Summary

Methode voor Whole Mount antilichaam kleuring in Chick

Published: February 02, 2009
doi:

Summary

Deze video toont ganse berg immunohistochemie, een methode waarmee de ruimtelijke en temporele expressiepatroon van een antigeen kan worden gevisualiseerd in jonge kippenembryo's. Deze methode werd oorspronkelijk geïntroduceerd door Jane Dodd en Tom Jessell.

Abstract

Het kuiken embryo is een waardevol instrument in de studie van de vroege embryonale ontwikkeling. De transparantie, toegankelijkheid en het gemak van manipulatie, maken het een ideale tool voor het bestuderen antilichaam uitdrukking in de ontwikkeling van de hersenen, neurale buis en somiet. Deze video toont de verschillende stappen in zijn geheel-mount antilichaam kleuring met behulp van HRP geconjugeerde secundaire antilichamen, de eerste plaats, het embryo wordt ontleed door het ei en gefixeerd in paraformaldehyde. Ten tweede, endogene peroxidase wordt geïnactiveerd; Het embryo wordt vervolgens blootgesteld aan primaire antilichaam. Na een aantal wasbeurten, is het embryo geïncubeerd met secundair antilichaam geconjugeerd aan HRP. Peroxidase-activiteit wordt onthuld met behulp van reactie met diaminobenzidine substraat. Tot slot wordt het embryo vast en verwerkt voor fotografie en snijden. Het voordeel van deze methode boven het gebruik van fluorescerende antilichamen is dat embryo's kunnen worden verwerkt voor het snijden was, waardoor de studie van antigeen sites in doorsnede. Deze methode werd oorspronkelijk geïntroduceerd door Jane Dodd en Tom Jessell<sup> 1</sup>.

Protocol

I. Schematisch overzicht: Deze video toont de verschillende stappen in het ganse berg immunohistochemie in kippenembryo. Eerst wordt het embryo vastgesteld in PFA [IHC1]. Vervolgens wordt de endogene peroxidase activiteit uitgeblust [IHC2]. Het embryo wordt vervolgens geïncubeerd in primaire antilichaam [IHC3]. Na een aantal wasbeurten, het embryo wordt geïncubeerd in secundaire antilichaam [IHC4]; Kleur reactie wordt geopenbaard via DAB [IHC5] en antilichaam vlekken lijkt oranje [IHC6]. </p…

Discussion

Deze video toont de verschillende stappen bij het uitvoeren van whole-mount antilichaam kleuring in jonge kippenembryo's. Dit protocol wordt hoofdzakelijk gebruikt voor de ruimtelijke en temporele karakterisering van nieuwe antilichamen in kuiken 2,3, evenals voor het gebruik van bekende antigene markers om embryonale misvormingen na belediging 4 vast te stellen.

Acknowledgements

De monoklonale antilichamen (15.3B9, PAX7) ontwikkeld door (J. Dodd, TM Jessell en A. Kawakami) werden verkregen uit de Developmental Studies Hybridoma Bank ontwikkeld onder auspiciën van de NICHD en onderhouden door de Universiteit van Iowa, Afdeling Biologische Wetenschappen , Iowa. DP is ontvanger van Ruth Kirschstein Award 1F32-01A1 DA021977 van het National Institute on Drug Abuse. Dit werk werd ondersteund door de Margaret M. Alkek Stichting RHF.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Eggs   Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH4 (16 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator Otro Lyon RX  
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13  
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFA Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
30% H2O2 Reagent Sigma H1009  
BSA Reagent Sigma A3803  
NGS Reagent Jackson Immuno 005-000-121  
Primary Antibodies Reagent Developmental studies Hybridoma Bank 4G11, 15.3B9, PAX7 For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Reagent Jackson Immuno 115-035-003  
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride Reagent Pierce 34001 Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.
Cedar wood oil Reagent Sigma W522503  
Fast green FCF Reagent Sigma F7252  
Minuten pins 0.2mm diam   Fine Science Tools 26002-20  

Referencias

  1. Yamada, T., Placzek, M., Tanaka, H., Dodd, J., Jessell, T. M. Control of cell pattern in the developing nervous system: Polarizing activity of the floor plate and notochord. Cell. 64, 635-647 (1991).
  2. Streit, A., Stern, C. D., Thery, C., Ireland, G. W., Aparicio, S., Sharpe, M. J., Gherardi, E. A role for HGF/SF in neural induction and its expression in Hensen’s node during gastrulation. Development. 121, 813-824 (1995).
  3. Basch, M., Bronner-Fraser, M., Garcia-Castro, M. Specification of neural crest occurs during gastrulation and requires Pax7. Nature. 441, 218-222 (2006).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).

Play Video

Citar este artículo
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Whole Mount Antibody Staining in Chick. J. Vis. Exp. (24), e956, doi:10.3791/956 (2009).

View Video