Summary

Isolement de cellules endothéliales glomérulaires de souris immortalisées conditionnellement avec des mitochondries fluorescentes

Published: September 13, 2022
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Summary

L’article décrit la méthode d’isolement des cellules endothéliales glomérulaires immortalisées conditionnellement des reins de souris transgéniques exprimant le virus simien thermolabile 40 et les mitochondries photo-activables, PhAMexcisée. Nous décrivons la procédure d’isolement des glomérules à partir de reins entiers à l’aide de billes, d’étapes de digestion, d’ensemencement et de culture de GECs-CD31 positifs.

Abstract

Le dysfonctionnement des cellules endothéliales glomérulaires (GEC) peut initier et contribuer à la dégradation de la barrière de filtration glomérulaire. L’augmentation du stress oxydatif mitochondrial a été suggérée comme un mécanisme entraînant un dysfonctionnement GEC dans la pathogenèse de certaines maladies glomérulaires. Historiquement, l’isolement des GEC des modèles in vivo a été notoirement difficile en raison des difficultés à isoler les cultures pures des glomérules. Les GEC ont des besoins de croissance complexes in vitro et une durée de vie très limitée. Ici, nous décrivons la procédure d’isolement et de culture de GEC conditionnellement immortalisés avec des mitochondries fluorescentes, permettant le suivi des événements de fission et de fusion mitochondriales. Les GEC ont été isolés à partir des reins d’une double souris transgénique exprimant le thermolabile SV40 TAg (de l’Immortomouse), favorisant conditionnellement la prolifération et supprimant la différenciation cellulaire, et une protéine fluorescente photoconvertible (Dendra2) dans toutes les mitochondries (de la souris photo-activable mitochondria [PhAMexcisée]). La lignée cellulaire stable générée permet la différenciation cellulaire après inactivation du gène TAg immortalisant SV40 et la photo-activation d’un sous-ensemble de mitochondries provoquant un passage de la fluorescence du vert au rouge. L’utilisation de mitoDendra2-GECs permet d’imager en direct les événements de distribution, de fusion et de fission des mitochondries fluorescentes sans colorer les cellules.

Introduction

Le glomérule est essentiel pour la filtration du sang en limitant le passage des grosses molécules à travers la barrière de filtration glomérulaire 1,2. Le glomérule contient quatre types de cellules: les cellules épithéliales pariétales, les podocytes (cellules épithéliales viscérales), les cellules endothéliales glomérulaires (GEC) et les cellules mésangiales3. L’endothélium glomérulaire est caractérisé par une structure vasculaire unique, selon la présence de fenestrae nécessaires pour de grands volumes de filtration4. La surface apicale de l’endothélium glomérulaire est recouverte d’une couche de glycocalyx chargée négativement et d’une couche appelée couche de surface endothéliale qui crée un espace entre l’endothélium et le sang. Cette structure assure une sélectivité de charge élevée limitant le passage des molécules chargées négativement telles que l’albumine et empêchant l’adhésion leucocytaire et plaquettaire5.

Les GEC sont très sensibles aux changements métaboliques, tels que l’hyperglycémie associée au milieu diabétique. En effet, le diabète entraîne une circulation accrue des substances nocives, la saturation des voies métaboliques du glucose, et une perturbation de l’équilibre redoxcellulaire 3,6. De plus, l’augmentation des espèces réactives de l’oxygène induit un dysfonctionnement mitochondrial, ce qui affecte la fonction endothéliale7.

L’objectif global du protocole actuel est d’isoler les cellules endothéliales glomérulaires immortalisées présentant des caractéristiques mitochondriales fluorescentes. En effet, la culture cellulaire des GEC primaires a un cycle prolifératif limité et une sénescence précoce8. De plus, la présence de mitochondries fluorescentes aide à examiner les événements de fission et de fusion en réponse à l’hyperglycémie ou à tout autre traitement. Comme méthode alternative, d’autres laboratoires ont utilisé h-TERT pour immortaliser les cellules in vitro9.

La méthode décrite ici permet d’isoler des cellules endothéliales glomérulaires mitoDendra2 immortalisées sous condition chez des animaux âgés de 4 à 6 semaines (Figure 1). Ce protocole détaillé décrit l’utilisation de souris transgéniques (H-2K b-tsA58) hébergeant le gène 10,11 du grand antigène tumoral du virus simien 40 (SV40 TAg) pour générer des cellules thermolabiles immortalisées sous condition. Le produit du gène TAg tsA58 est fonctionnel à la température permissive de 33 °C sous le contrôle du promoteur flanquant 5′ inductible du gène H-2Kb de la souris, qui est augmenté au-dessus des niveaux basaux lors de l’exposition à l’interféron gamma (IFNγ), maintenant ainsi le phénotype de prolifération conditionnelle12. H-2Kb se dégrade rapidement à la température non permissive de 37 °C en l’absence d’IFNγ, supprimant la fonction immortalisant du tsA58Tag dans les cellules et permettant aux cellules de développer un phénotype 13,14,15 plus différencié. Le croisement optionnel de souris transgéniques H-2Kb-tsA58 avec des souris PhAM, qui expriment un Dendra2-vert spécifique aux mitochondries (sous-unité VIII de la cytochrome c oxydase), permet la détection en direct de mitochondries fluorescentes16. La fluorescence verte Dendra2 passe à la fluorescence rouge après exposition à un laser 405 nm16. Lorsque les mitochondries fusionnent après photo-commutation, elles forment des formes allongées qui apparaissent jaunes à cause de l’échange de matière verte et jaune ou apparaissent rouges lorsqu’elles subissent une fission 7,17. Les mitoDendra2-GECs sont un excellent outil pour étudier les réponses cellulaires des mitochondries GEC à différents stimuli.

Protocol

Toutes les procédures animales décrites ici ont été approuvées par l’IACUC de l’École de médecine Icahn du Mont Sinaï. Nous avons utilisé trois souris mâles (souris transgéniques H-2Kb-tsA58 avec des mitochondries photo-activables [PhAM]) achetées au laboratoire Jackson et maintenues sur un régime alimentaire normal. 1. Conditions de travail et préparatifs Nettoyez l’espace de travail à l’intérieur de la hotte à flux laminaire en utilisant 70…

Representative Results

Dans cet article, un protocole détaillé pour l’isolement de cellules endothéliales glomérulaires immortalisées sous condition avec des mitochondries fluorescentes stables (mitoDendra2-GECs) est décrit (Figure 1). L’utilisation de jeunes souris âgées de 6 à 10 semaines est essentielle pour obtenir un nombre important de cellules saines. Après 3 jours de culture, les cellules commencent à croître lentement à partir des glomérules isolés, comme le montre …

Discussion

Les mitochondries sont essentielles au métabolisme cellulaire, à l’homéostasie et aux réponses au stress, et leur dysfonctionnement est lié à de nombreuses maladies, y compris les maladies rénales. Les mitochondries jouent un rôle dans la génération pathologique d’espèces réactives excessives de l’oxygène (ROS), la régulation des niveaux de calcium intracellulaire, les voies de mort cellulaire et la dynamique cytosquelettique21,22,23</sup…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs remercient le professeur Cijiang He et le Dr Fu Jia pour leurs connaissances sur l’isolement des cellules endothéliales chez la souris et remercient le professeur Mone Zaidi d’avoir fourni les sourisexcisées PhAM et des discussions précieuses. Les auteurs aimeraient également remercier le CORE de microscopie de l’École de médecine Icahn du Mont Sinaï et le personnel pour les conseils que nous avons reçus. Ce travail a été soutenu par des subventions de la subvention R01DK097253 des National Institutes of Health et de la subvention CDMRP E01 W81XWH2010836 du ministère de la Défense à I.S.D.

Materials

100 µm cell strainer Fisher 22-363-549
1ml Insulin Syringes BD 329424
25G butterfly BD 367298
3 mm cutting edge scissors F.S.T 15000-00
30ml syringe BD Biooscience 309650
40 µm cell strainer Fisher 22-363-547
40 µm nylon mesh
Bonn Scissors F.S.T 14184-09
Bovine serum albumin Fisher BP1600-100
CD31 abcam ab7388
Collagenase type I Corning 354236
Collagenase type II SIGMA C6885 125CDU/mg
Collagene type IV SIGMA C5533-5M
Dnase-I Qiagen 79254
Dynabeads 450 Thermofisher Scientific 14013
endothelial cells growth medium Lonza cc-3156
Extra fine graefe forceps F.S.T 11150-10
FBS Gemini 100-106 Heat inactivated
Fibronectin Thermofisher 33016015
Fine forceps F.S.T Dumont E6511
HBSS GIBCO 14065-056
IFNg Cell Science CRI001B
Immortomouse Jackson laboratory 32619 Tg(H2-K1-tsA58)6Kio/LicrmJ
L-Glutamine 100x Thermofisher Scientific 25030081
Magnetic particle concentrator Thermofisher Scientific 12320D
mitotracker Thermofisher Scientific M7512
PBS 1X Corning 46-013-CM
penecillin streptomycin 100x Thermofisher Scientific 10378016
PhaM mice Jackson laboratory 18397 B6;129S-Gt(ROSA)26Sortm1.1(CAG-COX8A/Dendra2)Dcc/J
Protease (10 mg/ml) SIGMA P6911
RPMI GIBCO 3945
Sodium Pyruvate 100mM Thermofisher Scientific 11360070
Standard pattern forceps  F.S.T 11000-12
Surgical Scissors – Sharp-Blunt F.S.T 14008-14
synaptopodin Santa Cruz sc-515842
Trypsin 0.05% Thermofisher Scientific 25300054

Referencias

  1. Daehn, I. S., Duffield, J. S. The glomerular filtration barrier: A structural target for novel kidney therapies. Nature Reviews. Drug Discovery. 20 (10), 770-788 (2021).
  2. Fu, J., Lee, K., Chuang, P. Y., Liu, Z., He, J. C. Glomerular endothelial cell injury and cross talk in diabetic kidney disease. American Journal of Physiology. Renal Physiology. 308 (4), 287-297 (2015).
  3. Lassen, E., Daehn, I. S. Molecular mechanisms in early diabetic kidney disease: Glomerular endothelial cell dysfunction. International Journal of Molecular Sciences. 21 (24), 9456 (2020).
  4. Haraldsson, B., Jeansson, M. Glomerular filtration barrier. Current Opinion in Nephrology and Hypertension. 18 (4), 331-335 (2009).
  5. Yilmaz, O., Afsar, B., Ortiz, A., Kanbay, M. The role of endothelial glycocalyx in health and disease. Clinical Kidney Journal. 12 (5), 611-619 (2019).
  6. Giacco, F., Brownlee, M. Oxidative stress and diabetic complications. Circulation Research. 107 (9), 1058-1070 (2010).
  7. Daehn, I. S. Glomerular endothelial cell stress and cross-talk With podocytes in early [corrected] diabetic kidney disease. Frontiers in Medicine. 5, 76 (2018).
  8. Satchell, S. C., et al. Conditionally immortalized human glomerular endothelial cells expressing fenestrations in response to VEGF. Kidney International. 69 (9), 1633-1640 (2006).
  9. Wieser, M., et al. hTERT alone immortalizes epithelial cells of renal proximal tubules without changing their functional characteristics. American Journal of Physiology. Renal Physiology. 295 (5), 1365-1375 (2008).
  10. Jat, P. S., et al. Direct derivation of conditionally immortal cell lines from an H-2Kb- tsA58 transgenic mouse. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5096-5100 (1991).
  11. Jat, P. S., Sharp, P. A. Cell lines established by a temperature-sensitive simian virus 40 large- T-antigen gene are growth restricted at the nonpermissive temperature. Molecular and Cellular Biology. 9 (4), 1672-1681 (1989).
  12. Israel, A., Kimura, A., Fournier, A., Fellous, M., Kourilsky, P. Interferon response sequence potentiates activity of an enhancer in the promoter region of a mouse H-2 gene. Nature. 322 (6081), 743-746 (1986).
  13. Mundel, P., et al. Rearrangements of the cytoskeleton and cell contacts induce process formation during differentiation of conditionally immortalized mouse podocyte cell lines. Experimental Cell Research. 236 (1), 248-258 (1997).
  14. Ohse, T., et al. Establishment of conditionally immortalized mouse glomerular parietal epithelial cells in culture. Journal of the American Society of Nephrology. 19 (10), 1879-1890 (2008).
  15. Rops, A. L., et al. Isolation and characterization of conditionally immortalized mouse glomerular endothelial cell lines. Kidney International. 66 (6), 2193-2201 (2004).
  16. Pham, A. H., McCaffery, J. M., Chan, D. C. Mouse lines with photo-activatable mitochondria to study mitochondrial dynamics. Genesis. 50 (11), 833-843 (2012).
  17. Archer, S. L. Mitochondrial dynamics–Mitochondrial fission and fusion in human diseases. The New England Journal of Medicine. 369 (23), 2236-2251 (2013).
  18. Casalena, G. A., et al. The diabetic microenvironment causes mitochondrial oxidative stress in glomerular endothelial cells and pathological crosstalk with podocytes. Cell Communication and Signaling. 18 (1), 105 (2020).
  19. Qi, H., et al. Glomerular endothelial mitochondrial dysfunction is essential and characteristic of diabetic kidney disease susceptibility. Diabetes. 66 (3), 763-778 (2017).
  20. Akis, N., Madaio, M. P. Isolation, culture, and characterization of endothelial cells from mouse glomeruli. Kidney International. 65 (6), 2223-2227 (2004).
  21. Schuler, M. H., et al. Miro1-mediated mitochondrial positioning shapes intracellular energy gradients required for cell migration. Molecular Biology of the Cell. 28 (16), 2159-2169 (2017).
  22. Tang, C., et al. Mitochondrial quality control in kidney injury and repair. Nature Reviews. Nephrology. 17 (5), 299-318 (2020).
  23. Daniel, R., Mengeta, A., Bilodeau, P., Lee, J. M. Mitochondria tether to Focal Adhesions during cell migration and regulate their size. bioRxiv. , 827998 (2019).
  24. Dylewski, J. F., et al. Isolation, purification, and conditional immortalization of murine glomerular endothelial cells of microvascular phenotype. MethodsX. 7, 101048 (2020).
  25. Drexler, H. G., Uphoff, C. C. Mycoplasma contamination of cell cultures: Incidence, sources, effects, detection, elimination, prevention. Cytotechnology. 39 (2), 75-90 (2002).
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Citar este artículo
Bouchareb, R., Yu, L., Lassen, E., Daehn, I. S. Isolation of Conditionally Immortalized Mouse Glomerular Endothelial Cells with Fluorescent Mitochondria. J. Vis. Exp. (187), e64147, doi:10.3791/64147 (2022).

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