Photothrombosis is a minimally invasive and highly reproducible procedure to induce focal ischemia in the spinal cord and serves as a model of spinal cord injury in mice.
Spinal cord injury (SCI) is a devastating clinical condition causing permanent changes in sensorimotor and autonomic functions of the spinal cord (SC) below the site of injury. The secondary ischemia that develops following the initial mechanical insult is a serious complication of the SCI and severely impairs the function and viability of surviving neuronal and non-neuronal cells in the SC. In addition, ischemia is also responsible for the growth of lesion during chronic phase of injury and interferes with the cellular repair and healing processes. Thus there is a need to develop a spinal cord ischemia model for studying the mechanisms of ischemia-induced pathology. Focal ischemia induced by photothrombosis (PT) is a minimally invasive and very well established procedure used to investigate the pathology of ischemia-induced cell death in the brain. Here, we describe the use of PT to induce an ischemic lesion in the spinal cord of mice. Following retro-orbital sinus injection of Rose Bengal, the posterior spinal vein and other capillaries on the dorsal surface of SC were irradiated with a green light resulting in the formation of a thrombus and thus ischemia in the affected region. Results from histology and immunochemistry studies show that PT-induced ischemia caused spinal cord infarction, loss of neurons and reactive gliosis. Using this technique a highly reproducible and relatively easy model of SCI in mice can be achieved that would serve the purpose of scientific investigations into the mechanisms of ischemia induced cell death as well as the efficacy of neuroprotective drugs. This model will also allow exploration of the pathological changes that occur following SCI in live mice like axonal degeneration and regeneration, neuronal and astrocytic Ca2+ signaling using two-photon microscopy.
Traumática lesão medular (LM) é uma condição clínica devastador que afeta as funções sensório-motoras e autonômicas do SC. Pacientes sobreviventes SCI muitas vezes são deixados com paraplegia debilitante que afeta significativamente suas atividades diárias e qualidade de vida 1. Modelos Experimental SCI têm sido uma ferramenta indispensável na investigação científica para compreender a fisiopatologia da SCI e processos de reparação neural associados. Estes modelos também foram utilizados para testar a eficácia pré-clínica de diversas intervenções neuroprotectores experimentais que são destinadas a recuperação funcional. Atualmente, a maioria dos modelos SCI, na prática, empregar o uso da força física sem corte para perturbar e prejudicar o SC mecanicamente. Estes métodos incluem contusão, compressão, deslocamento e transecção do SC 2. Tem sido sugerido que após o insulto mecânica primária uma lesão secundária sob a forma de conjuntos de isquemia no lesada no SC 3,4. A etiologia da isquemia secundária inclui extensa degeneração do tecido, hemorragia parenquimatosa e às vezes por obstrução de vasos sanguíneos por edema do tecido 5-7. Como resultado da lesão secundária a integridade de SC é mais afectada, neurónios e células gliais são severamente prejudicada em função e viabilidade e sofrem apoptose que leva a um crescimento de infarto durante a fase crónica da lesão, análogo ao crescimento de penumbra de isquemia pós-AVC 8,9. Vários mecanismos como excitotoxicidade, produção de radicais livres, e inflamação foram relatados para ser responsável pela morte celular isquémica após uma lesão medular 10,11. Além disso, SC isquemia é uma complicação grave de cirurgias tóraco-abdominal do aneurisma da aorta, que muitas vezes levam a paraplegia nos pacientes 12,13. Apesar de tão alto impacto clínico muito poucos modelos de isquemia medular com alta reprodutibilidade estão disponíveis no momento.
nt "> Indocianina (PT) é um método vulgarmente utilizado para a indução de isquemia focal no cérebro 14-20. A técnica é relativamente não invasivo e altamente reprodutível e produz uma lesão isquémica focal exacta da área exposta do cérebro 17 -21. Isto é conseguido por administração sistémica de corantes fotoactivos como Rose Bengal (RB) ou 16-20,22 eritrosina B 23 seguido por irradiação localizada de vasos sanguíneos com fonte de luz adequada. A fotoactivação do corante faz com que a geração de radicais livres que interromper a integridade do endotélio vascular liso, e fazer com que as plaquetas se acumulam, que subsequentemente forma um trombo. A obstrução do fluxo de sangue pelos resultados do trombo em um enfarte na região fornecido pelo vaso 24. Devido à facilidade de controlo sobre o intensidade e da duração da irradiação este procedimento produz um enfarte altamente uniforme e reprodutível. Além disso, este método pode ser empregue para induzir um enfartet em várias posições anatómicas permitindo espacial (por exemplo, substância cinzenta vs matéria branca) compreensão do efeito da isquemia.O objetivo do presente estudo é desenvolver um modelo fácil e altamente reprodutível de SC isquemia em ratinhos. Nós descrevemos o procedimento de um modelo PT de SC isquemia em ratinhos. Os resultados de histologia e imunocoloração demonstrou que a PT pode efectivamente induzir enfarte do SC, perda neuronal e gliose reactiva.
Neste estudo, descrevemos um modelo photothrombotic de SC isquemia. Devido aos avanços na engenharia genética, tem havido uma onda de camundongos transgênicos comercialmente disponível que tornou possível estudar o impacto de genes específicos envolvidos na fisiopatologia isquêmico no SC. O objectivo do estudo foi o de desenvolver um modelo reprodutível rato de isquemia medular. Aqui nós adaptamos um modelo cortical PT para induzir SCI em camundongos. No seguimento da cirurgia da coluna vertebr…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pelo National Institutes of Health [Grant não. R01NS069726] e da Associação Americana do Coração, em Grant Grant Aid [Grant não. 13GRNT17020004] para SD.
Rose Bengal | Sigma-Aldrich | 330000 | 20 mg/ml in sterile saline |
C57Bl6/J | Jackson lab | 664 | 22-25g |
Ketamine | VEDCO | NDC-50989-996-06 | 100 mg/ml |
Xylazine | VEDCO | NDC-50989-234-11 | 100 mg/ml |
Betadine solution | Purdue | NDC-67618-150-01 | 10% povidone iodine topical solution |
Normal saline | Abott Laboratories | 04930-04-10 | For diluting RB, anaesthesia and for preventing tissue from drying |
Artificial tears ointment | Rugby | NDC-0536-6550-91 | 83% white petrolatum |
Ethanol | Decon labs.Inc | 2716 | 70% ethanol for disinfection |
Metal halide lamp | EXFO, Canada | X-Cite 120 PC | Set power at 12% |
Spring scissors | Fine Science Tool | 15000-10 | for minor dissection |
Scissors (angled to side) | Fine Science Tool | 14063-011 | No. 3 handle |
Standard scalpel | Fine Science Tool | 10003-12 | for removing muscle |
Scalpel blade | Feather | 2976 | No. 10 |
Forceps (curved) | Fine Science Tool | 11150-10 | for holding tissue |
Forceps (straight) | Fine Science Tool | 11151-10 | for holding tissue |
Needle holder | Fine Science Tool | 12002-12 | for suturing |
Tissue adhesive glue | 3M Vetbond | 1469SB | to adhere to edges of the cut skin |
Monofilament polypropylene | USSC Sutures | VP-521 | Size = 4-0 (for fascia) |
Perma-hand silk | Ethicon | 683G | Size = 4-0 (for skin) |
Micro drill | Roboz Surgical Instrument Co. Inc. | RS-6300 | with bone polishing drill bit |
Laser doppler flowmeter | Moor Instruments | moorVMS-LDF1 | for monitoring change in blood flow |
Heating pad | Fine Science Tool | 21052-00 | to prevent hypothermia |
Lab-Jack | Fisher scientific | 14-673-50 | 4×4 in plate to adjust the height of the animal |
X-Y gliding stage | Amscope | GT100 | for positioning the animal under microscope |