; Y. Ge pour l’assistance au travail à la volée; C. McLaughlin et K.K.L. Wong pour leurs commentaires sur le manuscrit. L.L. est un chercheur du Howard Hughes Medical Institute. Ce travail a été soutenu par les subventions 1K99DC01883001 (à T.L.) et R01-DC005982 (à L.L.).

Materials

20-hydroxyecdysone Sigma H5142
Chameleon Ti:Sapphire laser Coherent Coherent MRU X1
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 10082147
Human insulin Thermo Fisher Scientific 12585014
Imaging software Prairie
Micro Scissors World Precision Instruments 501778
Minutien Pins Fine Science Tools 26002-10
Oxygen cylinder Praxair OX M-E
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
Schneider’s Drosophila Medium Thermo Fisher Scientific 21720024
SYLGARD 184 Silicone Elastomer Thermo Fisher Scientific NC0162601
Two-photon microscopy Bruker
water immerse objective (20X) Zeiss 421452-9800-000

Referencias

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Citar este artículo
Li, T., Luo, L. An Explant System for Time-Lapse Imaging Studies of Olfactory Circuit Assembly in Drosophila. J. Vis. Exp. (176), e62983, doi:10.3791/62983 (2021).

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