Summary

العزلة وثقافة الأطفال حديثي الولادة ماوس العضلية

Published: September 06, 2013
doi:

Summary

الأولية الثقافات الماوس cardiomyocyte هي واحدة من الأدوات المحورية للتحقيق في منظمة myofibrillar وظيفة. يصف بروتوكول التالية العزلة وثقافة العضلية الأولية من قلوب الماوس حديثي الولادة. ويمكن استخدام الثقافات cardiomyocyte الناتجة لاحقا لمجموعة متنوعة من النشاط الحيوي، فحوصات البيوكيميائية وخلايا البيولوجية.

Abstract

لطالما استخدمت العضلية الولدان مثقف لدراسة myofibrillogenesis وظائف myofibrillar. العضلية مثقف تسمح للتحقيق سهلة والتلاعب من المسارات البيوكيميائية، وتأثيرها على خصائص النشاط الحيوي للضرب عفويا العضلية.

يصف بروتوكول 2 يوما بعد العزلة وثقافة العضلية الماوس حديثي الولادة. وتبين لنا كيفية تشريح بسهولة قلوب من حديثي الولادة، فصل الأنسجة العضلية القلبية وإثراء من القلب خلية السكان. نناقش استخدام انزيم يمزج مختلفة لخلية التفكك، وآثارها على الخلية قدرتها على البقاء. والعضلية معزولة يمكن استخدامها في وقت لاحق لمجموعة متنوعة من المورفولوجية، الكهربية، والكيمياء الحيوية، المقايسات خلية بيولوجية أو النشاط الحيوي. نحن الأمثل لبروتوكول لمتانة والتكاثر، باستخدام الحلول الوحيدة المتاحة تجاريا والتي تختلط انزيم SHآه القليل الكثير إلى الكثير تقلب. نحن أيضا معالجة المشاكل المشتركة المرتبطة العزلة وثقافة العضلية، وتوفر مجموعة متنوعة من الخيارات لتحقيق أقصى استفادة ممكنة من العزلة والثقافة الشروط.

Introduction

أقرب تقارير عن التفكك ناجحة وثقافة خلايا القلب القوارض يعود تاريخها الى عام 1،2 في عام 1960. حتى ذلك الحين، لاحظت Harary وفارلي أن العضلية مثقف "قد توفر نظاما فريدا لدراسة متطلبات انقباض الدوري [ويجوز] توفير وسيلة لتحديد مساهمة مختلف المسارات الأيضية لل[الضرب] العملية". على الرغم من Harary وفارلي العضلية معزولة ومثقف من صغار الفئران، والبروتوكول الأصلي قد تم تكييفها وتعديلها من قبل العديد من العلماء على مر السنين، لم يتغير كثيرا من العزلة وزراعة الإجراء العام. ومع ذلك، والانزيمات أفضل 3 حلول موحدة 4،5، وإضافة قناة عكسها والميوسين أتباز المانع BDM لحماية الخلايا أثناء إجراء العزل 6-9 قد تحسنت بشكل ملحوظ الخلوي العائد والجدوى.

الكبار مقابل cardiomyo حديثي الولادةcytes

العضلية معزولة ومثقف من الفئران او الجرذان حديثي الولادة لديها العديد من المزايا ثقافات العضلية الكبار. قبل كل شيء، وإجراء العزل لحديثي الولادة الماوس أو الفئران القلوب هو أسهل وأقل تكلفة، إذا ما قورنت إلى عزل العضلية من الماوس الكبار أو الفئران 10. حديثي الولادة العضلية هي أقل حساسية بكثير لإعادة إلى المتوسطة التي تحتوي على الكالسيوم بعد التفكك، وزيادة كبيرة الخلوي العائد. ميزة كبيرة أخرى هي أن العضلية الماوس حديثي الولادة الخضوع لفقد التمايز أسرع – دورة عودة التمايز الذي ينتج عادة في ضرب الخلايا عفويا 20 ساعة بعد الطلاء، في حين تتطلب العضلية الكبار عادة للحث على سرعة الانكماش. العضلية حديثي الولادة هي أيضا أكثر بسهولة transfectable مع أساليب الليبوسومال ترنسفكأيشن، في حين العضلية الكبار تتطلب النواقل الفيروسية للتسليم ناجحة من الحمض النووي المعدل وراثيا. وعلى النقيض من cardiomyocyte حديثي الولادةق، ثقافة العضلية القوارض الكبار 11-13 يسمح للتحقيقات من تدهور myofibrillar وإعادة في نهاية المطاف من جهاز مقلص. هذه التغييرات شكلية متميزة في العضلية الكبار تحدث على مدى فترات من 1-2 أسابيع. ويرافق عودة التمايز من خلال دورة reexpression من البرنامج الجيني الجنين، وبالتالي محاكاة التغيرات المرضية التي لوحظت في الإنسان بعضلة القلب 14 – وفقد التمايز. ميزة أخرى من الفئران العضلية الكبار على ثقافة العضلية حديثي الولادة هو القدرة على ثقافة هذه الخلايا لفترات طويلة من الزمن.

الفئران مقابل العضلية الماوس

العزلة وثقافة العضلية الفئران حديثي الولادة لديها بعض الفوائد من خلال تلك الماوس العضلية حديثي الولادة، بما في ذلك عائدات أعلى من خلايا قابلة للحياة وزيادة معدلات ترنسفكأيشن. ومع ذلك، فإن استخدام واسعة من نماذج الماوس المعدلة وراثيا لعلاج أمراض القلب (على سبيل المثال <م /> وليم العضلات بروتين بالضربة القاضية الماوس كنموذج للتمدد عضلة القلب 15) قد أدى إلى التكيف من إجراء العزل لالعضلية المستمدة من الفئران حديثي الولادة. على الرغم من أن البروتوكولات المستخدمة لعزل الجرذان والفئران حديثي الولادة العضلية هي متطابقة تقريبا، يجب توخي الحذر أكبر في اختيار مزيج انزيم المناسبة لهذا الأخير. في الواقع، العضلية الماوس حديثي الولادة عادة ما تكون أكثر عرضة للoverdigestion، مما أدى إلى انخفاض العائد الخلية وقدرتها على البقاء. علاوة على ذلك، ينبغي تعديل كثافة الطلاء، لأن العضلية المستمدة من الفئران حديثي الولادة هي أصغر نوعا ما مقارنة مع الخلايا المشتقة من قلوب الفئران حديثي الولادة.

مع العديد من الاستخدامات للتحقيق في، الكهربية، والكيمياء الحيوية، المعلمات الخلية البيولوجية والمورفولوجية النشاط الحيوي وكذلك لعملية myofibrillogenesis، أصبحت العضلية الولدان مثقف واحد من أكثر الأنظمة تنوعا لدراسةوظائف الخلية القلبية في المختبر. الخطوة الأولى لمقايسة ناجحة ومع ذلك، يعتمد على منهجية سهلة وموثوقة لعزل العضلية الماوس حديثي الولادة. بروتوكول لدينا توجه منهجيته من مصادر عديدة، وكان الأمثل لاستنساخ ومتانة. نناقش العوامل التي تؤثر cardiomyocyte الغلة وقدرتها على البقاء، وتوفير مجموعة متنوعة من الخيارات لتحقيق أقصى استفادة ممكنة من العزلة والثقافة الشروط.

Protocol

يصف الإجراء التالي ل16،17 بروتوكول لمدة يومين للعزلة وثقافة العضلية الماوس حديثي الولادة. كل الحلول هي معقمة أو معقمة تصفيتها. يتم تعقيم جميع الأدوات التي كتبها تعقيم السطح مع 75٪ من الإيثانول. باستثناء لاستخراج الأنسجة الأولية، يتم تنفيذ جميع الخطوات في العقيمة…

Representative Results

باستخدام هذا البروتوكول، ونحن عزل قلوب من 8 يوم واحد الفئران حديثي الولادة القديمة (أرقام 1A، 1B، خلفية فيلم S1). بعد الغسيل وتنميق قلوب مع مقص (أرقام 1C-1F)، ومهضوم شظايا الأنسجة في عزلة المتوسطة أكثر من ليلة في 4 درجات مئوية مع الإثارة لطيف. بعد هضم مسبق <st…

Discussion

أصبح استخدام نماذج حيوانية لدراسة أمراض القلب القياسية في مجال البحوث القلب والأوعية الدموية. توصيف البيوكيميائية أقرب من هذه النماذج (أي دراسة الاستجابات المباشرة للخلايا القلب للمؤثرات الكيميائية الحيوية أو النشاط الحيوي) وعادة ما يتطلب عزل أنسجة القلب أو ا…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نحن ممتنون للبروفيسور الفخري جان كلود Perriard وإيفلين Perriard (المعهد الاتحادي السويسري للتكنولوجيا، سويسرا) لإدخال تقنيات في عزلة عن الفئران حديثي الولادة والعضلية الماوس. نود أن نشكر الأستاذ جو تشن والبروفيسور سيلفيا إيفانز (جامعة كاليفورنيا سان دييغو، الولايات المتحدة الأمريكية) لدعمهم. وقد تم تمويل العمل في المختبر من قبل لجنة نهر الميكونج EE الوظيفي مؤسسة غرانت. ويدعم SL قبل K99/R00 الطريق إلى جائزة الاستقلال من المعاهد الوطنية للصحة / NHLBI (HL107744). وأيد TMM بواسطة زمالة ما بعد الدكتوراه من جمعية القلب الأمريكية (11POST7310066).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
BDM (2,3-Butanedione monoxime) 6-8 Sigma B-0753 prepare 0.2M stock solution in HBSS (without Ca2+, Mg2+), filter sterilize, can be kept at 4 °C up to 6 months; Caution: Prolonged usage of BDM other than during isolation procedure may result in non-beating cells, decreased cell viability and/or significantly altered gene-expression during cardiomyocyte culture46,47.
Collagenase/Dispase Roche 10269638001 can be substituted with collagenase type II from Worthington
Collagenase type II3 Worthington CLS-2 substitute for Collagenase/Dispase mix from Roche
1x trypsin solution (0.25%) with EDTA e.g. cellgro 25-053-CI  
1x Penicillin/ Streptomycin solution with EDTA in HBSS e.g. cellgro 30-002-Cl  
1x PBS (without Ca2+, Mg2+) e,g, cellgro 21-040-CV  
HBSS (Hank’s balanced salt solution; without Ca2+, Mg2+) 4 e.g. cellgro 21-022-CV  
DMEM high glucose e.g. cellgro 10-013-CV  
M-199 e.g. cellgro 10-060-CV  
fetal bovine serum e.g. cellgro 35-011-CV cell-culture grade
horse serum e.g. cellgro 35-030-CV cell-culture grade
Leibovitz L-155 e.g. cellgro 10-045-CV  
AraC (Cytosine-B-D-arabino-furanoside hydrochloride) Sigma C-6645 proliferation inhibitor, prepare 1 mM stock solution in H2O, filter sterilize, store at 4 °C
phenylephrine Sigma P-6126 chronotropic agent, prepare 100 mM stock solution in H2O, filter sterilize, store at 4 °C or -20 °C
isoproterenol hydrochloride Sigma I-6501 chronotropic agent, prepare 1 mM stock solution in H2O, filter sterilize, store at 4 °C or -20 °C
0.1% collagen solution Sigma C-8919 extracellular matrix for coating
3 mg/ml collagen type 1 solution Advanced BioMatrix 5005-B alternative to Sigma collagen solution
cell strainer e.g. Fisherbrand 22363548 appropriate filter size:40 μm-100 μm
syringe filter 0.2 μm e.g. Fisherbrand 09-719C for sterile filtration of digestion medium
straight scissors e.g. Fine Sciences Tools 91460-11  
curved scissors e.g. Fine Science Tools 91461-11  
Dumont No. 7 forceps e.g. Fine Science Tools 91197-00  
perforated spoon e.g. Fine Science Tools 10370-19 optional, for transfer of heart tissue
Trypan blue e.g. Gibco 15250-061 live cell staining
Neubauer hemocytometer e.g. Prosource Scientific 3500 alternatively use: disposable hemocytometer C-chip or automated cell counting systems
50 ml Falcon tubes e.g. Fisherbrand 14-432-23  
15 ml Falcon tubes e.g. Fisherbrand 05-527-90  
20 ml syringe e.g. BD Medical 14-820-19  
10 ml serological pipette e.g. Falcon 357551  
30 mm cell culture dish e.g. Nunc 153066 for standard culture of cardiomyocytes
30 mm cell culture dish, glass bottom MatTek P35G-0-10-C for live cell imaging with inverted microscope
10 cm cell culture dish e.g. Nunc 172958 for preplating
Escort III Sigma L3037 for liposomal transfection, alternatively use lipofectamin 2000
Lipofectamine 2000 Life Technologies, Invitrogen 52887 substitute for Escort III
      Buffers and media:
  • Isolation medium (filter sterilize)
    20 mM BDM
    0.0125% trypsin
    in HBSS4 (without Ca2+, Mg2+)
  • Digestion medium (filter sterilize)
    20 mM BDM
    1.5 mg/ml Roche Collagenase/Dispase enzyme mix
    in L15 medium
  • Plating medium
    65% DMEM high glucose
    19% M-199
    10% horse serum
    5% fetal calf serum
    1% penicillin/streptomycin
  • Maintenance medium
    78% DMEM high glucose
    17% M-199
    4% horse serum
    1% penicillin/streptomycin
    optional:
    1 μM AraC
    1 μM isoproterenol or 0.1 mM phenylephrine
The plating and maintenance medium can be stored at 4 °C for up to 6 months.

References

  1. Harary, I., Farley, B. In vitro studies of single isolated beating heart cells. Science. 131, 1674-1675 (1960).
  2. Harary, I., Farley, B. In vitro studies on single beating rat heart cells. I. Growth and organization. Exp. Cell Res. 29, 451-465 (1963).
  3. Worthington Biochemical Corp. . Worthington Enzyme Manual. , (2012).
  4. Hanks, J. H., Wallace, R. E. Relation of oxygen and temperature in the preservation of tissues by refrigeration. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 71, 196-200 (1949).
  5. Leibovitz, A. The Growth and Maintenance of Tissue-Cell Cultures in Free Gas Exchange with the Atmosphere. Am. J. Hyg. 78, 173-180 (1963).
  6. Mulieri, L. A., Hasenfuss, G., Ittleman, F., Blanchard, E. M., Alpert, N. R. Protection of human left ventricular myocardium from cutting injury with 2,3-butanedione monoxime. Circ. Res. 65, 1441-1449 (1989).
  7. Thum, T., Borlak, J. Butanedione monoxime increases the viability and yield of adult cardiomyocytes in primary cultures. Cardiovasc Toxicol. 1, 61-72 (2001).
  8. Verrecchia, F., Herve, J. C. Reversible blockade of gap junctional communication by 2,3-butanedione monoxime in rat cardiac myocytes. Am. J. Physiol. 272, 875-885 (1997).
  9. Allen, T. J., Chapman, R. A. The effect of a chemical phosphatase on single calcium channels and the inactivation of whole-cell calcium current from isolated guinea-pig ventricular myocytes. Pflugers Arch. 430, 68-80 (1995).
  10. Mitcheson, J. S., Hancox, J. C., Levi, A. J. Cultured adult cardiac myocytes: future applications, culture methods, morphological and electrophysiological properties. Cardiovasc. Res. 39, 280-300 (1998).
  11. Piper, H. M., Probst, I., Schwartz, P., Hutter, F. J., Spieckermann, P. G. Culturing of calcium stable adult cardiac myocytes. J. Mol. Cell Cardiol. 14, 397-412 (1982).
  12. Claycomb, W. C., Palazzo, M. C. Culture of the terminally differentiated adult cardiac muscle cell: a light and scanning electron microscope study. Dev. Biol. 80, 466-482 (1980).
  13. Eppenberger, M. E., et al. Immunocytochemical analysis of the regeneration of myofibrils in long-term cultures of adult cardiomyocytes of the rat. Dev. Biol. 130, 1-15 (1988).
  14. Eppenberger, H. M., Hertig, C., Eppenberger-Eberhardt, M. Adult rat cardiomyocytes in culture A model system to study the plasticity of the differentiated cardiac phenotype at the molecular and cellular levels. Trends Cardiovasc Med. 4, 187-193 (1994).
  15. Arber, S., et al. MLP-deficient mice exhibit a disruption of cardiac cytoarchitectural organization, dilated cardiomyopathy, and heart failure. Cell. 88, 393-403 (1997).
  16. Toraason, M., Luken, M. E., Breitenstein, M., Krueger, J. A., Biagini, R. E. Comparative toxicity of allylamine and acrolein in cultured myocytes and fibroblasts from neonatal rat heart. Toxicology. 56, 107-117 (1989).
  17. Worthington Biochemical Corp. . Worthington Tissue Dissection Guide. , (2012).
  18. Bashor, M. M. Dispersion and disruption of tissues. Methods Enzymol. 58, 119-131 (1979).
  19. Speicher, D. W., McCarl, R. L. Pancreatic enzyme requirements for the dissociation of rat hearts for culture. In Vitro. 10, 30-41 (1974).
  20. Gross, W. O., Schopf-Ebner, E., Bucher, O. M. Technique for the preparation of homogeneous cultures of isolated heart muscle cells. Exp Cell Res. 53, 1-10 (1968).
  21. Freshney, R. I. . Culture of animal cells : a manual of basic technique and specialized applications. , (2010).
  22. Lange, S., Perera, S., Teh, P., Chen, J. Obscurin and KCTD6 regulate cullin-dependent small ankyrin-1 (sAnk1.5) protein turnover. Mol Biol Cell. , (2012).
  23. Sen, A., Dunnmon, P., Henderson, S. A., Gerard, R. D., Chien, K. R. Terminally differentiated neonatal rat myocardial cells proliferate and maintain specific differentiated functions following expression of SV40 large T antigen. J. Biol. Chem. 263, 19132-19136 (1988).
  24. Evans, H. J., Goodwin, R. L. Western array analysis of cell cycle protein changes during the hyperplastic to hypertrophic transition in heart development. Mol. Cell Biochem. 303, 189-199 (2007).
  25. Bakunts, K., Gillum, N., Karabekian, Z., Sarvazyan, N. Formation of cardiac fibers in Matrigel matrix. Biotechniques. 44, 341-348 (2008).
  26. Fink, C., et al. Chronic stretch of engineered heart tissue induces hypertrophy and functional improvement. FASEB J. 14, 669-679 (2000).
  27. Nawroth, J. C., et al. A tissue-engineered jellyfish with biomimetic propulsion. Nat. Biotechnol. 30, 792-797 (2012).
  28. Das, M., et al. Long-term culture of embryonic rat cardiomyocytes on an organosilane surface in a serum-free medium. Biomaterials. 25, 5643-5647 (2004).
  29. DeQuach, J. A., et al. Simple and high yielding method for preparing tissue specific extracellular matrix coatings for cell culture. PLoS One. 5, e13039 (2010).
  30. VanWinkle, W. B., Snuggs, M. B., Buja, L. M. Cardiogel: a biosynthetic extracellular matrix for cardiomyocyte culture. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 32, 478-485 (1996).
  31. Karliner, J. S., Simpson, P. C., Taylor, J. E., Honbo, N., Woloszyn, W. Adrenergic receptor characteristics of cardiac myocytes cultured in serum-free medium: comparison with serum-supplemented medium. Biochem Biophys Res Commun. 128, 376-382 (1985).
  32. Steinhelper, M. E., et al. Proliferation in vivo and in culture of differentiated adult atrial cardiomyocytes from transgenic mice. Am. J. Physiol. 259, H1826-H1834 (1990).
  33. Ahuja, P., Perriard, E., Perriard, J. C., Ehler, E. Sequential myofibrillar breakdown accompanies mitotic division of mammalian cardiomyocytes. J. Cell Sci. 117, 3295-3306 (2004).
  34. Iwaki, K., Sukhatme, V. P., Shubeita, H. E., Chien, K. R. Alpha- beta-adrenergic stimulation induces distinct patterns of immediate early gene expression in neonatal rat myocardial cells. fos/jun expression is associated with sarcomere assembly; Egr-1 induction is primarily an alpha 1-mediated response. J. Biol. Chem. 265, 13809-13817 (1990).
  35. Kirshenbaum, L. A., MacLellan, W. R., Mazur, W., French, B. A., Schneider, M. D. Highly efficient gene transfer into adult ventricular myocytes by recombinant adenovirus. J. Clin. Invest. 92, 381-387 (1993).
  36. Maeda, Y., et al. Adeno-associated virus-mediated transfer of endothelial nitric oxide synthase gene inhibits protein synthesis of rat ventricular cardiomyocytes. Cardiovasc Drugs Ther. 15, 19-24 (2001).
  37. Zhao, J., et al. Lentiviral vectors for delivery of genes into neonatal and adult ventricular cardiac myocytes in vitro and in vivo. Basic Res. Cardiol. 97, 348-358 (2002).
  38. Djurovic, S., Iversen, N., Jeansson, S., Hoover, F., Christensen, G. Comparison of nonviral transfection and adeno-associated viral transduction on cardiomyocytes. Mol. Biotechnol. 28, 21-32 (2004).
  39. van Bever, L., et al. Pore loop-mutated rat KIR6.1 and KIR6.2 suppress KATP current in rat cardiomyocytes. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, 850-859 (2004).
  40. Sakai, K., Akima, M., Tsuyama, K. Evaluation of the isolated perfused heart of mice, with special reference to vasoconstriction caused by intracoronary acetylcholine. J. Pharmacol Methods. 10, 263-270 (1983).
  41. Reichelt, M. E., Willems, L., Hack, B. A., Peart, J. N., Headrick, J. P. Cardiac and coronary function in the Langendorff-perfused mouse heart model. Exp Physiol. 94, 54-70 (2009).
  42. Tian, R. Assessment of cardiac function and energetics in isolated mouse hearts using 31P NMR spectroscopy. J. Vis. Exp. (42), e2069 (2010).
  43. Liao, R., Podesser, B. K., Lim, C. C. The continuing evolution of the Langendorff and ejecting murine heart: new advances in cardiac phenotyping. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 303, H156-H167 (2012).
  44. Zakharova, L., Nural-Guvener, H., Gaballa, M. A. Cardiac explant-derived cells are regulated by Notch-modulated mesenchymal transition. PLoS One. 7, e37800 (2012).
  45. Rudy, D. E., Yatskievych, T. A., Antin, P. B., Gregorio, C. C. Assembly of thick, thin, and titin filaments in chick precardiac explants. Dev. Dyn. 221, 61-71 (2001).
  46. Thum, T., Borlak, J. Reprogramming of gene expression in cultured cardiomyocytes and in explanted hearts by the myosin ATPase inhibitor butanedione monoxime. Transplantation. 71, 543-552 (2001).
  47. Kabaeva, Z., Zhao, M., Michele, D. E. Blebbistatin extends culture life of adult mouse cardiac myocytes and allows efficient and stable transgene expression. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 294, H1667-H1674 (2008).
check_url/fr/50154?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ehler, E., Moore-Morris, T., Lange, S. Isolation and Culture of Neonatal Mouse Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (79), e50154, doi:10.3791/50154 (2013).

View Video