Summary

إنتاج النسخ المعيبة للفيروسات الارتدادية التي ترنسفكأيشن عابر للخلايا 293T

Published: December 04, 2007
doi:

Summary

يوضح هذا الأسلوب وسيلة فعالة لإعداد النسخ المتماثل أو المعيبة مخزونات فيروس ترميز الجين الورمي الإنسان ، واستخدمت لاحقا لتحريض مرض التكاثر النقيي في نموذج الفأر.

Abstract

لدينا مختبر دراسات الأمراض التي يسببها الإنسان من خلال التكاثر النقيي المسرطنة مثل BCR – ABL أو مستقبلات عامل النمو المشتق المسرطنة (ZNF198 – FGFR1 ، BCR – PDGFRα ، الخ). ونحن قادرون على نموذج ودراسة الأمراض التي تصيب البشر ، كما هو الحال في نموذج الفأر لدينا ، عن طريق زرع خلايا نخاع العظم المصاب سابقا مع الارتجاعي التعبير عن الجين الورمي في المصالح. النسخ المتماثل أو المعيبة الارتجاعي ترميز الجين الورمي الإنسان وتنتج علامة (GFP ، RFP ، والمضادات الحيوية الجينات المقاومة ، الخ) عن طريق بروتوكول ترنسفكأيشن عابرة باستخدام الخلايا 293T ، من حقوق الإنسان الكلوي خط الخلايا الظهارية تحويلها من قبل الجين المنتج E1A اتش. 293 الخلايا لديها خاصية غير معتادة للغاية التي يجري transfectable فوسفات الكالسيوم (كابو 4) ، مع ما يصل الى 50-80 ٪ كفاءة ترنسفكأيشن يمكن بلوغه بسهولة. هنا ، وشارك في 293 transfect نحن مع الخلايا ناقلات فيروسات التعبير عن الجين الورمي من الفائدة والبلازميد التي تعبر عن وظائف التغليف هفوة ، بول الحياة الفطرية ، مثل الجينوم واحدة والتغليف يبني القات أو PCL ، في هذه الحالة EcoPak البلازميد. كذلك تم تحسين ترنسفكأيشن الأولية باستخدام الكلوروكين. مخزونات فيروس ecotropic ، التي جمعت في 48 ساعة الثقافة طاف. بعد ترنسفكأيشن ، يمكن تخزينها في -80 درجة مئوية وتستخدم للعدوى من خطوط الخلوي في ضوء التحول والدراسات في المختبر ، أو الخلايا الأولية مثل خلايا فأر نخاع العظام ، التي يمكن استخدامها للزراعة في نموذج الفأر لدينا .

Protocol

في المساء قبل أن تحول الخلايا لوحة ، 293T في الخلايا 6 3 – 5×10 / 6 cultureplate الأنسجة سم. ملاحظة : نحن نستخدم 293T الخلايا الخاصة بهم من أجل سهولة ترنسفكأيشن وخلايا الفيروس efficacyas المنتجة. هذه الخلايا هي نقص في التعبئة والتغليف للفيروس ما لم يتم إدخال ال…

Discussion

وأربع نقاط حاسمة ضمان نجاح الأسهم الجيدة فيروسية :

  1. الخلايا المنتجة 293T أن يكونوا أصحاء للغاية ، وهذا يعني أنهم قد انقسم على جدول منتظم للغاية ، لم تكن متضخمة ، ومطلية في كثافة الأمثل من 3،5-5٬000٬000 في 6 سم نسيج لوحة الثقافة ، بحيث …

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
293T cells cell-line     Split 1:3 to 1:4 every 3 days, otherwise they will tend to clump with replating and will not transfect as well.
293T cell medium       DMEM/hi-glu + 10 % FBS + 1% Pen/Strep + 1% L-Glutamine (1% NEAA, optional). We obtain our tissue culture slutions from CellGro.
coding DNA plasmid       Twice purified by CsCl. MSCV backbone, encoding oncogene and marker of choice (Neo, GFP, etc.)
EcoPak       also called pMCV-Ecopac: ecotropic packaging plasmid, encoding gag-pol-env
2x HBS       For 500 ml: 8.0 g NaCl + 0.37 g KCl + 106.5 mg Na2HPO4 (anhydrous; 201.1 mg if 7xH2O) + 1.0 g dextrose (D-glucose) + 5.0 g HEPES powder. Dissolve in 450 ml dH2O (milli-Q), adjust pH to 7.05 with NaOH, then complete to 500 ml with dH2O. Sterile filter thru 0.45 µ filter. Store at room temperature, with the cap on tight.
2M CaCl2   Sigma    
miliQ H2O       sterile-filtered
Chloroquine       1000x stock is 25 mM in PBS- (w/o Ca2+/Mg2+), stored at -20C. Add fresh to the medium when needed.
6 cm plates       for tissue culture
Incubator       for tissue culture. Set at 37C, 10% CO2.
10 cc sterile syringes       Sterile. One per virus type.
18G needles       single use, one per virus type.
45 um syringe filters        
5 ml plastic tubes       Sterile, to mix transfection solution, for up to 2 plates at a time (2 ml). We use Falcon tubes.
50 ml conical tubes        
cryovials       2 and 4 ml, for virus aliquots.

All reagents used in the transfection must be sterile-filtered (CaCl2, 2x HBS, miliQ H2O) and kept sterile.

References

  1. DuBridge, R. B., Tang, P., Hsia, H. C., Leong, P. M., Miller, J. H., Calos, M. P. Analysis of mutation in human cells by using an Epstein-Barr virus shuttle system. Mol Cell Biol. 7, 379-387 (1987).
  2. Cherry, S. R., Biniszkiewicz, D., van Parijs, L., Baltimore, D., Jaenisch, R. Retroviral expression in embryonic stem cells and hematopoietic stem cells. Mol Cell Biol. 20, 7419-7426 (2000).
  3. Finer, M. H., Dull, T. J., Qin, L., Farson, D., Roberts, M. kat: A high-efficiency retroviral transduction system for primary human T lymphocytes. Blood. 83, 43-50 (1994).
  4. Naviaux, R. K., Costanzi, E., Haas, M., Verma, I. M. The pCL vector system: rapid production of helper-free, high-titer, recombinant retroviruses. J Virol. 70, 5701-5705 (1996).
  5. Pear, W. S., Miller, J. P., Xu, L., Pui, J. C., Soffer, B., Quackenbush, R. C., Pendergast, A. M., Bronson, R., Aster, J. C., Scott, M. L., Baltimore, D. Efficient and rapid induction of a chronic myelogenous leukemia-like myeloproliferative disease in mice receiving P210 bcr/abl-transduced bone marrow. Blood. 92, 3780-3792 (1998).
  6. Pear, W. S., Nolan, G. P., Scott, M. L., Baltimore, D. Production of high-titer helper-free retroviruses by transient transfection. Proc Natl Acad Sci USA. 90, 8392-8396 (1993).
  7. Stocking, C., Kollek, R., Bergholz, U., Ostertag, W. Long terminal repeat sequences impart hematopoietic transformation properties to the myeloproliferative sarcoma virus. Proc Natl Acad Sci USA. 82, 5746-5750 (1985).
  8. Van Etten, R. A. Models of chronic myeloid leukemia. Curr Oncol Rep. 3, 228-237 (2001).
  9. Van Etten, R. A. Studying the pathogenesis of BCR-ABL+ leukemia in mice. Oncogene. 21, 8643-8651 (2002).

Play Video

Citer Cet Article
Gavrilescu, L. C., Van Etten, R. A. Production of Replication-Defective Retrovirus by Transient Transfection of 293T cells. J. Vis. Exp. (10), e550, doi:10.3791/550 (2007).

View Video