Cateterizzazione dell'arteria brachiale in maiali
Summary
Il video descrive in dettaglio la cateterizzazione dell’arteria brachiale distale in maiali. Questa procedura con precisione misura la pressione arteriosa ed è un metodo semplice e veloce per raccogliere campioni per misure di gas del sangue arterioso.
Abstract
Il video descrive in dettaglio la cateterizzazione dell’arteria brachiale distale in maiali. Questa tecnica permette ai ricercatori di misurare continuamente la pressione arteriosa e raccogliere campioni di sangue arterioso per valutare misure di gas del sangue arterioso. Le pressioni arteriose di sangue e di gas del sangue arterioso sono importanti parametri fisiologici per monitorare durante le procedure sperimentali. In maiali, quattro metodi comuni di cateterizzazione arteriosa sono stati descritti, compreso cateterizzazione delle arterie carotiche, femorale, auricolare e mediale safena. Ognuna di queste tecniche presentano vantaggi, come la facilità di accesso per l’arteria auricolare e gli svantaggi che includono dissezione dei tessuti profondi per cateterizzazione dell’arteria carotica. Il metodo alternativo descritto di cateterizzazione arteriosa in maiali, la cateterizzazione dell’aspetto distale dell’arteria brachiale, è una procedura rapida che richiede la dissezione del tessuto relativamente minimo e fornisce informazioni che sono in linea con i dati raccolti da altri siti di cateterizzazione arteriosa. La procedura utilizza un approccio mediale lungo un piano inclinato del brachium inferiore, posizionato tra l’olecrano e funzione del flessore dell’articolazione del gomito, e questo approccio permette ai ricercatori il principale vantaggio di libertà senza ostacoli per le procedure che coinvolgono caudoventral, caudodorsal schiena o arti posteriori del maiale. Grazie alla posizione dell’arto superiore anteriore del vaso cateterizzato e potenziali sfide dell’omeostasi efficace dopo rimozione del catetere dall’arteria, questa tecnica può essere limitata alle procedure di mancato recupero.
Introduction
L’intervento chirurgico viene utilizzato nella ricerca sperimentale per sviluppare modelli animali che migliorano lo sviluppo scientifico. La letteratura scientifica è riempita con esempi di romanzo chirurgico animale modelli1,2,3. Le procedure chirurgiche sono un processo complesso che coinvolge non soltanto la manipolazione di strutture anatomiche, ma anche complicati fisiologiche interazioni con vari farmaci necessari per l’anestesia e analgesia. Questa interazione può indurre importanti cambiamenti in processi fisiologici all’interno dell’animale e come tale richiede attento monitoraggio degli animali4. Un successo clinico risultati chirurgici sono stati associati con misure di gas del sangue arterioso e pressione sanguigna arteriosa5. Questi parametri clinici richiedono la capacità di misurare la pressione arteriosa e raccogliere il sangue arterioso in modo efficace, che a sua volta richiede la cateterizzazione di successo di un’arteria6,7.
Cateterizzazione arteriosa per raccogliere il sangue arterioso e misurazione della pressione è stata utilizzata in varie specie animali5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 e negli animali alle età differenti di sviluppo19,20,21 ed è stato diretto a entrambi recupero procedure (cliniche e diagnostiche)4,5, 6,7,8 e mancato recupero procedure (sperimentali)14,15,16,17,18. Inoltre, la facilità di accesso arterioso e la posizione dell’arteria nel contesto della procedura chirurgica sono anche considerazioni importanti quando si sceglie un’arteria per misure di sangue arterioso. Ad esempio, l’arteria caudale mediano nei cani e l’arteria facciale nei cavalli, come pure l’arteria pedale in cani ed in cavalli, sono usate per la misura diagnostica e monitoraggio durante il recupero le procedure6,7, 8. al contrario, la carotide e le arterie femorali sono spesso cateterizzate nei suini per entrambi mancato recupero o esperimenti a lungo termine dell’impianto di catetere14,15,18.
Nei suini, cateterizzazione arteriosa per misurare sia la pressione sanguigna arteriosa o raccogliere il sangue arterioso ha impiegato ordinariamente la carotide, la arterie femorali, mediale safena o auricolare22,23. Per procedure specializzate non di routine, altre arterie più insoliti sono stati utilizzati, tra cui le arterie subclavian e iliache, per misurare la tortuosità anatomica dell’arteria brachiale17 e immagine l’aorta di16, rispettivamente. Indipendentemente da quale arteria viene scelto per cateterizzazione, ogni arteria ha vantaggi e svantaggi per il suo utilizzo. Per esempio, l’arteria auricolare è anatomicamente facile accesso, ma il suo utilizzo può essere limitato alla sua vicinanza al marginale orecchio vene11,12. In confronto, l’arteria carotica è relativamente grande e robusto24, ma si trova nel profondo il solco giugulare e richiede sostanziali tessuto dissezione25. Come tale, individuando un’altra arteria che potrebbe essere cateterizzato per misurare la pressione arteriosa e raccogliere il sangue arterioso è garantito. Questo video e manoscritto descrivere in dettaglio il cateterismo dell’arteria brachiale distale in maiali, una tecnica che potrebbe essere applicata alle procedure di mancato recupero. In particolare, la cateterizzazione dell’arteria brachiale di maiale era utilizzata per misurare le pressioni arteriose di sangue e i parametri di gas del sangue arterioso durante l’ambulatorio lombare della colonna vertebrale con le misure dell’arto (i dati da questa parte della chirurgia non sono presentati).
Protocol
Representative Results
Discussion
Cateterizzazione arteriosa per misurare le pressioni arteriose di sangue e raccogliere campioni di sangue per misure di gas del sangue arterioso è stata stabilita in una vasta gamma di specie animali5,6,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , <sup class="xref"…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Questo lavoro è stato supportato dalla Fondazione di Canada e istituti di ricerca di salute canadese per concessione di innovazione a V. K. Mushahwar. R. Toossi è stato sostenuto da un Vanier Canada Graduate Scholarship, Alberta Innova – salute soluzioni Studentship laureato e una borsa di laurea di Regina Elizabeth II. V.K. Mushahwar è un Canada Research Chair in ripristino funzionale. Vorremmo ringraziare Mr. J. Stack di Moss Street Productions per il suo aiuto con la produzione audio e il personale dell’Istituto di ricerca medica chirurgica per la loro assistenza con le procedure.
Materials
| 0.9% NaCl (Saline) Solution | EMRN | JB1322P | 1 x1 liter bag |
| 10% Lidocaine spray | AstraZeneca | DIN:02039508 / 1 x 50 ml bottle | |
| 10% Povidone-Iodine scrub | Purdue Pharma | 521232 | 1 x 500 ml bottle |
| 20 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381433 | 1 x angiocatheter |
| 2-0 polyglactin suture (Vicryl) | Ethicon | J339H | 2-0 vicryl / 1 packet of suture |
| 2-0 polypropylene suture (Prolene) | Ethicon | 8833H | 2-0 prolene / 1 packet of suture |
| 22 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381423 | 1 x angiocatheter |
| 9 ID mm endotracheal tube | Jorvet | J0835P | 1 x endotracheal tube |
| Arterial blood pressure IV line | Argon Medical Devices | 112411 | 1 x arterial blood pressure IV line |
| Disposable drapes | Halyard Sales LLC | 89731 | 4-8 x disposable drapes |
| Glycopyrrolate hydrochloride | Sandoz | DIN:02039508 / 1 x 20ml vial | |
| Isoflurane | Abbott Animal Health | 05260-5 | 1 x 250ml bottle |
| Kelly forceps-curved (14cm) | Stevens | 162-7-38 | 8-10 instruments |
| Ketamine hydrochloride | Vetoquinol | DIN:02374994 / 1 x 10ml vial | |
| Lactated Ringer's Solution | Hospira | 0409-7953-09 | 4 x1 liter bag |
| Metzenbaum scissors | Fine Science | 14518-18 | |
| Miller laryngoscope blade | Welch Allyn | 68044 | 182 mm length / 1 instrument |
| Nasal temperature probe | Surgivet | V3417 | 1 probe |
| Needle Drivers | Stevens | 162-V98-42 | 2 instruments |
| Q tip applicators | Fisher Scientific | 22-037-960 | 20-40 app |
| Remifentanil hydrochloride | TEVA | DIN:0234432 / 1 mg vial | |
| Surgivet advisor: Vital signs monitor | Surgivet | V9203 | 1 monitor |
| Weitlaner retractor | Stevens | 162-11-602 | 2 retractors |
| Xylazine hydrochloride | Bayer | DIN:02169606 1 x 50ml bottle |
References
- Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
- Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
- Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
- Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
- Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
- McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
- Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
- Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
- Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
- Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
- Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
- Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
- Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
- Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
- Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
- Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
- Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
- Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
- Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
- Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
- Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
- Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
- Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
- Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
- Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
- Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
- Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
- Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
- Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
- Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
- Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
- Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
- Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
- Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).
