Oxigenação de membrana extracorpórea veno-venosa em um rato
Summary
Aqui nós apresentamos um protocolo descreve a técnica de oxigenação de membrana extracorpórea veno-venosa (ECMO) em um não-intubado, espontaneamente respiração mouse. Este modelo murino de ECMO pode ser efetivamente implementado em estudos experimentais de aguda e doenças pulmonares de estágio final.
Abstract
O uso de oxigenação de membrana extracorpórea (ECMO) tem aumentado substancialmente nos últimos anos. ECMO tornou-se uma terapia eficaz e confiável para aguda, bem como doenças de pulmão estágio final. Com o aumento da demanda de clínica e uso prolongado de ECMO, otimização processual e prevenção de danos em vários órgãos são de importância crucial. O objectivo do presente protocolo é apresentar uma técnica detalhada de ECMO veno-venosa em um não-entubada, respirando espontaneamente do mouse. Este protocolo demonstra o desenho técnico do ECMO e etapas cirúrgicas. Este modelo murino de ECMO facilitará o estudo da fisiopatologia relacionada com ECMO (por exemplo, inflamação, eventos tromboembólicos e sangramento). Devido à abundância de ratos geneticamente modificados, os mecanismos moleculares envolvidos nas complicações relacionadas com o ECMO podem também ser dissecados.
Introduction
Oxigenação de membrana extracorpórea (ECMO) é um sistema de suporte de vida temporária que assume as funções dos pulmões e coração para permitir que a perfusão e a troca gasosa adequada. Hill et al1 descreveu o primeiro uso do ECMO em pacientes em 1972; no entanto, só se tornou amplamente utilizada após a sua aplicação bem sucedida durante o H1N1 da gripe pandêmica em 20092. Hoje, o ECMO rotineiramente é usada como um procedimento de salva-vidas em estágio final coração e pulmão doenças3. ECMO veno-venosa é cada vez mais empregado como uma alternativa para a ventilação mecânica invasiva em acordada, não-entubada, respirando espontaneamente a pacientes com insuficiência respiratória refratários4.
Apesar da sua adopção generalizada, diversas complicações têm sido relatadas para o ECMO5,6,7. Complicações que podem ser experienciadas por pacientes em ECMO incluem hemorragia, trombose, sepse, trombocitopenia, disfunções relacionadas ao dispositivo e embolia gasosa. Além disso, uma síndrome de resposta inflamatória sistêmica (SIRS), resultando em danos nos órgãos multi é bem descrita clinicamente e em estudos experimentais8,9. Complicações neurológicas como infarto cerebral são também frequentemente relatadas em pacientes submetidos a terapia a longo prazo do ECMO. Para confundir matérias, muitas vezes é difícil distinguir se as complicações são causadas pelo ECMO em si ou surgem os distúrbios subjacentes que acompanha aguda e doenças da fase final.
Para estudar especificamente os efeitos do ECMO em um organismo saudável, deve ser estabelecido um modelo animal experimental confiável. Há muito poucos relatórios sobre o desempenho do ECMO em pequenos animais e são todos limitados aos ratos. Até à data, nenhum modelo do rato do ECMO tem sido descrito na literatura. Devido à disponibilidade de um grande número de estirpes de rato geneticamente modificado, estabelecimento de um modelo de ECMO mouse permitiria mais investigação dos mecanismos moleculares envolvidos em complicações relacionadas à ECMO10,11.
Com base no nosso modelo murino descrito anteriormente de extracorpórea (CEC)12, nós desenvolvemos um método estável de ECMO veno-venosa em não-entubada, respirando espontaneamente ratos. O circuito ECMO (Figura 1), que contém o efluxo e cânulas de afluência, uma bomba peristáltica, oxigenador e retêm o ar reservatório, é semelhante ao nosso modelo descrito anteriormente de murino CPB12 com exceção de ter uma menor escorva volume (0,5 mL). Este protocolo demonstra as técnicas detalhadas, monitorização fisiológica e gasometria arterial envolvida em um processo bem sucedido de ECMO.
Protocol
Representative Results
Discussion
Anteriormente, nós descrevemos um modelo bem sucedido de CEC em um rato12,13. Para implementar esse modelo para aguda ou doenças de pulmão estágio final desenvolvemos um circuito ECMO veno-venosa easy-to-use para ratos. Diferente para o modelo do CPB, veno-venosa ECMO não requer procedimentos cirúrgicos complicados como esternotomia e aperto da aorta, reduzindo assim o risco de sangramento de ferimento em um animal totalmente heparinizado. Para evitar a emb…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Este projecto foi apoiado por concessão de 311 KFC do Deutsche Forschungsgemeinschaft.
Materials
| Sterofundin | B.Braun Petzold GmbH | PZN:8609189 | in 1:1 with Tetraspan |
| Tetraspan 6% Solution | B. Braun Melsungen AG | PZN: 05565416 | in 1:1 with Sterofundin |
| Heparin Natrium 25.000 | Ratiopharm GmbH | PZN: 3029843 | 2,5 IU per ml of priming |
| NaHCO3 8,4% Solution | B. Braun Melsungen AG | PZN: 1579775 | 3% in priming solution |
| Carprofen | Zoetis Inc., USA | PZN:00289615 | 5mg/kg/BW |
| 1 Fr PU Catheter | Instechlabs INC., USA | C10PU-MCA1301 | carotide artery |
| 2 Fr PU Catheter | Instechlabs INC., USA | C20PU-MJV1302 | jugular vein |
| 8-0 Silk suture braided | Ashaway Line & Twine Co., USA | 75290 | ligature |
| Isoflurane | Piramal Critical Care GmbH | PZN:9714675 | narcosis |
| Spring Scissors – 6mm Blades | Fine Science Tools GmbH | 15020-15 | instruments |
| Spring Scissors – 2mm Blades | Fine Science Tools GmbH | 15000-03 | instruments |
| Halsted-Mosquito Hemostat | Fine Science Tools GmbH | 13009-12 | instruments |
| Dumont #55 Forceps | Fine Science Tools GmbH | 11295-51 | instruments |
| Castroviejo Micro Needle Holder – 9cm | Fine Science Tools GmbH | 12060-02 | instruments |
| Micro Serrefines | Fine Science Tools GmbH | 18555-01 | instruments |
| Bulldog Serrefine | Fine Science Tools GmbH | 18050-28 | instruments |
| Isoflurane Vaporizer Drager 19.1 | Drägerwerk AG & Co. KGaA | anesthesia 1,3 -2,5% | |
| Multichannel Data Aquisition Device with ISOHEART Software | Hugo Sachs Elektronik GmbH, Germany | invasive pressure, ECG, t °C | |
| i-STAT portable device | Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA | blood gas analysis | |
| i-STAT CG4+ and CG8+ cartridges | Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA | blood gas analysis | |
| C57Bl/6 mice, male, 30 g, 14 weeks old | Charles River Laboratories | housed 1 week before |
References
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