Summary

La cuantificación de γH2AX focos en respuesta a la radiación ionizante

Published: April 06, 2010
doi:

Summary

La cuantificación de ADN de doble filamento con la formación de estrías γH2AX como un marcador molecular se ha convertido en una herramienta indispensable en la biología de la radiación. Aquí se demuestra el uso de un ensayo de inmunofluorescencia para la cuantificación de γH2AX focos después de la exposición de las células a la radiación.

Abstract

ADN de doble filamento se rompe (DSBs), que son inducidas por cualquiera de los procesos metabólicos endógenos o por causas exógenas, son una de las lesiones del ADN más críticos con respecto a la supervivencia y la preservación de la integridad genómica. Una primera respuesta a la inducción de DSBs es la fosforilación de la variante de la histona H2A, H2AX, en la serina-139 de residuos, en el altamente conservadas C-terminal motivo SQEY, formando γH2AX<sup> 1</sup>. Después de la inducción de DSBs, H2AX es rápidamente fosforilado por la fosfatidil-inosito 3-quinasa (PIKK) de la familia de las proteínas, la ataxia telangiectasia mutada (ATM), el ADN-proteína de la subunidad catalítica y la quinasa ATM y RAD3 relacionados (ATR)<sup> 2</sup>. Por lo general, sólo unos pocos pares de bases (pb) están implicados en un OSD, sin embargo, no hay amplificación de la señal significativa, dada la importancia de las modificaciones de la cromatina en la señalización de daño en el ADN y la reparación. La fosforilación de H2AX mediada predominantemente por ATM se extiende a las áreas adyacentes de la cromatina, que afecta a aproximadamente 0,03% del total de H2AX celulares por OSD<sup> 2,3</sup>. Esto corresponde a la fosforilación de aproximadamente 2000 moléculas H2AX que abarca ~ 2 Mbps regiones de la cromatina que rodea el sitio de la OSD y los resultados en la formación de focos discretos γH2AX que pueden ser fácilmente visualizados y cuantificados por microscopía de inmunofluorescencia<sup> 2</sup>. La pérdida de γH2AX al OSD refleja reparación, sin embargo, existe cierta controversia en cuanto a lo que define la reparación completa de DSBs, se ha propuesto que la reincorporación de las dos hebras de ADN es suficiente sin embargo, también se ha sugerido que restablecimiento de la cromatina estado original de la compactación es necesario<sup> 8.4</sup>. La desaparición de γH2AX implica al menos en parte, defosforilación por fosfatasas, fosfatasa 2A y 4C fosfatasa<sup> 5,6</sup>. Además, la eliminación de γH2AX de redistribución que implican el intercambio de histonas con H2A.Z se ha implicado<sup> 7,8</sup>. Es importante destacar que el análisis cuantitativo de los focos γH2AX ha llevado a una amplia gama de aplicaciones en la investigación médica y la energía nuclear. Este sentido, demuestran el método más comúnmente utilizado de inmunofluorescencia para la evaluación de daños en el ADN inicial de detección y cuantificación de γH2AX focos en γ-irradiados queratinocitos humanos adherentes<sup> 9</sup>.

Protocol

Preparación de células Queratinocitos humanos (FEP-1811) se cultivaron en los queratinocitos-Serum medio libre (K-SFM, Invitrogen) suplementado con factor de crecimiento epidérmico, el extracto de pituitaria bovina y 20 mg / ml de gentamicina, a 37 ° C y CO 2 al 5%. Una suspensión de células individuales ha sido preparado por separar con tripsina-EDTA (0,05% v / v) Las células fueron sembradas en 8 y Laboratorio de diapositivas Tek II microcámara (10.000 células /…

Discussion

Después de la exposición a la radiación ionizante (rayos γ), γH2AX forma rápida los focos y los números de focos de alcanzar un máximo entre los 30-60 minutos 2. Por lo tanto, nuestra una hora después de la irradiación punto del tiempo refleja la formación inicial del OSD. Hemos utilizado la dosis de radiación clínicamente relevante de 2 Gy para nuestro experimento. Sin embargo, el método puede ser utilizado para la dosis de radiación hasta 4 Gy para la detección de la formación inicial del O…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

El apoyo del Instituto Australiano de Ciencia Nuclear e Ingeniería se reconoce. TCK es el ganador de premios AINSE. Laboratorio de Medicina epigenómico el apoyo de la Nacional de Salud y Consejo de Investigación Médica de Australia (566.559). LM con el apoyo de Melbourne de Investigación (Universidad de Melbourne) y de Imágenes Biomédicas becas complementarias CRC. El apoyo de Monash Micro Imaging (Drs. Stephen Cody y Carmichael Iska) fue muy valiosa para este trabajo.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Keratinocyte-Serum Free Medium (K-SFM) Media Invitrogen 17005042 Keratinocyte media supplemented with human recombinant Epidermal Growth Factor 1-53 (EGF 1-53), and Bovine Pituitary Extract (BPE).
Lab Tek lI Chamber Slides (8-well) Chamber Slides Nunc Denmark NUN154534  
Coverslips (22x50mm) Coverslips Menzel-Gläser CS2250100  
Bovine Serum Albumin (BSA)   Sigma-Aldrich A7906 BSA (1%) is used to block any non-specific antibody binding. Primary and secondary antibodies are diluted in BSA.
PBS (without Ca2+ and Mg2+)   Invitrogen 17-517Q  
0.5% Trypsin-EDTA x10   Invitrogen 15400-054 Trypsin-EDTA (0.05%) used to detach cells from culture flasks.
Triton X-100 Reagent Sigma-Aldrich T8787 Triton X-100 (0.1%) used to permeabilise cells.
Paraformaldehyde Reagent Sigma-Aldrich 158127 Paraformaldehyde (4%) used to fix cells.
Mouse monoclonal anti-phospho histone-H2AX antibody Primary Antibody Millipore 16193 Dilution of primary antibody (1:500), in 1% BSA.
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L) Secondary Antibody Invitrogen 11029 Dilution of secondary antibody (1:500), in 1% BSA.
TOPRO3 DNA Stain Invitrogen T3605 DNA stain commonly used: 4,6-diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI). Can only be used with microscopes with the appropriate excitation laser.
ProLong Gold Anti-fade solution Invitrogen P36930 Refractive index of 1.42 at 20°C.
Tissue Culture Flask, Vented Cap Culture Flask BD Falcon 353112  
Tissue Culture Dish (150x25mm) Petridish BD Falcon 353025  
Coplin Jar, glass   Grale Scientific P/L 1771-OG  
Staining Trough   Grale Scientific P/L V1991.99  
Gammacell 1000 Elite Irradiator Gamma Irradiator Nordion International Inc.    
Zeiss LSM 510 Meta Confocal Confocal Microscope      
Metamorph Software for Imaging analysis Molecular Devices, USA    

References

  1. Rogakou, E. P., Boon, C., Redon, C., Bonner, W. M. Megabase chromatin domains involved in DNA double-strand breaks in vivo. J. Cell Biol. 146, 905-916 (1999).
  2. Bonner, W. M. Gamma H2AX and cancer. Nature Reviews Cancer. 8 (12), 957-967 (2008).
  3. Savic, V. Formation of Dynamic [gamma]-H2AX Domains along Broken DNA Strands Is Distinctly Regulated by ATM and MDC1 and Dependent upon H2AX Densities in Chromatin. Molecular Cell. 34 (3), 298-310 (2009).
  4. Downs, J. Binding of chromatin-modifying activities to phosphorylated histone H2A at DNA damage sites. Mol Cell. 16 (6), 979-990 (2004).
  5. Chowdhury, D. [gamma]-H2AX Dephosphorylation by Protein Phosphatase 2A Facilitates DNA Double-Strand Break Repair. Molecular Cell. 20 (5), 801-809 (2005).
  6. Nakada, S., Chen, G., Gingras, A., Durocher, D. PP4 is a gamma H2AX phosphatase required for recovery from the DNA damage checkpoint. EMBO Rep. 9 (10), 1019-1026 (2008).
  7. Altaf, M., Auger, A., Covic, M., Côté, J. Connection between histone H2A variants and chromatin remodeling complexes. Biochem Cell Biol. 87 (1), 35-50 (2009).
  8. Kusch, T. Acetylation by Tip60 Is Required for Selective Histone Variant Exchange at DNA Lesions. Science. 306, 2084-2087 (2004).
  9. Hurlin, P. Progression of human papillomavirus type 18-immortalized human keratinocytes to a malignant phenotype. Proc Natl Acad Sci U S A. 88 (2), 570-574 (1991).
  10. Dickey, J. H2AX: functional roles and potential applications. Chromosoma. , (2009).
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Citer Cet Article
Mah, L., Vasireddy, R. S., Tang, M. M., Georgiadis, G. T., El-Osta, A., Karagiannis, T. C. Quantification of γH2AX Foci in Response to Ionising Radiation. J. Vis. Exp. (38), e1957, doi:10.3791/1957 (2010).

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