Summary

Crecimiento glomerular como ensayo ex vivo para analizar las rutas involucradas en la activación de células epiteliales parietales

Published: August 19, 2020
doi:

Summary

Este artículo describe un método para cultivar y analizar los crecimientos de células epiteliales parietales glollares de glomérulos encapsulados aislados del riñón de ratón. Este método se puede utilizar para estudiar las vías implicadas en la proliferación y migración de células epiteliales parietales.

Abstract

La activación de la célula epitelial parietal (PEC) es uno de los factores clave involucrados en el desarrollo y progresión de la glomerulosclerosis. Por lo tanto, la inhibición de las vías implicadas en la activación de células epiteliales parietales podría ser una herramienta para atenuar la progresión de las enfermedades glomerulares. Este artículo describe un método para cultivar y analizar el crecimiento de células epiteliales parietales de glomérulos encapsulados aislados del riñón de ratón. Después de diseccionar los riñones aislados de ratón, el tejido se pica, y los glomérulos se aíslan por tamizado. Se recogen glomérulos encapsulados, y se cultivan 6 días para obtener el crecimiento glomerular de células epiteliales parietales. Durante este período, la proliferación y migración de células epiteliales parietales se puede analizar determinando el número de célula o el área de superficie de las células que crecen. Por lo tanto, este ensayo puede utilizarse como herramienta para estudiar los efectos de una expresión génica alterada en ratones transgénicos o noqueadores o los efectos de las condiciones de cultivo en las características de crecimiento y señalización de células epiteliales parietales. Utilizando este método, se pueden estudiar vías importantes implicadas en el proceso de activación celular epitelial parietal y, en consecuencia, en la glomerulosclerosis.

Introduction

Las enfermedades glomerulares son un grupo importante de trastornos renales y representan una de las principales causas de la enfermedad renal terminal(ESRD). Desafortunadamente, las opciones de tratamiento específicas son limitadas y la progresión a la ESRD es inevitable. Las enfermedades glomerulares se definen por la presencia de lesiones glomerulares y pueden agruparse en enfermedades inflamatorias y no inflamatorias. Aunque el insulto inicial es diferente, estudios recientes han demostrado que un mecanismo celular común conduce a la hiperplasia celular epitelial glomerular y, en última instancia, a la glomerulosclerosis en todas las enfermedades glomerulares, independientemente de la causa subyacente1,,2,,3,4.

Específicamente, se demostró que las lesiones glomeruloscleróticas se componen principalmente de células epiteliales parietales activadas5,6. En condiciones fisiológicas, las células epiteliales parietales son células epiteliales en reposo planas que recubren la cápsula del Bowman del glomerulo. Sin embargo, cualquier lesión glomerular ya sea debido a mutaciones genéticas (por ejemplo, citopatías de podocitos específicos o mitocondriales), inflamación o hiperfiltración (por ejemplo, causada por la reducción de la masa renal, hipertensión, obesidad o mellitus diabético) puede desencadenar la activación de células epiteliales parietales. Las células epiteliales parietales activadas proliferan y depositan matriz extracelular que resulta en la formación de media lunas celulares o lesiones escleróticas5,7,8. La progresión de estos procesos da lugar a la pérdida de la función renal9. Por lo tanto, la activación celular epitelial parietal es un factor clave en el desarrollo y progresión de la glomerulosclerosis tanto en enfermedades glomerulares inflamatorias como no inflamatorias1,,2,,3,,4,,10.

Los procesos moleculares que median la activación de células epiteliales parietales son aún desconocidos en gran medida. Estudios recientes muestran que las células epiteliales parietales activadas de novo express CD44, un receptor que es importante para la activación de diferentes vías implicadas en la proliferación celular y la migración. Además, se demostró que la inhibición de CD44 inhibe la activación de células epiteliales parietales y atenúa la progresión de la formación de media luna y la glomerulosclerosis en modelos animales de enfermedades glomerulares inflamatorias y no inflamatorias11,12.

Como la activación de células epiteliales parietales es un actor clave para el desarrollo de la glomerulosclerosis y la formación de media luna, la inhibición de estas células podría ralentizar la progresión de las enfermedades glomerulares. La elucidación de las vías moleculares que impulsan la activación celular epitelial parietal puede conducir al desarrollo de intervenciones terapéuticas específicas que atenúen la formación de lesiones hiperplásicas y glomeruloscleróticas en la enfermedad glomerular.

En modelos animales experimentales, con frecuencia es difícil proporcionar evidencia para un efecto directo de una expresión génica alterada (modelos de eliminación o modelos de ratón transgénicos) o tratamiento farmacológico en las células epiteliales parietales. En un ratón noqueado convencional, los cambios in vivo observados podrían explicarse por cambios directos en las células epiteliales parietales. Sin embargo, dado que la expresión génica también se altera en otros tipos de células dentro del ratón, no se pueden excluir los efectos indirectos mediados por otros tipos de células. El desarrollo de ratones cre-lox condicionales impulsados por promotores principalmente activos en células epiteliales parietales ha proporcionado una solución en algunos casos13. Sin embargo, los modelos transgénicos condicionales son complejos y aunque hay más líneas condicionales disponibles, para muchas de las líneas convencionales de ratón noqueado o transgénico aún no hay un sustituto condicional.

Para estudiar los efectos directos sobre las células epiteliales parietales, nuestro grupo ha desarrollado un ensayo ex vivo utilizando glomérulos encapsulados aislados de los riñones de ratón para medir y analizar la proliferación y migración de células epiteliales parietales. Este método nos permitirá determinar los efectos específicos de las células epiteliales parietales y encontrar vías responsables para la activación de células epiteliales parietales y probar opciones de tratamiento para inhibir esta activación.

Protocol

Todos los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con las directrices del Comité de Etica Animal de la Universidad Radboud Nijmegen. NOTA: Los ratones no tratados de tipo salvaje sano (WT) (n.o 4) y los ratones cd44-/- (n x 4) fueron sacrificados a la edad de 12 a 16 semanas. Se utilizaron ratones machos y hembras. Todos los ratones estaban en el fondo C57Bl/6. 1. Disección renal de ratón Sacrificar ratones WT sanos o ratones genéti…

Representative Results

En la Figura 1se muestra un diagrama sistemático del método para realizar el ensayo de crecimiento glomerular. La Figura 2A-D muestra los crecimientos glomerulares de glomérulos encapsulados en diferentes puntos de tiempo como se observa mediante microscopía de luz. Los crecimientos se muestran en los días 2, 4 y 6(Figura 2B-D) en el cultivo después del aislami…

Discussion

Usando el protocolo descrito en este artículo, se puede utilizar glomérulos encapsulados individuales para evaluar la proliferación de células epiteliales parietales que es una consecuencia de la activación de células epiteliales parietales. Este modelo ex vivo nos permitirá estudiar en detalle las vías moleculares, que intervienen en la activación de células epiteliales parietales. El método descrito se basa en el concepto simple de disección renal y tamizado para aislar y cultivar glomérulos encapsulados y…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta investigación fue apoyada por la Fundación Riñón Holandesa (concesión 14A3D104) y la Organización Neerlandesa para la Investigación Científica (subvención NWO VIDI: 016.156.363).

Materials

24-well cell culture plate Corning Costar
anti-CD31 BD Pharmingen Endothelial cell marker (used concentration 1:200)
chicken-anti-rat Alexa 647 Thermo Fisher  (used concentration 1:200)
DAPI-Fluoromount G Southern Biotech Mounting medium containing DAPI
Digital inverted light microscope Westburg, EVOS fl microscope
donkey-anti-goat Alexa 568 Thermo Fisher  (used concentration 1:200)
donkey-anti-rabbit Alexa 568 Thermo Fisher  (used concentration 1:200)
Dulbecco's Modified Eagle's medium  Lonza
EBM Medium Lonza
EBM-MV Single Quots kit Lonza containing hydrocortisone, hEGF, GA-1000, FBS and BBE
Fetal Bovine Serum Lonza
Fetal Calf Serum Lonza
Fluorescent microscope Leica Microsystems GmbH
goat-anti-synaptopodin Santa Cruz Podocyte marker (used concentration 1:200)
Hanks'Balanced Salt Solution Gibco
ImageJ software FIJI 1.51n
petri dish Sarstedt size 100
rabbit-anti-claudin1 Abcam Parietal epithelial cell marker (used concentration 1:100)
rabbit-anti-SSeCKS Roswell Park Comprehensive Cancer Center,Buffalo, NY, USA kindly provided by Dr. E. Gelman, Parietal epithelial cell marker
rat-anti-CD44 BD Pharmingen Parietal epithelial cell marker (used concentration 1:200)
scalpel Dahlhausen size 10
Sieves  Endecotts Ltd size 300 µm, 75 µm, 53 µm, steel
syringe BD Plastipak size: 20 ml
Ultra-Low Attachment Microplates  Corning Costar 6-well plates

References

  1. Fatima, H., et al. Parietal epithelial cell activation marker in early recurrence of FSGS in the transplant. Clinical journal of the American Society of Nephrology: CJASN. 7 (11), 1852-1858 (2012).
  2. Dijkman, H. B., et al. Proliferating cells in HIV and pamidronate-associated collapsing focal segmental glomerulosclerosis are parietal epithelial cells. Kidney International. 70 (2), 338-344 (2006).
  3. Kuppe, C., et al. Common histological patterns in glomerular epithelial cells in secondary focal segmental glomerulosclerosis. Kidney International. 88 (5), 990-998 (2015).
  4. Dijkman, H., Smeets, B., van der Laak, J., Steenbergen, E., Wetzels, J. The parietal epithelial cell is crucially involved in human idiopathic focal segmental glomerulosclerosis. Kidney International. 68 (4), 1562-1572 (2005).
  5. Smeets, B., et al. Parietal epithelial cells participate in the formation of sclerotic lesions in focal segmental glomerulosclerosis. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 22 (7), 1262-1274 (2011).
  6. Smeets, B., et al. Tracing the origin of glomerular extracapillary lesions from parietal epithelial cells. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 20 (12), 2604-2615 (2009).
  7. Smeets, B., Moeller, M. J. Parietal epithelial cells and podocytes in glomerular diseases. Seminars in Nephrology. 32 (4), 357-367 (2012).
  8. Ryu, M., et al. Plasma leakage through glomerular basement membrane ruptures triggers the proliferation of parietal epithelial cells and crescent formation in non-inflammatory glomerular injury. The Journal of Pathology. 228 (4), 482-494 (2012).
  9. Eymael, J., Smeets, B. Origin and fate of the regenerating cells of the kidney. European Journal of Pharmacology. 790, 62-73 (2016).
  10. Smeets, B., et al. Renal progenitor cells contribute to hyperplastic lesions of podocytopathies and crescentic glomerulonephritis. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 20 (12), 2593-2603 (2009).
  11. Eymael, J., et al. CD44 is required for the pathogenesis of experimental crescentic glomerulonephritis and collapsing focal segmental glomerulosclerosis. Kidney International. 93 (3), 626-642 (2018).
  12. Roeder, S. S., et al. Activated ERK1/2 increases CD44 in glomerular parietal epithelial cells leading to matrix expansion. Kidney International. 91 (4), 896-913 (2017).
  13. Appel, D., et al. Recruitment of podocytes from glomerular parietal epithelial cells. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 20 (2), 333-343 (2009).
  14. Yaoita, E., et al. Visceral epithelial cells in rat glomerular cell culture. European Journal of Cell Biology. 67 (2), 136-144 (1995).
  15. Kuppe, C., et al. Investigations of Glucocorticoid Action in GN. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 28 (5), 1408-1420 (2017).
  16. Ohse, T., et al. Establishment of conditionally immortalized mouse glomerular parietal epithelial cells in culture. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 19 (10), 1879-1890 (2008).

Play Video

Citer Cet Article
Eymael, J., Miesen, L., Mooren, F., Jansen, J., Wetzels, J., van der Vlag, J., Smeets, B. Glomerular Outgrowth as an Ex Vivo Assay to Analyze Pathways Involved in Parietal Epithelial Cell Activation. J. Vis. Exp. (162), e60324, doi:10.3791/60324 (2020).

View Video