Summary

돼지에서 상 완 동맥 도관 법

Published: March 30, 2019
doi:

Summary

비디오는 돼지에서 원심 상 완 동맥의 도관 법을 자세하게에서 설명합니다. 이 절차는 정확 하 게 동맥 혈압을 측정 하 고 동맥 혈 가스 측정에 대 한 샘플을 수집 하는 간단 하 고 빠른 방법입니다.

Abstract

비디오는 돼지에서 원심 상 완 동맥의 도관 법을 자세하게에서 설명합니다. 이 기술은 지속적으로 동맥 혈압을 측정 하 여 동맥 혈 가스 측정을 평가 하기 위해 동맥 혈액 샘플을 수집 연구를 수 있습니다. 동맥 혈액 압력 및 동맥 혈 가스는 실험 절차 동안 모니터링 하는 데 중요 한 생리 적인 매개 변수. 돼지에서 동맥 도관 법의 4 개의 일반적인 방법은 설명, 경 동맥, 대 퇴, 부위, 그리고 중간 saphenous 동맥 도관 법을 포함 하 여. 이러한 기술의 각 부위 동맥 및 경 동맥 도관 법에 대 한 깊은 조직 해 부를 포함 하는 단점에 대 한 접근의 용이성 등 장점이 있다. 돼지, 상 완 동맥의 말 초 부분 catheterization에에서 동맥 도관 법의 설명된 대체 메서드는 상대적으로 최소한의 조직을 절 개를 요구 하 고 정보를 데이터에 맞춰 제공 빠른 절차 다른 동맥 도관 법 사이트에서 수집. 절차는 팔꿈치와 팔꿈치 관절의 flexor 측면 사이 위치 더 낮은 팔의 경사 평면을 따라 중간 접근을 사용 하 고이 이렇게 있습니다 연구자 포함 하는 절차에 대 한 한 시 빨리 벗어나게 자유의 주요 장점은 caudoventral, caudodorsal 다시, 또는 돼지의 뒷 다리 사지. Catheterized 선박의 위쪽 forelimb와 효과적인 항상성에서 동맥 카 테 테 르 제거 다음의 잠재적인 과제의 위치,이 기술은 비 복구 절차를 제한 수 있습니다.

Introduction

외과 개입 과학 발전을 강화 하는 동물 모델을 개발 실험 연구에 사용 됩니다. 과학 문학 가득 소설의 예제와 함께 수술 동물 모델,12,3. 수술 절차의 해 부 구조 뿐만 아니라 마 취와 진통에 필요한 다양 한 약물과 복잡 한 생리 적 상호 작용 뿐만 아니라 조작 관련 된 복잡 한 과정입니다. 이 상호 작용 동물 내에서 생리 적 프로세스에 큰 변화를 일으킬 수 있다 하며 같은 동물4의 경계 모니터링. 임상적으로 성공적인 수술 결과 동맥 혈 가스와 동맥 혈액 압력5의 측정 관련 되었습니다. 이러한 임상 매개 변수는 차례로 동맥6,7의 성공적인 catheterization 동맥 혈압을 측정 하 여 동맥 혈액을 효과적으로 수집 능력을 필요로 합니다.

동맥 혈액을 수집 하 여 압력 측정 동맥 도관 법은 다양 한 동물 종의5,6,7,,89,10, 에 사용 되었습니다. 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 개발19,,2021 의 다른 연령대에서 동물에 모두 복구 (임상과 진단) 절차4,5, 감독 되었습니다 6,7,8 및 복구 비 (실험) 절차14,15,,1617,18. 또한, 동맥 접근의 용이성 및 수술 절차의 문맥에서 동맥의 위치 또한 중요 한 고려 사항이 동맥 동맥 혈액 측정을 선택할 때. 예를 들어 개에 중간 꼬리 동맥 및 말에 얼굴 동맥으로 개에 말, 페달 동맥은 진단 측정을 위해 사용 되 고 모니터링 복구 절차6,7,8. 대조적으로, 경 동맥과 대 퇴 동맥은 종종 어느 비-복구에 대 한 돼지에서 catheterized 또는 장기 카 테 테 르 주입 실험14,,1518.

돼지에서 동맥 도관 법 중 동맥 혈압 측정 또는 동맥 혈액을 수집 경 동맥, 대 퇴, 중간 saphenous, 또는 귀의 동맥22,23정기적으로 고용 하고있다. 특수 비 일상적인 절차에 대 한 다른 더 특이 한 동맥 사용 되었습니다, subclavian 및 장 골 동맥를 포함 하 여 측정 하 상 완 동맥 해 부 tortuosity1716대동맥 각각 이미지. 에 관계 없이 동맥 각 동맥은 그것의 사용에 대 한 고유의 장단점이 도관 법에 대 한 선택 됩니다. 예를 들어, 귀의 동맥 해부학을 쉽게 이지만 사용 한계 귀 혈관11,12에 그것의 가까운 근접에 제한 될 수 있습니다. 비교에서는, 경 동맥은 비교적 크고 강력한24, 하지만 그것은 깊은 jugular 밭 고 랑 내 하며 실질적인 조직 해 부25. 따라서, 다른 동맥 동맥 압력을 측정 하 여 동맥 혈액 수집 catheterized 수 식별 보증 된다. 이 비디오 및 원고 돼지, 비 복구 절차에 적용 될 수 있는 기술에 있는 원심 상 완 동맥의 도관 법 자세히 설명 합니다. 특히, 돼지 상 완 동맥 도관 법 뒷 다리 측정 (수술의이 부분에서 데이터 제시 하지) 요 추 척추 수술 중 동맥 혈액 압력 및 동맥 혈 가스 매개 변수를 측정 하기 위해 사용 되었다.

Protocol

비디오 및 원고에 설명 된 실험 동물에 대 한 모든 절차는 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 앨버타의 대학에 의해 승인 되었다 1. 수술 마 취 그리고 돼지의 수술 준비. 케 타 민 염 산 염 (22 mg/kg,), xylazine 염 산 염 (2.2 mg/kg) glycopyrrolate 염 산 염 (10 µ g/kg)를 포함 된 칵테일 마 취 약물으로 피하 50kg Landrace 요크 셔 상업 돼지 premedicate 돼지의 머리 근처 테이블의 끝에…

Representative Results

상 완 동맥 도관 법은 동맥 혈압 및 동맥 혈액의 돼지에서 확장된 수술 절차 동안 간헐적인 샘플링의 지속적인 모니터링에 대 한 수 있습니다. 측정 된 매개 변수는 설명 된 대로 7 50kg Landrace 요크 셔 상업 돼지에서 수집 했다. 상 완 동맥을 catheterize 하는 데 필요한 총 시간이 이었다 35.2 ± 4.4 분 초기 동맥 landmarking에서 최종 수술 절 개 폐쇄 (그림 1). ?…

Discussion

동맥 도관 법 동맥 혈액 압력을 측정 하 고 동맥 혈 가스 측정을 위한 혈액 샘플을 수집 하는 다양 한 동물 종의5,6,,78 에 설립 되었습니다. , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , <s…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품 건강 연구의 캐나다 학회 및 캐나다 재단 혁신 그랜트 V. K. Mushahwar를 지원 한다. A. Toossi Vanier 캐나다 대학원 장학금, 앨버타 혁신-건강 솔루션 대학원 재학 및 퀸 엘리자베스 II 대학원 장학금에 의해 지원 되었다. V.K. Mushahwar 기능 복원에 캐나다 연구의 자입니다. 우리는 씨 제이 스택 모스 스트리트 프로덕션의 오디오 생산 및 절차와 함께 그들의 도움에 대 한 외과 의학 연구소의 직원으로 그의 도움에 대 한 인정 하 고 싶습니다.

Materials

0.9% NaCl (Saline) Solution EMRN JB1322P 1 x1 liter bag
10% Lidocaine spray AstraZeneca DIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrub Purdue Pharma 521232 1 x 500 ml bottle 
20 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381433 1 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl) Ethicon J339H 2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene)  Ethicon 8833H 2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381423 1 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tube Jorvet J0835P 1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV line Argon Medical Devices 112411 1 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapes Halyard Sales LLC 89731 4-8 x disposable drapes 
Glycopyrrolate hydrochloride  Sandoz DIN:02039508 / 1 x 20ml vial
Isoflurane Abbott Animal  Health 05260-5 1 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm) Stevens 162-7-38 8-10  instruments
Ketamine hydrochloride Vetoquinol DIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's Solution Hospira 0409-7953-09 4 x1 liter bag
Metzenbaum scissors Fine Science 14518-18
Miller laryngoscope blade Welch Allyn 68044 182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probe Surgivet V3417 1 probe
Needle Drivers Stevens 162-V98-42 2 instruments
Q tip applicators Fisher Scientific 22-037-960 20-40  app
Remifentanil hydrochloride TEVA DIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitor Surgivet V9203 1 monitor
Weitlaner retractor Stevens 162-11-602  2 retractors
Xylazine hydrochloride Bayer DIN:02169606 1 x 50ml bottle

References

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).
check_url/fr/59365?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Uwiera, R. R., Toossi, A., Everaert, D. G., Uwiera, T. C., Mushahwar, V. K. Brachial Artery Catheterization in Swine. J. Vis. Exp. (145), e59365, doi:10.3791/59365 (2019).

View Video