Summary

Высокая чувствительность обнаружения микрометастазы, порожденных GFP человека преобразованы Organoids культивированный от опухоли пациента производные Колон

Published: June 14, 2018
doi:

Summary

Чтобы разрешить высокочувствительный обнаружения распространения человека колоректального рака (CRC) клетки колонизацию тканей, мы здесь показать протокол для эффективного трансдукции зеленого флуоресцентного белка (ГФП) лентивирусные частиц в PDX-производные CRC органоид клетки перед их введением в получателей мышей, с стерео флуоресценции микроскопические наблюдения.

Abstract

Несмотря на текущие достижения в лечении человека колоректального рака (CRC) несколько радикального лечения эффективны для поздних стадиях CRC. Для преодоления этой клинической проблемой, опухоли ксенотрансплантата мыши модели с помощью давно человека рак клеточных линий и многие трансгенные мыши, которые были разработаны модели с опухолями как доклинических моделей. Они частично имитировать функции человека карциномы, но часто не удается повторить ключевые аспекты человеческого злокачественных опухолей, включая вторжения и метастаз. Таким образом альтернативные модели, которые лучше представляют злокачественные прогрессии в человека CRC давно ждали.

Здесь мы покажем поколения опухоли пациента производные ксенотрасплантатов (PDXs) путем подкожной имплантации небольших фрагментов CRC, хирургически расчлененный от пациента. Толстой PDXs развивать и histopathologically напоминают CRC в пациента. Однако несколько спонтанных микрометастазы обнаруживаются в обычных сечения пострадавших отдаленные органы в PDX модели. Для облегчения обнаружения метастазов распространения в отдаленные органы, мы извлекали органоид клетки опухоли из PDXs толстой кишки в культуре и инфицированных GFP человека до инъекции в высоко иммунодефицитных NOD/Ши ТКИД IL2Rγзначение null (Нагель) мышах. Orthotopically вводят PDX-производные CRC органоид клетки последовательно положительные формы первичной опухоли для GFP получателей мышей. Кроме того спонтанно развивающихся micrometastatic, которые особенно колоний, выражая GFP обнаруживаются в легких этих мышей микроскопии флуоресцирования. Кроме того intrasplenic инъекции CRC organoids часто производит печеночная колонизации. Взятые вместе, эти результаты свидетельствуют о GFP-помечены PDX-производные CRC органоид клетки, чтобы быть визуально обнаружить во время многоэтапный процесс называют Каскад вторжения метастазы. Описанные протоколы включают в себя создание PDXs человека CRC и 3D культуры соответствующего CRC органоид клетки преобразованы GFP лентивирусные частицами.

Introduction

Колоректальный рак (КПР) является второй ведущей причиной рака смертей во всем мире1. Недостаточный отклик к обычной терапии пациентов с продвинутой стадии болезни показывает неэффективность попытки радикально вылечить ОЦР. Разработать более эффективные терапевтические подходы, были созданы различные модели доклинических мыши рака, которые имитируют характеристики ОЦР. Различные линии клетки CRC широко используются для создания ксенотрасплантатов опухоль из-за их удобство и простота манипуляции. Однако, долгосрочные культуры рак клеточных линий, часто вызывает выбор уникальных клеточных популяций, которые довольно пролиферативной при условии конкретной культуры, что приводит ненадежные результаты и решающее значение ограничения в доклинических наркотиков развития.

Не будучи культивировали в пробирке, пациент производные опухоли ксенотрасплантатов (PDXs) также генерируются имплантации в животных моделях тканях человека CRC, хирургически расчлененный от больных2,3,4. PDXs широко признаются как изложив основные Гистопатологические особенности и генетические изменения первоначально в опухоли пациентов, из которых они были получены. Кроме того пациент производные опухоли organoids состоит из опухолевых клеток, кластеры были созданы культуры условиях 3D, которые тесно имитировать биологических свойств оригинальной опухоли5,6. Эти опухоли organoids также применялись к высок объём наркотиков скрининг, тем самым позволяя персонализированной терапии разработаны5. Однако, заметно гетерогенных CRC населения предполагается присутствовать в опухоль массы. Особое CRC население может выборочно размножаться и расширить в ходе в vivo и in vitro серии проходы PDX и опухоли organoids, соответственно. Это также может позволить общие профили выражение гена и РПИ/генетический статус пострадавших ОЦР для изменения, результате чего минимальное сходство с родительского КПР.

Пациент производные CRC organoids и те, извлеченные из доброкачественные человека Колон, спроектированы для гавани, что комбинации онкогенных мутаций также были использованы для изучения отличительными чертами человека опухолевых клеток, подтверждается прорастание опухоли и метастазов 6,,78,9. Однако очень низкий уровень заболеваемости спонтанное метастазов, вытекающие из ортотопическая имплантации пациент производные КПР в иммунодефицитных мышей, затрудняет изучение многоэтапный процесс вторжения метастаз Каскад, который включает местные вторжение, intravasation, транспорт в кровоток, кровоподтек и колонизации отдаленные органы4,10. Micrometastasis как представлены опухолевых клеток осаждения ≤2 мм, образованный пациента производные organoids CRC, часто игнорировались гистопатологические анализа разделов от пострадавших в отдаленные органы в экспериментальной мыши модели. Визуализация спонтанное микрометастазы был также минимальным в естественных условиях из-за сложности эффективного введения флуоресцентных маркеров в органоид клетки опухоли до их введения в получателей мышей. В этом исследовании, мы разработали протокол эффективно передают GFP человека в PDX-производные CRC органоид клетки в 3D культуре до инъекции в получателей мышей и позволить высокочувствительный обнаружения, используя стерео флуоресцентной микроскопии, из их Колонизация различных органов в форме микрометастазы.

Protocol

Пациент условии письменного информированного согласия, и проект был одобрен Комитет по этике исследований факультета Juntendo университета. Мышь эксперименты были также одобрены животное Комитет по этике исследований факультета медицины Juntendo. 1. Создание CRC PDXs иммунодефици?…

Representative Results

Первичной кишки аденокарциномы, диагноз как умеренно дифференцированная хирургически резецируется от 76-летняя женщина с TNM классификации, этап IIIa, следуют послеоперационной химиотерапии. Основной immunohistochemically клетки CRC витражи позитивные раково-эмбрионального антиг?…

Discussion

Хотя модель CRC PDX широко применяются для изучения роста первичной опухоли, ли эта модель также применима к расследованию метастазов опухоли не еще не выяснен полностью. Спонтанное метастазы были также едва обнаружено в печени и легких различных сообщил Колон PDX модели4,</s…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана на Juntendo университета молодой следователь премии (2013, 2014 и 2015) лет, совместный проект премию (2013 и 2014) к. м. и предоставляет в помощь для научных исследований от министерства образования, культуры, спорта, науки и Технологии, Япония (16K 15625 до Y. K. и 16K 15598 для м.г.). Мы особенно благодарны всем членам Кафедра нашего хирургии и молекулярной патологии для полезных обсуждений и технической поддержки. Мы также благодарим Доктор Хироюки конно (Хамамацу университета Schoolof медицины) и доктор Хидеки Китадзима (Международный университет здравоохранения и социального обеспечения) за щедрые техническое руководство в хирургических процедур для имплантации ортотопическая в мышах и др. Бегемот (центр рака Тиба) Yoshitaka для технических консультаций по вопросам выполнения культуры органоид опухоли.

Materials

NOD/Shi-scid IL2Rγ null (NOG) mice The Central Institute for Experimental Animals,Kanagawa, Japan Breed 6-week-old male mice under germ-free and specific pathogen-free conditions
wound clips
2×10mm
Natsume manufacturing, Japan #C-21-S Autoclave before use
Hamilton syringe
needle size:22 gauge
Tokyo Science, Japan Disinfect with 70% alcohol and sterile PBS.
6-well plate BMBio #92006
12-well plate BMBio #92412
15ml conical tube Sumitono Bakelite MS-57150
50ml conical tube Sumitomo Bakelite MS-57500
microtube Eppendorf #0030120086 Autoclave before use
Hemocytometer Erma #03-202-1
40μm cell strainer Corning #352340
Matrigel basement membrane matrix Corning #354234 Store aliqupts at -20°C.
Place on ice until use
Collagenase type 1 Sigma #C1030 150 mg/ml collagenase type1 in 1×PBS. Store aliqupts at -20°C for up to 1 year
Accutase Innovate Cell Technologies #5V2623A Store at 4°C.
DMEM/F-12 with GlutaMAX™ Gibco #10565018 Store at 4°C. Warm at 37°C before use
Cell banker 1plus ZENOAQ #628 Store at 4°C. Use within 1 month
Penicillin Gibco #15140122 Store at 4°C. Use within 1 month
Streptomycin Gibco #15140122 Store at 4°C. Use within 1 month
hEGF PEPROTECH #AF-100-15 Store at -20°C. Add to medium on same day as use
Y27632, a ROCK inhibitor Wako #253-00591 Store at -20°C. Add to medium on
same day as use
Culture medium Gibco DMEM/F-12 with GlutaMAX™ supplement supplemented with 5% FBS, 100 U/ml penicillin and 100 µg/ml streptomycin.
Store at 4°C. Use within 1 month.
CRC organoid culture medium
with 1% or 5% FCS
DMEM/F-12 with GlutaMAX™ supplement (Gibco #10565018) supplemented with 1% or 5% FCS, 100 U/ml penicillin, 100 µg/ml streptomycin, 2 ng/ml hEGF and 10 µM Y27632, a ROCK inhibitor.
Store at 4°C. Use within 1 month.
the FuGENE 6 transfection regent Roche 11814 443001
Minisart 0.45 µm filter Sartorius stedim 17598-K
5 ml polypropylene centrifuge tubes Beckman Coulter 326819
PRRL-GFP vector Gift from Dr. Robert A. Weinberg
pCMV-VSV-G Gift from Dr. Robert A. Weinberg
pCMV-dR8.2 dvpr Gift from Dr. Robert A. Weinberg
the SW55Ti swinging bucket rotor Beckman Coulter
a Zeiss Axioplan 2 stereo-fluorescence microscope Zeiss

References

  1. Siegel, R., Desantis, C., Jemal, A. Colorectal cancer statistics, 2014. CA Cancer J Clin. 64 (2), 104-117 (2014).
  2. Hidalgo, M., et al. Patient-derived xenograft models: an emerging platform for translational cancer research. Cancer Discov. 4 (9), 998-1013 (2014).
  3. Aparicio, S., Hidalgo, M., Kung, A. L. Examining the utility of patient-derived xenograft mouse models. Nat Rev Cancer. 15 (5), 311-316 (2015).
  4. Puig, I., et al. A personalized preclinical model to evaluate the metastatic potential of patient-derived colon cancer initiating cells. Clin Cancer Res. 19 (24), 6787-6801 (2013).
  5. van de Wetering, M., et al. Prospective derivation of a living organoid biobank of colorectal cancer patients. Cell. 161 (4), 933-945 (2015).
  6. Fujii, M., et al. A Colorectal tumor organoid library demonstrates progressive loss of niche factor requirements during tumorigenesis. Cell Stem Cell. 18 (6), 827-838 (2016).
  7. Fumagalli, A., et al. Genetic dissection of colorectal cancer progression by orthotopic transplantation of engineered cancer organoids. Proc Natl Acad Sci U S A. 114 (12), E2357-E2364 (2017).
  8. O’Rourke, K. P., et al. Transplantation of engineered organoids enables rapid generation of metastatic mouse models of colorectal cancer. Nat Biotechnol. 35 (6), 577-582 (2017).
  9. Roper, J., et al. In vivo genome editing and organoid transplantation models of colorectal cancer and metastasis. Nat Biotechnol. 35 (6), 569-576 (2017).
  10. Kuo, T. H., et al. Liver colonization competence governs colon cancer metastasis. Proc Natl Acad Sci U S A. 92 (26), 12085-12089 (1995).
  11. Onuma, K., et al. Genetic reconstitution of tumorigenesis in primary intestinal cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (27), 11127-11132 (2013).
  12. Onder, T. T., et al. Loss of E-cadherin promotes metastasis via multiple downstream transcriptional pathways. Cancer Res. 68 (10), 3645-3654 (2008).
  13. Cespedes, M. V., et al. Orthotopic microinjection of human colon cancer cells in nude mice induces tumor foci in all clinically relevant metastatic sites. Am J Pathol. 170 (3), 1077-1085 (2007).
  14. Fujii, E., et al. Characterization of EBV-related lymphoproliferative lesions arising in donor lymphocytes of transplanted human tumor tissues in the NOG mouse. Exp Anim. 63 (3), 289-296 (2014).
check_url/fr/57374?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Okazawa, Y., Mizukoshi, K., Koyama, Y., Okubo, S., Komiyama, H., Kojima, Y., Goto, M., Habu, S., Hino, O., Sakamoto, K., Orimo, A. High-sensitivity Detection of Micrometastases Generated by GFP Lentivirus-transduced Organoids Cultured from a Patient-derived Colon Tumor. J. Vis. Exp. (136), e57374, doi:10.3791/57374 (2018).

View Video