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Article de méthode

Exploitant imagerie direct aux noyaux de piste au cours de la différenciation des myoblastes et Fusion

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DOI :

10.3791/58888

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13 avril 2019

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Différenciation musculaire squelettique est un processus très dynamique, qui s’appuie notamment sur positionnement nucléaire. Nous décrivons ici une méthode pour suivre les mouvements des noyaux par imagerie de cellules vivantes pendant la formation de différenciation et de myotubes myoblastes et d’effectuer une caractérisation quantitative de noyaux dynamique en extrayant les informations de suivi automatique.

Résumé

Un positionnement nucléaire au sein de cellules est important pour plusieurs processus cellulaires dans le développement et la régénération. L’exemple plus intrigant de positionnement nucléaire se produit au cours de la différenciation musculaire squelettique. Les fibres musculaires (fibres musculaires) sont des cellules multinucléées formés par la fusion de cellules précurseurs de muscle (myoblastes) dérivés de cellules souches musculaires (cellules satellites) qui subissent la prolifération et la différenciation. Bon positionnement nucléaire au sein des fibres musculaires est nécessaire pour la régénération musculaire correcte et la fonction. La procédure uniforme pour évaluer la formation la différenciation et de la fibre musculaire de myoblastes s’appuie sur les cellules fixes analysés par immunofluorescence, qui fait obstacle à l’étude du comportement de mouvement et de la cellule nucléaire au fil du temps. Nous décrivons ici une méthode pour l’analyse de formation de différenciation et de la fibre musculaire de myoblastes par imagerie de cellules vivantes. Nous fournissons un logiciel pour un suivi automatisé nucléaire afin d’obtenir une caractérisation quantitative de haut débit de dynamique nucléaire et le comportement de myoblastes (c.-à-d., la trajectoire) au cours de la différenciation et la fusion.

Introduction

Le muscle squelettique est un tissu plus grand dans le corps humain, pour un total de 35-40 % de la masse de corps1. Cellules satellites sont des cellules souches musculaires, caractérisées anatomiquement par leur position (juxtaposée à la membrane plasmique, sous la couche basale des fibres musculaires), qui donnent lieu à la prolifération de myoblastes (progéniteurs myogéniques), qui finit par différencier et intégrer les myofibres existants et/ou fondre à forme nouvelle myofibres2,3,4. Leur découverte et les progrès dans l’étude de leur biologie a c....

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Protocole

Toutes les procédures impliquant des sujets animaux ont été approuvées par le Comité de l’emploi et de San Raffaele Institutional Animal Care.

1. la dissection des muscles postérieurs de la souris

  1. Stériliser les pinces et ciseaux (à la fois droites et courbes) à l’autoclave.
  2. Préparer et filtrer (0,22 µm) tous les médias (blocage moyen, moyen de digestion, prolifèrent moyen et moyen de différencier) avant de commencer l’expérience (voir Table des matières).
  3. Mettre 5 mL d’une solution saline tamponnée au phosphate (PBS) dans une boîte de pétri pour collection de muscle de 35 mm.
  4. Sacrifi....

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Résultats

Pour suivre automatiquement les mouvement nucléaire au cours de la différenciation des myoblastes en imagerie live, les noyaux doivent préférentiellement être fluorescent étiquetés. Il est important de noter que l’à l’aide de molécules d’ADN-intercalation n’est pas possible car ces molécules interfèrent avec la prolifération et la différenciation des myoblastes primaires13. À titre d’exemple, la prolifération et la différenciation ont été analysés dans les myoblast.......

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Discussion

Les fibres musculaires (fibres musculaires) sont des cellules multinucléées qui sont formées par la fusion de cellules précurseurs de muscle (myoblastes) dérivée de cellules souches musculaires (cellules satellites) qui subissent la prolifération et la différenciation2,3, 4. Afin d’évaluer la différenciation des myoblastes, la procédure commune consiste en cultivant des myoblastes au moyen de différenciation et de fixer les cel.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par l’AFM-Telethon e.v. (#21545) et par la subvention de démarrage de Ospedale San Raffaele (OSR) à S.Z. (ZAMBRA5X1000). Dr. Jean-Yves Tinevez du moyeu de l’analyse d’Image de l’Institut Pasteur est reconnue pour partager publiquement ses routines MATLAB « Simple Tracker ».

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
extrait d’embryons de pouletSeralabCE-650-J
collagénaseSigmaC9263-1G125unités/mg
de collagène de peau de veauSigmaC8919
dispaseGibco17105-0411,78 unités/mg
doxyciclinSigmaD1515
DMEMSigmaD5671
sérum fœtal bovinLife technologies10270106
gentamicineSigmaG1397
Sérum de chevalInvitrogen16050-098
Hoechstlife technologies33342
IMDMSigmaI3390
L-glutamineSigmaG7513
MatrigelCorning356231
pénicilline-streptomycineSigmaP0781
globules rouges milieu de lyseBiolegend420301
Milieu de digestion
collagenase40 mg
dispase70 mg
PBS20 ml
filtré 0,22 um
milieu bloquant
DMEM
Sérum fœtal bovin10 %
L-glutammine1 %
pénicilline-streptomycine1 %
gentamicine1 et permil ;
filtré 0,22um
milieu de prolifération
IMDM
Sérum fœtal bovin20 %
L-glutammine1 %
pénicilline-streptomycine1 %
gentamicine1 et permil ;
Extrait d’embryon de chichen3 %
filtré 0,22um
Medium de différenciation
IMDM
Sérum de cheval2 %
L-glutammine1 %
pénicilline-streptomycine1 %
gentamicine1 & permil ;
Extrait d’embryon de Chichen1 %
Filtré 0.22um

Références

  1. Janssen, I., Heymsfield, S. B., Wang, Z. M., Ross, R. Skeletal muscle mass and distribution in 468 men and women aged 18-88 yr. Journal of Applied physiology. 89 (1), 81-88 (2000).
  2. Ten Broek, R. W., Grefte, S., Von den Hoff, J. W.

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Réimpressions et autorisations

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