Summary

מודל מתוקננת של פרוזדורים המוח ותמיכה מתקדמים בחיים הלב בחזירים

Published: January 30, 2020
doi:

Summary

החייאה ודפיברילציה הם האפשרויות הטיפוליות היעילות היחידה במהלך דום לב הנגרמת על ידי פרפור פרוזדורים. מודל זה מציג משטר מתוקננת כדי לגרום, להעריך, ולטפל במצב פיזיולוגי זה במודל חזירי, ובכך לספק גישה קלינית עם הזדמנויות שונות עבור איסוף נתונים וניתוח.

Abstract

החייאה לאחר דום לב, ללא תלות ממוצא שלה, הוא נתקל בקביעות חירום רפואי בבתי חולים, כמו גם הגדרות טרום קלינית. מבחנים אקראיים פוטנציאליים במקצועות האדם קשה לעצב ומבחינה אתית, אשר התוצאה היא חוסר הראיות מבוססי טיפולים. המודל המוצג בדו ח זה מייצג את אחד הגורמים השכיחים ביותר למעצרים בלב, פרפור פרוזדורים, בהגדרה סטנדרטית במודל בעל חיים גדול. זה מאפשר תצפיות שונות והתערבויות טיפוליות מגוונות בתנאים מדויקים קלינית, ולכן הקלה על הדור של ראיות טובות ובסופו של דבר את הפוטנציאל לטיפול רפואי משופר.

Introduction

דום לב והחייאה (החייאה) נתקלים באופן קבוע במקרי חירום רפואיים במחלקות בית החולים, כמו גם עבור תרחישים של ספק חירום טרום קלינית1,2. בעוד היו מאמצים נרחבים לאפיין את הטיפול האופטימלי עבור מצב זה3,4,5,6, הנחיות בינלאומיות והמלצות מומחה (g., erc ו ilcor) בדרך כלל להסתמך על ראיות בדרגה נמוכה בשל העדר מבחנים אקראיים פוטנציאליים3,4,5,7,8,9. זה חלק בשל הסתייגויות אתיות ברור לגבי פרוטוקולים החייאה אקראי בניסויים אנושיים10. עם זאת, זה עשוי גם להצביע לקראת חוסר הדבקות פרוטוקול קפדנית כאשר התעמת עם מצב סכנת חיים ומלחיץ11,12. הפרוטוקול המוצג בדו ח זה נועד לספק מודל החייאה סטנדרטית בהגדרה קלינית מציאותית, אשר מייצרת נתונים פוטנציאליים, פוטנציאלי תוך היותו חוקי ומדויק ככל האפשר, ללא צורך בנושאים אנושיים. זה דבק ההנחיות הנפוצות החייאה, ניתן להחיל בקלות, ומאפשר מחקרים כדי לבחון ולאפיין היבטים שונים והתערבויות בסביבה קריטית אך נשלטת. זה יוביל 1) הבנה טובה יותר של המנגנונים הפתולוגיים בבסיס דום לב פרוזדורים ו 2) ראיות באיכות גבוהה יותר כדי לייעל את אפשרויות הטיפול ולהגדיל את שיעורי ההישרדות.

Protocol

הניסויים בפרוטוקול זה אושרו על ידי ועדת הטיפול בבעלי חיים מוסדיים (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, קובלנץ, גרמניה; יו”ר: ד ר סילביה אייץ-וולף; אישור לא. G16-1-042). הניסויים נערכו בהתאם להנחיות הגעה. שבעה חזירים זכריים מורדם (לועפה סוס) עם משקל ממוצע של 30 ± 2 ק”ג ו 12-16 שבועות בגיל נכללו בפרוטוקול. <p class="j…

Representative Results

. דום לב הושרה ב -7 חזירים שובו של המחזור הספונטני בעקבות החייאה הושגה ארבעה חזירים (57%) עם ממוצע של 3 ± 1 biphasic defibrillations. חזירים בריאים ומסולרים צריכים להישאר במצב פרקדן ללא רעידות וסימני עצבנות לאורך כל הניסוי כולו. מתכוון לחצים דם עורקים לא צריך לרדת מתחת 50 mmHg לפני החניכה של ?…

Discussion

כמה בעיות טכניות גדולות לגבי הרדמה במודל חזירי המתואר בעבר על ידי הקבוצה שלנו13,14. אלה כוללים את הימנעות קפדנית של מתח וכאבים מיותרים עבור בעלי חיים, בעיות אנטומיים אפשריים במהלך ניהול דרכי הנשימה, ודרישות כוח אדם ספציפי19.

בנוסף, ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים רוצים להודות לדאגמר דירונמסקי לקבלת תמיכה טכנית מעולה.

Materials

1 M- Kaliumchlorid-Lösung 7,46% 20ml Fresenius, Kabi Deutschland GmbH potassium chloride
Arterenol 1mg/ml 25 ml Sanofi- Aventis, Seutschland GmbH norepinephrine
Atracurium Hikma 50mg/5ml Hikma Pharma GmbH, Martinsried atracurium
BD Discardit II Spritze 2,5,10,20 ml Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain syringe
BD Luer Connecta Becton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg, Schweden 3-way-stopcock
BD Microlance 3 20 G Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain canula
CorPatch Easy Electrodes CorPuls, Kaufering, Germany defibrillator electrodes
Corpuls 3 Corpuls, Kaufering, Germany defibrillator
Datex Ohmeda S5 GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finland hemodynamic monitor
Engström Carestation GE Heathcare, Madison USA ventilator
Fentanyl-Janssen 0,05mg/ml Janssen-Cilag GmbH, Neuss fentanyl
Führungsstab, Durchmesser 4.3 Rüsch endotracheal tube introducer
Incetomat-line 150 cm Fresenius, Kabi Deutschland GmbH perfusorline
Ketamin-Hameln 50mg/ml Hameln Pharmaceuticals GmbH ketamine
laryngoscope Rüsch laryngoscope
logicath 7 Fr 3-lumen 30cm lang Smith- Medical Deutschland GmbH central venous catheter
LUCAS-2 Physio-Control/Stryker, Redmond, WA, USA chest compression device
Masimo Radical 7 Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 USA periphereal oxygen saturation
Neofox Oxygen sensor 300 micron fiber Ocean optics Largo, FL USA ultrafast pO2-measurements
Ölsäure reinst Ph. Eur NF C18H34O2 M0282,47g/mol Dichte 0,9 Applichem GmbH Darmstadt, Deutschland oleic acid
Original Perfusor syringe 50ml Luer Lock B.Braun Melsungen AG, Germany perfusorsyringe
Osypka pace, 110 cm Osypka Medical GmbH, Rheinfelden-Herten, Germany Pacing/fibrillation catheter
PA-Katheter Swan Ganz 7,5 Fr 110cm Edwards Lifesciences LLC, Irvine CA, USA PAC
Percutaneous sheath introducer set 8,5 und 9 Fr, 10 cm with integral haemostasis valve/sideport Arrow international inc. Reading, PA, USA introducer sheath
Perfusor FM Braun B.Braun Melsungen AG, Germany syringe pump
Propofol 2% 20mg/ml (50ml flasks) Fresenius, Kabi Deutschland GmbH propofol
Radifocus Introducer II, 5-8 Fr Terumo Corporation Tokio, Japan introducer sheath
Rüschelit Super Safety Clear >ID 6/ 6,5 /7,0 mm Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysia endotracheal tube
Seldinger Nadel mit Fixierflügel Smith- Medical Deutschland GmbH seldinger canula
Sonosite Micromaxx Ultrasoundsystem Sonosite Bothell, WA, USA ultrasound
Stainless Macintosh Größe 4 Welsch Allyn69604 blade for laryngoscope
Stresnil 40mg/ml Lilly Deutschland GmbH, Abteilung Elanco Animal Health azaperone
Vasofix Safety 22G-16G B.Braun Melsungen AG, Germany venous catheter
Voltcraft Model 8202 Voltcraft, Hirschau, Germany oscilloscope/function generator

References

  1. Grasner, J. T., et al. EuReCa ONE-27 Nations, ONE Europe, ONE Registry: A prospective one month analysis of out-of-hospital cardiac arrest outcomes in 27 countries in Europe. Resuscitation. 105, 188-195 (2016).
  2. Raffee, L. A., et al. Incidence, Characteristics, and Survival Trend of Cardiopulmonary Resuscitation Following In-hospital Compared to Out-of-hospital Cardiac Arrest in Northern Jordan. Indian Journal of Critical Care Medicine. 21 (7), 436-441 (2017).
  3. Brooks, S. C., et al. Part 6: Alternative Techniques and Ancillary Devices for Cardiopulmonary Resuscitation: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S436-S443 (2015).
  4. Callaway, C. W., et al. Part 4: Advanced Life Support: 2015 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations. Circulation. 132 (16 Suppl 1), S84-S145 (2015).
  5. Sandroni, C., Nolan, J. ERC 2010 guidelines for adult and pediatric resuscitation: summary of major changes. Minerva Anestesiology. 77 (2), 220-226 (2011).
  6. Tanaka, H., et al. Modifiable Factors Associated With Survival After Out-of-Hospital Cardiac Arrest in the Pan-Asian Resuscitation Outcomes Study. Annals of Emergency Medicine. , (2017).
  7. Kleinman, M. E., et al. Part 5: Adult Basic Life Support and Cardiopulmonary Resuscitation Quality: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S414-S435 (2015).
  8. Link, M. S., et al. Part 7: Adult Advanced Cardiovascular Life Support: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S444-S464 (2015).
  9. Olasveengen, T. M., et al. 2017 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations Summary. Circulation. 136 (23), e424-e440 (2017).
  10. Rubulotta, F., Rubulotta, G. Cardiopulmonary resuscitation and ethics. Revista Brasileira de Terapia Intensiva. 25 (4), 265-269 (2013).
  11. McInnes, A. D., et al. The first quantitative report of ventilation rate during in-hospital resuscitation of older children and adolescents. Resuscitation. 82 (8), 1025-1029 (2011).
  12. Maertens, V. L., et al. Patients with cardiac arrest are ventilated two times faster than guidelines recommend: an observational prehospital study using tracheal pressure measurement. Resuscitation. 84 (7), 921-926 (2013).
  13. Ziebart, A., et al. Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs. Journal of Visualized Experiments. (147), (2019).
  14. Kamuf, J., et al. Oleic Acid-Injection in Pigs As a Model for Acute Respiratory Distress Syndrome. Journal of Visualized Experiments. (140), (2018).
  15. Weiner, M. M., Geldard, P., Mittnacht, A. J. Ultrasound-guided vascular access: a comprehensive review. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesiology. 27 (2), 345-360 (2013).
  16. Mayer, J., Suttner, S. Cardiac output derived from arterial pressure waveform. Current Opinions in Anaesthesiology. 22 (6), 804-808 (2009).
  17. Hartmann, E. K., et al. Ventilation/perfusion ratios measured by multiple inert gas elimination during experimental cardiopulmonary resuscitation. Acta Anaesthesiologica Scandanivica. 58 (8), 1032-1039 (2014).
  18. Ruemmler, R., et al. Ultra-low tidal volume ventilation-A novel and effective ventilation strategy during experimental cardiopulmonary resuscitation. Resuscitation. 132, 56-62 (2018).
  19. Wani, T. M., et al. Upper airway in infants-a computed tomography-based analysis. Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).
  20. Tuna Katircibasi, M., et al. Comparison of Ultrasound Guidance and Conventional Method for Common Femoral Artery Cannulation: A Prospective Study of 939 Patients. Acta Cardiol Sin. 34 (5), 394-398 (2018).
  21. Hartmann, E. K., et al. Correlation of thermodilution-derived extravascular lung water and ventilation/perfusion-compartments in a porcine model. Intensive Care Medicine. 39 (7), 1313-1317 (2013).
  22. Hartmann, E. K., et al. An inhaled tumor necrosis factor-alpha-derived TIP peptide improves the pulmonary function in experimental lung injury. Acta Anaesthesiol Scand. 57 (3), 334-341 (2013).
  23. Ziebart, A., et al. Low tidal volume pressure support versus controlled ventilation in early experimental sepsis in pigs. Respiratory Research. 15, 101 (2014).
  24. Tan, D., et al. Duration of cardiac arrest requires different ventilation volumes during cardiopulmonary resuscitation in a pig model. Journal of Clinical Monitoring and Computing. , (2019).
  25. Kill, C., et al. Mechanical ventilation during cardiopulmonary resuscitation with intermittent positive-pressure ventilation, bilevel ventilation, or chest compression synchronized ventilation in a pig model. Critical Care Medicine. 42 (2), e89-e95 (2014).
  26. Speer, T., et al. Mechanical Ventilation During Resuscitation: How Manual Chest Compressions Affect a Ventilator’s Function. Advances in Therapy. 34 (10), 2333-2344 (2017).
  27. Kill, C., et al. Chest Compression Synchronized Ventilation versus Intermitted Positive Pressure Ventilation during Cardiopulmonary Resuscitation in a Pig Model. PLoS ONE. 10 (5), e0127759 (2015).
  28. Newell, C., Grier, S., Soar, J. Airway and ventilation management during cardiopulmonary resuscitation and after successful resuscitation. Critical Care. 22 (1), 190 (2018).
check_url/fr/60707?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ruemmler, R., Ziebart, A., Garcia-Bardon, A., Kamuf, J., Hartmann, E. K. Standardized Model of Ventricular Fibrillation and Advanced Cardiac Life Support in Swine. J. Vis. Exp. (155), e60707, doi:10.3791/60707 (2020).

View Video