Summary

Плечевая артерия катетеризации в свиней

Published: March 30, 2019
doi:

Summary

Видео подробно описывает катетеризация дистальной части плечевой артерии в свиней. Эта процедура точно измеряет артериальное давление и является простой и быстрый метод для сбора образцов для измерения газов артериальной крови.

Abstract

Видео подробно описывает катетеризация дистальной части плечевой артерии в свиней. Эта техника позволяет исследователям для измерения артериального давления непрерывно и сбора образцов артериальной крови для оценки измерения газов артериальной крови. Артериальное давление крови и газы артериальной крови являются важные физиологические параметры для мониторинга в ходе экспериментальных процедур. В свиней были описаны четыре общих методов артериальной катетеризации, включая катетеризацию сонной, бедренной, ушной раковины и медиальной подкожной артерий. Каждый из этих методов имеют такие преимущества, как простота доступа для ушная артерия и недостатки, которые включают рассечение глубоких тканей для катетеризации сонной артерии. Описан альтернативный метод артериальной катетеризации в свиней, катетеризация дистальной аспект плечевой артерии, является быстрая процедура, которая требует рассечение относительно минимальной тканей и предоставляет информацию, которая соответствует данных собранных с других сайтов артериальной катетеризации. Процедура использует медиальный подход вдоль наклонной плоскости нижней предплечья, расположенное между локтевого отростка и сгибателей аспект локтевого сустава, и этот подход позволяет исследователям основным преимуществом беспрепятственной свободы для процедур, которые включают caudoventral, caudodorsal обратно или задних конечностей свиней. Благодаря расположению верхних передних конечностей вводили судна и потенциальные проблемы эффективного гомеостаза, после удаления катетера из артерии этот метод может быть ограничено для не оздоровительных процедур.

Introduction

Хирургическое вмешательство используется в экспериментальных исследованиях для разработки Животные модели, которые улучшают развитие науки. Научной литературе заполняется с примерами романа хирургические животных моделей1,2,3. Хирургические процедуры являются сложным процессом с участием не только манипуляции анатомические структуры, но и сложные физиологические взаимодействия с различными препаратами, необходимых для анестезии и обезболивании. Это взаимодействие может вызвать серьезные изменения в физиологических процессах внутри животного и как таковая требует бдительности контроля животных4. Клинически успешного хирургического результаты были связаны с измерениями газов артериальной крови и артериальное давление5. Эти клинические параметры требуется возможность измерить артериальное давление и собирать артериальной крови эффективно, в свою очередь требует успешного катетеризация артерий6,7.

Артериальная катетеризация собирать артериальной крови и измерить давление был использован в различных видов животных5,6,,78,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 и в животных в разных возрастов развития19,,2021 и была направлена на обоих восстановления процедуры (клинические и диагностические)4,5, 6,7,8 и не восстановления (экспериментальная) процедуры14,15,16,17,18. Кроме того, легкость артериальной доступа и расположения артерии в контексте хирургической процедуры являются также важными соображениями при выборе артерии для измерения артериальной крови. Например средний хвостового артерии у собак и лицевой артерии в лошадей, а также водные артерии у собак и лошадей, служит для диагностики измерения и мониторинга во время восстановления процедуры6,7, 8. напротив, сонной и бедренной артерии часто вводили в свиней для либо возмещения или долгосрочный катетер имплантации экспериментов14,15,18.

Свиней артериальной катетеризация для измерения либо артериального давления или собирать артериальной крови постоянно пользовалась в сонной артерии, бедренной, медиальной подкожной или ушная артерий22,23. Для специализированных нестандартные процедуры другие более необычные артерий были использованы, включая подключичные и подвздошных артерий, чтобы измерить анатомические извилистость плечевой артерии17 и изображения аорты16, соответственно. Независимо от того, что артерии выбирается для катетеризации, каждый артерия имеет достоинства и недостатки его использования. К примеру ушная артерия анатомически легко получить доступ, но его использование может быть ограничено его непосредственной близости к маргинальным уха вен11,12. В сравнении сонной артерии является относительно большой и надежный24, но он лежит глубоко внутри югулярной борозды и требует основной ткани рассечение25. Таким образом определение другой артерия, которая может быть вводили для измерения артериального давления и собирать артериальной крови является оправданным. Это видео и рукопись подробно описать катетеризация дистальной части плечевой артерии в свиней, технику, которая может применяться к не оздоровительных процедур. Примечательно катетеризация плечевой артерии свиньи был использован для измерения артериального давления крови и параметры газов артериальной крови во время хирургии поясничного отдела позвоночника с измерениями задних конечностей (данные из этой части операции не представлены).

Protocol

Все процедуры на подопытных животных, описанные в видео и рукописи были утверждены институциональный уход животных и использование комитета университета Альберты 1. Хирургическое анестезии и хирургических подготовка свиней. Premedicate коммерческих свиней породы Ланд…

Representative Results

Плечевая артерия катетеризация позволяет непрерывный мониторинг артериального давления и прерывистый проб артериальной крови во время расширенной хирургических процедур в свиней. Измеряемые параметры были собраны из семи 50 кг ландрас-Йоркшир коммерческих свиней, ?…

Discussion

В широкий спектр видов животных5,6,,78 был создан артериальной катетеризация измерить артериальное давление крови и собрать образцы крови для измерения газов артериальной крови , 9 , 10…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана канадской институтов медицинских исследований и Канадский фонд для инноваций Грант V. K. Mushahwar. A. Toossi было поддержано Ванье Канада выпускник стипендию, Альберта новшество – здравоохранения решения выпускник студенчества и выпускник стипендию королевы Елизаветы II. В.к. Mushahwar является Канада исследований кафедры в функциональных реставрации. Мы хотели бы признать г-н J. стек Мосс улица Productions для его помощи с аудио производство и персонал хирургического медицинского научно-исследовательского института за их помощь с процедурами.

Materials

0.9% NaCl (Saline) Solution EMRN JB1322P 1 x1 liter bag
10% Lidocaine spray AstraZeneca DIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrub Purdue Pharma 521232 1 x 500 ml bottle 
20 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381433 1 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl) Ethicon J339H 2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene)  Ethicon 8833H 2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381423 1 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tube Jorvet J0835P 1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV line Argon Medical Devices 112411 1 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapes Halyard Sales LLC 89731 4-8 x disposable drapes 
Glycopyrrolate hydrochloride  Sandoz DIN:02039508 / 1 x 20ml vial
Isoflurane Abbott Animal  Health 05260-5 1 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm) Stevens 162-7-38 8-10  instruments
Ketamine hydrochloride Vetoquinol DIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's Solution Hospira 0409-7953-09 4 x1 liter bag
Metzenbaum scissors Fine Science 14518-18
Miller laryngoscope blade Welch Allyn 68044 182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probe Surgivet V3417 1 probe
Needle Drivers Stevens 162-V98-42 2 instruments
Q tip applicators Fisher Scientific 22-037-960 20-40  app
Remifentanil hydrochloride TEVA DIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitor Surgivet V9203 1 monitor
Weitlaner retractor Stevens 162-11-602  2 retractors
Xylazine hydrochloride Bayer DIN:02169606 1 x 50ml bottle

References

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).
check_url/fr/59365?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Uwiera, R. R., Toossi, A., Everaert, D. G., Uwiera, T. C., Mushahwar, V. K. Brachial Artery Catheterization in Swine. J. Vis. Exp. (145), e59365, doi:10.3791/59365 (2019).

View Video