Summary

चुंबकीय-सक्रिय सेल छंटाई रणनीतियों को अलग करने और शुद्ध श्लेष द्रव-व्युत्पंन Mesenchymal एक खरगोश मॉडल से स्टेम कोशिकाओं

Published: August 10, 2018
doi:

Summary

यह लेख सीधा अलगाव और ंयूजीलैंड सफेद खरगोश श्लेष द्रव से mesenchymal स्टेम कोशिकाओं के शोधन के लिए एक सरल और आर्थिक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करता है ।

Abstract

Mesenchymal स्टेम सेल (MSCs) कोशिका आधारित चिकित्सा के लिए मुख्य सेल स्रोत हैं । जोड़दार गुहा श्लेष द्रव से MSCs संभवतः उपास्थि ऊतक इंजीनियरिंग के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है । श्लेष द्रव (एस एफ-MSCs) से MSCs जोड़दार उत्थान के लिए होनहार उंमीदवार माना गया है, और उनके संभावित चिकित्सीय लाभ उंहें देर से एक महत्वपूर्ण शोध का विषय बना दिया है । एस एफ-ंयूजीलैंड के घुटने गुहा से MSCs सफेद खरगोश मानव अपक्षयी दवा का आकलन करने के लिए एक अनुकूलित शोधों मॉडल के रूप में नियोजित किया जा सकता है । CD90 आधारित चुंबकीय सक्रिय सेल छँटाई (एमएसीएस) प्रौद्योगिकियों के माध्यम से, इस प्रोटोकॉल सफलतापूर्वक खरगोश एस एफ-MSCs (rbSF-MSCs) इस खरगोश मॉडल से प्राप्त करता है और आगे पूरी तरह से उन्हें अंतर करने के लिए उत्प्रेरण द्वारा इन कोशिकाओं के एमएससी phenotype को दर्शाता है osteoblasts, adipocytes, और chondrocytes । इसलिए, इस दृष्टिकोण सेल जीवविज्ञान अनुसंधान और ऊतक इंजीनियरिंग में सरल उपकरण और प्रक्रियाओं का उपयोग कर लागू किया जा सकता है ।

Introduction

MSCs, विशेष रूप से उपास्थि घावों के लिए, अपक्षयी दवा के लिए एक मूल्यवान स्रोत के रूप में सुझाव दिया गया है । chondrocytes, osteoblasts, adipocytes, कंकाल myocytes, और आंत stromal कोशिकाओं सहित MSCs, मोटे तौर पर अपने उच्च विस्तार दर और बहु वंश विभेद संभावित1के कारण स्टेम सेल प्रत्यारोपण के लिए क्षेत्रों का विस्तार । MSCs कंकाल की मांसपेशी, synovium, अस्थि मज्जा, और वसा ऊतक2,3,4से अलग किया जा सकता है । निष्कर्ष भी श्लेष द्रव में MSCs की उपस्थिति confirmed है, और पिछले अनुसंधान श्लेष द्रव-व्युत्पंन MSCs (एस एफ-MSCs) जोड़दार पुनर्जनन5,6के लिए होनहार उंमीदवारों के रूप में पहचान की है ।

हालांकि, मानव नमूनों पर अनुसंधान और नैदानिक प्रयोग कई नैतिक मुद्दों के अधीन हैं । इसके बजाय, खरगोशों गया है और सबसे अधिक इस्तेमाल किया जानवर प्रजातियों के लिए MSCs के प्रत्यारोपण का प्रदर्शन उपास्थि क्षति की मरंमत कर सकते है प्रदर्शित होने के लिए जारी है । हाल के वर्षों में, शोधकर्ताओं की एक बढ़ती हुई संख्या खरगोश mesenchymal स्टेम सेल (rbMSCs) दोनों विट्रो में और vivo मेंअध्ययन किया है, के रूप में इन कोशिकाओं को अपने सेलुलर जीव विज्ञान और ऊतक फिजियोलॉजी में मानव MSCs के समान हैं. इसी तरह, rbMSCs प्लास्टिक सतहों का पालन करने में सक्षम हैं, धुरी-fibroblast मानव MSCs के रूप में आकृति विज्ञान प्रदर्शित । इसके अलावा, खरगोश mesenchymal नमूने सरल और7प्राप्त करने के लिए आसान कर रहे हैं । इसके अतिरिक्त, सबसे महत्वपूर्ण बिंदु है कि rbMSCs एक्सप्रेस ऐसी CD44, CD90 के रूप में सतह मार्करों, और CD105, और है कि बहु वंश भिंनता क्षमता संरक्षित है, जो एमएससी आबादी की पहचान के लिए मानदंड के साथ समझौते में है सेलुलर थेरेपी के लिए इंटरनेशनल सोसायटी द्वारा परिभाषित8,9. विशेष रूप से, श्लेष द्रव chondroprogenitors गैर में सक्षम है hypertrophic chondrogenesis जब TGF द्वारा प्रेरित-β1, इस प्रकार उंहें phenotypically जोड़दार उपास्थि पुनर्जनन10,11के लिए उपयुक्त सेल सूत्रों बनाने, 12.

हालांकि, एस एफ के अलगाव-MSCs गर्भनाल, वसा ऊतक, परिधीय रक्त, और अस्थि मज्जा सहित अंय ऊतकों से बहुत अलग है । वर्तमान में, शुद्धि और एस एफ-MSCs की छंटाई के लिए सबसे आम दृष्टिकोण प्रवाह cytometry और immunomagnetic मनका-छंटाई आधारित हैं, हालांकि प्रवाह cytometry विधि एक विशिष्ट वातावरण और बहुत महंगा उपकरणों13की आवश्यकता है ।

यह लेख ंयूजीलैंड सफेद खरगोशों से श्लेष द्रव के नमूनों की सरल और ंयूनतम इनवेसिव संग्रह के लिए एक प्रक्रिया प्रस्तुत करता है । प्रक्रिया के दौरान, rbSF-MSCs इन विट्रो में विस्तार कर रहे है और फिर CD90 सकारात्मक चुंबकीय मनका आधारित प्रक्रियाओं के साथ अलग । अंत में, प्रोटोकॉल से पता चलता है कि एक उच्च शुद्धता और व्यवहार्यता के साथ MSCs प्राप्त करने के लिए काटा सेल सूत्रों ।

इस प्रोटोकॉल में, अलग rbSF-MSCs उनकी आकृति विज्ञान, विशिष्ट मार्करों की अभिव्यक्ति, और स्टेम सेल के लिए pluripotency के आधार पर विशेषता है । प्रवाह cytometry आधारित immunophenotyping CD44 और CD105 की एक महत्वपूर्ण सकारात्मक अभिव्यक्ति का पता चलता है, जबकि CD45 और CD34 की अभिव्यक्ति नकारात्मक है । अंत में, एक इन विट्रो rbSF के लिए परख-MSCs osteogenic, adipogenic, और इन कोशिकाओं के chondrogenic भेदभाव दर्शाता है ।

Protocol

सभी पशु प्रयोगों क्षेत्रीय नैतिकता समिति के निर्देशों के अनुसार आयोजित किए गए थे, और सभी पशु प्रक्रियाओं शेन्ज़ेन दूसरा पीपुल्स अस्पताल, शेन्ज़ेन विश्वविद्यालय के संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समित?…

Representative Results

अलगाव, शुद्धि, और rbSF की संस्कृति-MSCs:इस प्रोटोकॉल rbSF-MSCs, MSC सतह मार्कर CD90 की अभिव्यक्ति पर आधारित अलग करने के लिए एमएसीएस का उपयोग करता है । rbSF के एक प्रक्रिया प्रवाह आरेख-MSCs ‘ अलगाव, शुद्धि, और…

Discussion

श्लेष द्रव में MSCs का अस्तित्व कोशिका-आधारित चिकित्सा के लिए एक विकल्प प्रदान करता है । पिछले अध्ययनों से पता चला है कि चोट साइटों को अपने श्लेष द्रव में mesenchymal स्टेम कोशिकाओं की उच्च मात्रा में होते हैं, ज?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस अध्ययन के आर्थिक रूप से निंनलिखित अनुदान द्वारा समर्थित था: चीन के प्राकृतिक विज्ञान फाउंडेशन (No. ८१५७२१९८; No. ८१७७२३९४); शेन्ज़ेन विश्वविद्यालय के उच्च स्तरीय चिकित्सा अनुशासन निर्माण के लिए निधि (No. २०१६०३१६३८); गुआंग्डोंग प्रांत के मेडिकल रिसर्च फाउंडेशन, चीन (सं. A2016314); और शेन्ज़ेन विज्ञान और प्रौद्योगिकी परियोजनाएं (सं. JCYJ20170306092215436; नहीं. JCYJ20170412150609690; नहीं. JCYJ20170413161800287; नहीं. SGLH20161209105517753; नहीं. JCYJ20160301111338144) ।

Materials

Reagents
MesenGro StemRD MGro-500 1703 Warm in 37 °C water bath before use
MesenGro Supplement StemRD MGro-500 M1512 Component of MSCs culture medium
DMEM basic Gibco Inc. C11995500BT MSCs differentiation medium
Isotonic saline solution Litai, China 5217080305 Cavity arthrocentesis procedure reagent
Phosphate-Buffered Saline (PBS) HyClone Inc. SH30256.01B PBS, free of Ca2+/Mg2+
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco Inc. 10099-141 Component of MSCs culture medium
Povidone iodine solution Guangdong, China 150605 Sterilization agent
75% ethanol Lircon, china 170917 Sterilization agent
0.25% Trypsin/EDTA Gibco Inc. 25200-056 Cell dissociation reagent
1% Penicillin-Streptomycin Gibco Inc. 15140-122 Component of MSCs medium
MACS Running Buffer MiltenyiBiotec 5160112089 Containing phosphate-buffered saline (PBS), 0.5% bovine serum albumin(BSA), and 2 mMEDTA
CD90 antibody conjugated MicroBeads MiltenyiBiotec 5160801456 For magnetic activated cell sorting
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P2256 Component of MSCs chondrogenic differentiation
Dexamethasone Sigma-Aldrich D1756 Component of MSCs osteogenic differentiation
ITS BD 354352 1%, Component of MSCs chondrogenic differentiation
L-proline Sigma-Aldrich P5607 0.35 mM, Component of MSCs chondrogenic differentiation
L-ascorbic acid-2-phosphate Sigma-Aldrich A8960 50 mM, Component of MSCs chondrogenic differentiation
3-isobutyl-1-methylxanthine Sigma-Aldrich I5879 0.5 mM, Component of adipogenic differentiation
Indomethacin Sigma-Aldrich I7378 100 mM, Component of adipogenic differentiation
TGFβ1 Peprotech 100-21 10 ng/mL, Component of MSCs chondrogenic differentiation
α-glycerophsphate Sigma-Aldrich G6751 Component of MSCs osteogenic differentiation
CD34 Polyclonal Antibody, FITC Conjugated Bioss bs-0646R-FITC Hematopoietic stem cells marker
Mouse antirabbit CD44 Bio-Rad MCA806GA Thy-1 membrane glycoprotein (MSCs marker)
CD45 (Monoclonal Antibody) Bio-Rad MCA808GA Hematopoietic stem cells marker
CD105 antibody Genetex GTX11415 MSCs marker
Isopropyl alcohol Sigma-Aldrich I9030 Precipitates RNA extraction organic phases
Trichloromethane Wenge, China 61553 Extract total RNA
Trizol Invitrogen 15596-018 Isolate total RNA
SYBR green master mix Takara Bio, Japan RR420A PCR test
cDNA synthesis kit Takara Bio, Japan RR047A Reverse-transcribed to complementary DNA
Alizarin Red Sigma-Aldrich A5533 Staining of calcium compounds
Toluidine Blue Sigma-Aldrich 89640 Staining of cartilaginous tissue
Oil Red O solution Sigma-Aldrich O1391L Lipid vacuole staining
Equipment
MiniMACS Separator MiltenyiBiotec 130-042-102 For magnetic activated cell sorting
MultiStand MiltenyiBiotec 130-042-303 For magnetic activated cell sorting
MS Columns MiltenyiBiotec 130-042-201 For magnetic activated cell sorting
Cell Strainer FALCON Inc. 352340 40 μm nylon
Hemocytometer ISOLAB Inc. 075.03.001 Cell counting
Falcon 100 mm  dish Corning 353003 Cell culture dish
Microcentrifuge tube Axygen MCT-150-C RNA Extraction and PCR
Centrifuge Tubes Sigma-Aldrich 91050 Gamma-sterilized
High-speed centrifuge Eppendorf 5804R Centrifuge cells
Carbon dioxide cell incubator Thermo scientific 3111 Cell culture
Real-Time PCR Instrument Life Tech QuantStudio Real-Time quantitative polymerase chain reaction
Flow cytometer BD Biosciences 342975 Cell analyzer
Pipettor Eppendorf O25456F Transfer the liquid
Cloning cylinder Sigma-Aldrich C3983-50EA Isolate and pick individual cell colonies
Sterile hypodermic syringe Double-Dove, China 131010 Arthrocentesis procedure
Rabbit cage Zhike, China ZC-TGD Restrain the rabbit

References

  1. Oreffo, R. O., Cooper, C., Mason, C., Clements, M. Mesenchymal stem cells: lineage, plasticity, and skeletal therapeutic potential. Stem Cell Reviews. 1 (2), 169-178 (2005).
  2. Asakura, A., Rudnicki, M. A., Komaki, M. Muscle satellite cells are multipotential stem cells that exhibit myogenic, osteogenic, and adipogenic differentiation. Differentiation. 68 (4-5), 245-253 (2001).
  3. De, B. C., Dell’Accio, F., Tylzanowski, P., Luyten, F. P. Multipotent mesenchymal stem cells from adult human synovial membrane. Arthritis Rheumatology. 44 (8), 1928-1942 (2001).
  4. Zuk, P. A., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Molecular Biology of the Cell. 13 (12), 4279-4295 (2002).
  5. McGonagle, D., Jones, E., English, A., Emery, P. Enumeration and phenotypic characterization of synovial fluid multipotential mesenchymal progenitor cells in inflammatory and degenerative arthritis. Arthritis & Rheumatism. 50 (3), 817-827 (2004).
  6. Jia, Z., et al. Isolation and characterisation of human mesenchymal stem cells derived from synovial fluid by magnetic activated cell sorting (MACS). Cell Biology International. , (2017).
  7. Bashir, M., et al. Isolation, culture and characterization of New Zealand white rabbit mesenchymal stem cells derived from bone marrow. Asian Journal of Animal & Veterinary Advances. 10 (8), 13-30 (2015).
  8. Song, X., et al. Differentiation potential of rabbit CD90-positive cells sorted from adipose-derived stem cells in vitro. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Animal. 53 (1), 1-6 (2016).
  9. Lee, T. C., et al. Comparison of surface markers between human and rabbit mesenchymal stem cells. PLOS One. 9 (11), e111390 (2014).
  10. Stewart, M. C., Chen, Y., Bianchessi, M., Pondenis, H. Phenotypic characterization of equine synovial fluid-derived chondroprogenitor cells. Stem Cell Biology and Research. 3 (1), (2016).
  11. Prado, A. A. F., et al. Characterization of mesenchymal stem cells derived from the equine synovial fluid and membrane. BioMed Central Veterinary Research. 11 (1), 281 (2015).
  12. Yoshimura, H., et al. Comparison of rat mesenchymal stem cells derived from bone marrow, synovium, periosteum, adipose tissue, and muscle. Cell and Tissue Research. 327 (3), 449-462 (2007).
  13. Wu, C. C., et al. Intra-articular injection of platelet-rich fibrin releasates in combination with bone marrow-derived mesenchymal stem cells in the treatment of articular cartilage defects: an in vivo study in rabbits. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 105 (6), 1536-1543 (2017).
  14. John, T., Lerche, P. . Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians. , (2011).
  15. Koyama, N., et al. Pluripotency of mesenchymal cells derived from synovial fluid in patients with temporomandibular joint disorder. Life Sciences. 89 (19-20), 741-747 (2011).
  16. Kim, Y. S., et al. Isolation and characterization of human mesenchymal stem cells derived from synovial fluid in patients with osteochondral lesion of the talus. American Journal of Sports Medicine. 43 (2), 399-406 (2015).
  17. Vereb, Z., et al. Immunological properties of synovial fluid-derived mesenchymal stem cell-like cells in rheumatoid arthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 74 (Suppl 1), A64-A65 (2015).
  18. Matsukura, Y., Muneta, T., Tsuji, K., Koga, H., Sekija, I. Mesenchymal stem cells in synovial fluid increase after meniscus injury. Clinical Orthopaedics & Related Research. 472 (5), 1357-1364 (2014).
  19. Morito, T., et al. Synovial fluid-derived mesenchymal stem cells increase after intra-articular ligament injury in humans. Rheumatology. 47 (8), 1137-1143 (2008).
  20. Hegewald, A. A., et al. Hyaluronic acid and autologous synovial fluid induce chondrogenic differentiation of equine mesenchymal stem cells: a preliminary study. Tissue & Cell. 36 (6), 431-438 (2004).
  21. Jones, E. A., et al. Synovial fluid mesenchymal stem cells in health and early osteoarthritis: detection and functional evaluation at the single cell level. Arthritis & Rheumatism. 58 (6), 1731-1740 (2008).
  22. Makker, K., Agarwal, A., Sharma, R. K. Magnetic activated cell sorting (MACS): utility in assisted reproduction. Indian Journal of Experimental Biology. 46 (7), 491-497 (2008).
  23. Schmitz, B., et al. Magnetic activated cell sorting (MACS) — a new immunomagnetic method for megakaryocytic cell isolation: comparison of different separation techniques. European Journal of Haematology. 52 (5), 267-275 (1994).
  24. Reinhardt, M., Bader, A., Giri, S. Devices for stem cell isolation and delivery: current need for drug discovery and cell therapy. Expert Review of Medical Devices. 12 (3), 353-364 (2015).
  25. Gronthos, S., Zannettino, A. C. W., Prockop, D. J., Bunnell, B. A., Phinney, D. G. A method to isolate and purify human bone marrow stromal stem cells. Mesenchymal Stem Cells. , 45-57 (2008).
  26. Krawetz, R. J., et al. Synovial fluid progenitors expressing CD90+ from normal but not osteoarthritic joints undergo chondrogenic differentiation without micro-mass culture. PLOS One. 7 (8), e43616 (2012).
  27. Ogata, Y., et al. Purified human synovium mesenchymal stem cells as a good resource for cartilage regeneration. PLOS One. 10 (6), e0129096 (2015).
  28. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells: the International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).
  29. Gauci, S. J., et al. Modulating chondrocyte hypertrophy in growth plate and osteoarthritic cartilage. Journal of Musculoskeletal & Neuronal Interact. 8 (4), 308 (2008).
  30. Cooke, M. E., et al. Structured three-dimensional co-culture of mesenchymal stem cells with chondrocytes promotes chondrogenic differentiation without hypertrophy. Osteoarthritis and Cartilage. 19 (10), 1210-1218 (2011).
  31. Fischer, J., Dickhut, A., Rickert, M., Richter, W. Human articular chondrocytes secrete parathyroid hormone-related protein and inhibit hypertrophy of mesenchymal stem cells in coculture during chondrogenesis. Arthritis and Rheumatism. 62 (9), 2696-2706 (2010).
check_url/fr/57466?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Jia, Z., Liang, Y., Li, X., Xu, X., Xiong, J., Wang, D., Duan, L. Magnetic-Activated Cell Sorting Strategies to Isolate and Purify Synovial Fluid-Derived Mesenchymal Stem Cells from a Rabbit Model. J. Vis. Exp. (138), e57466, doi:10.3791/57466 (2018).

View Video