Summary

En Suppressor Screen för karakterisering av genetiska länkar reglera kronologisk livslängd i Saccharomyces cerevisiae

Published: September 17, 2020
doi:

Summary

Här är ett protokoll för att identifiera genetiska interaktioner genom en ökad kopia nummer suppressor skärm i Saccharomyces cerevisiae. Denna metod gör det möjligt för forskare att identifiera, klon, och testa suppressors i kortlivade jäst mutanter. Vi testar effekten av kopian antalet ökning av SIR2 på livslängd i en autofagi null mutant.

Abstract

Åldrande är den tidsberoende försämringen av en organisms normala biologiska processer som ökar sannolikheten för dödsfall. Många genetiska faktorer bidrar till förändringar i den normala åldrandeprocessen. Dessa faktorer skär varandra på komplexa sätt, vilket framgår av den mängd dokumenterade länkar som identifierats och bevarats i många organismer. De flesta av dessa studier fokuserar på förlust-of-funktion, null mutanter som möjliggör snabb screening av många gener samtidigt. Det finns mycket mindre arbete som fokuserar på att karakterisera den roll som överuttryck av en gen i denna process. I det nuvarande arbetet presenterar vi en okomplicerad metodik för att identifiera och klona gener i den spirande jästen, Saccharomyces cerevisiae, för studier i undertryckande av den kortlivade kronologiska lifespan fenotyp sett i många genetiska bakgrunder. Detta protokoll är utformat för att vara tillgängligt för forskare från en mängd olika bakgrunder och i olika akademiska stadier. SIR2-genen, som kodar för en histondeacetylase, valdes ut för kloning i pRS315-vektorn, eftersom det har förekommit motstridiga rapporter om dess effekt på den kronologiska livslängden. SIR2 spelar också en roll i autofagi, som resulterar när störs via radering av flera gener, inklusive transkriptionsfaktorn ATG1. Som ett bevis på princip, vi klona SIR2 genen att utföra en suppressor skärm på den förkortade livslängd fenotyp kännetecknande för autofagi bristfällig atg1Δ mutant och jämföra den med en annars isogen, vild typ genetisk bakgrund.

Introduction

Åldrandet är den tidsberoende förlusten av integritet i otaliga biologiska processer som i slutändan ökar sannolikheten för organismdöd. Åldrande är nästan oundvikligt för alla arter. På cellnivå finns flera väl karakteriserade kännetecken som är förknippade med åldrande, inklusive: genomisk instabilitet, epigenetiska förändringar, förlust-av-proteostasis, mitokondriell dysfunktion, avreglerade näringsämnen avkänning, cellulär senescence, och telomer attrition1,2. I encelliga organismer, såsom jäst, leder detta till en minskning av replikiv potential och kronologisk livslängd3,4. Dessa cellulära förändringar manifesteras i mer komplexa organismer, som människor, som patologier som inkluderar cancer, hjärtsvikt, neurodegeneration, diabetes, och benskörhet5,6,7. Trots de många komplexiteter som kännetecknar processen för åldrande, det finns bevarande av dessa molekylära kännetecken som ligger till grund för denna process över vitt skilda organismer8,9,10. Identifiering av ändringar av dessa vägar under åldrandet ledde till insikten att de kan manipuleras via livsstilsförändringar – kosten begränsning visas väsentligt förlänga livslängden i många organismer11. Dessa vägar konvergerar och skär med varandra och många andra vägar, på komplexa sätt. Elucidation och karakterisering av dessa interaktioner erbjuder potential för terapeutiska insatser för att förlänga livslängd och healthspan12,13,14.

Bevarandet av de molekylära underbyggnad av åldrande möjliggör funktionella dissekering av genetiska interaktioner som ligger till grund för processen genom användning av enklare modell organismer – bland annat i spirande jäst, Saccharomyces cerevisiae15,16. Det finns två etablerade typer av åldrande modelleras av spirande jäst: kronologiskt åldrande (den kronologiska livslängd, CLS) och replikiv åldrande (den replikiva livslängd, RLS)17. Kronologiskt åldrande mäter den tid som en cell kan överleva i ett icke-splittrande tillstånd. Detta är analogt med det åldrande som ses i celler som tillbringar majoriteten av sitt liv i G0, såsom nervceller4. Alternativt är replikiv livslängd det antal gånger som en cell kan dela sig före utmattning och är en modell för mitotiskt aktiva celltyper (t.ex. antalet dotterceller som en cell kan ha)18.

Det övergripande målet med denna metod är att presentera ett protokoll som möjliggör den funktionella dissektion av genetik åldrandet med hjälp av S. cerevisiae. Även om det har varit många utmärkta studier som utförs av många forskare som har lett till vår nuvarande förståelse, det finns fortfarande många möjligheter för spirande forskare att bidra till det åldrande området från början av sin akademiska karriär. Vi presenterar en tydlig metod som gör det möjligt för forskare att ytterligare avancera på åldrandet. Detta protokoll är utformat för att vara tillgängligt för alla forskare oavsett stadium i deras akademiska karriär genom att tillhandahålla de verktyg som krävs för att formulera och testa sina egna nya hypoteser. Fördelen med vårt tillvägagångssätt är att detta är en kostnadseffektiv metod lättillgänglig för alla forskare oavsett institution – och kräver inte dyr, specialiserad utrustning som är nödvändig för vissaprotokoll 19. Det finns flera olika sätt att utforma denna typ av skärm, det tillvägagångssätt som beskrivs i detta arbete är särskilt mottagliga för screening null mutanter av icke-väsentliga gener som uppvisar en allvarlig minskning av den kronologiska livslängden jämfört med en isogen vild-typ stam av jäst.

Som vårt bevis på princip, vi klon SIR2, en lysin deacetylase rapporteras som uppvisar både en förlängd och en förkortad CLS när overexpressed. SIR2 överuttryck konstaterades nyligen att öka CLS i vinframställning jäst; emellertid har flera grupper rapporterat någon koppling mellan SIR2 och CLS förlängning, lämnar sin roll under karakteriseras20,21,22. På grund av dessa motstridiga rapporter i litteraturen, vi valt denna gen för att lägga till oberoende forskning för att hjälpa klargöra rollen av SIR2 i kronologiskt åldrande, om någon. Dessutom ökar kopian antalet av en SIR2 homolog förlänger livslängd i en nematod mask modellsystem23.

Autofagi är ett intracellulärt nedbrytningssystem för att leverera cytosoliska produkter, såsom proteiner och organeller, till lysosomen24. Autofagi är intimt kopplad till livslängd genom sin roll i förnedrande skadade proteiner och organeller för att upprätthålla cellulär homeostas25. Induktion av autofagi beror på att iscensätta uttrycket av många gener, och strykningen av ATG1 genen resulterar i en onormalt kort CLS i spirande jäst26. ATG1-koder för ett protein serin/treoninkinas som krävs för vesikelbildning i autofagi och cytoplasman-till-vakuol (svampen lysosomekvivalent) utbildningsavsnitt27,28. Här presenterar vi vår metod för en ökad kopia nummer skärm, testa effekten av ökad SIR2 kopia på CLS i en vild typ och en atg1-null bakgrund. Denna metod är särskilt mottaglig för yngre forskare och forskargrupper vid främst grundutbildningsinstitutioner, av vilka många tjänar samhällen underrepresenterade inom vetenskap och har begränsade resurser.

Protocol

1. Identifiera potentiella genetiska interaktioner för screening Identifiera den genetiska bakgrunden(er) för karakterisering, som resulterar i en onormalt kortsluten kronologisk livslängd (CLS) i Saccharomyces cerevisiae med hjälp av Saccharomyces Genome Database (den SGD, https://www.yeastgenome.org29,30), som sammanställer känd fenotypisk information för denna organism. Välj fliken Funktion från alt…

Representative Results

Eftersom det finns motstridiga rapporter om rollen som SIR2 under åldrandet, valde vi denna gen för studier som en potentiell suppressor av atg1 mutantenΔs förkorta CLS fenotyp26. Roll SIR2 är något kontroversiellt, med motstridiga rapporter om dess roll i att utvidga CLS, men det har tydligt kopplats till ökad CLS i minst en jäst bakgrund, med en roll i både autofagi och mitofagi22,31,<sup cl…

Discussion

Att reda ut åldrandets genetik är en svår utmaning, med många möjligheter till ytterligare studier som potentiellt kan ge betydande insikter i de komplexa interaktioner som finns. Det finns många metoder som möjliggör en snabb generering av förlust-of-funktion mutanter för studier av null stammar av jäst45,46. Denna metod presenterar en enkel metod för att identifiera och klona gener på pRS315 vektorn för overexpression suppressor studier. En förde…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

James T. Arnone vill ge sitt erkännande till stödet från studenterna i kursen Rekombinant DNA Technologies under 2017 och 2018 vid William Paterson University som var involverade i detta projekt från starten, men vars insatser inte gick över tröskeln för författarskap: Christopher Andino, Juan Botero, Josephine Bozan, Brenda Calalpa, Brenda Cubas, Headtlove Essel Dadzie, Irvin gamarra, Precious Isbori , Wayne Ko, Nelson Mejia, Hector Mottola, Rabya Naz, Abdullah Odeh, Pearl Paguntalan, Daniel Raza’e, Gabriella Rektor, Aida Shono, och Matthew So. Ni är stora vetenskapsmän och jag saknar er alla!

Författarna vill erkänna ovärderligt stöd för instruktion och forskningsteknik vid William Paterson University för deras hjälp: Greg Mattison, Peter Cannarozzi, Rob Meyer, Dante Portella och Henry Heinitsh. Författarna vill också erkänna kontoret för Provost för ART stöd, office of the Dean och Centrum för forskning vid College of Science and Health sitt stöd för detta arbete, och Institutionen för biologi för att stödja detta projekt.

Materials

Fungal/Bacterial DNA kit Zymo Research D6005
HindIIIHF enzyme New England Biolabs R3104S
Phusion High-Fidelity DNA Polymerase New England Biolabs M0530S
Plasmid miniprep kit Qiagen 12123
SacII enzyme New England Biolabs R0157S
Salmon sperm DNA Thermofisher AM9680
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202S

References

  1. López-Otín, C., Blasco, M. A., Partridge, L., Serrano, M., Kroemer, G. The hallmarks of aging. Cell. 153 (6), 1194-1217 (2013).
  2. Kenyon, C. The genetics of ageing. Nature. 464 (7288), 504-512 (2010).
  3. Petralia, R. S., Mattson, M. P., Yao, P. J. Aging and longevity in the simplest animals and the quest for immortality. Ageing Research Reviews. 16, 66-82 (2014).
  4. Longo, V. D., Fabrizio, P. . Aging Research in Yeast. , 101-121 (2011).
  5. Campisi, J. Aging, cellular senescence, and cancer. Annual Review of Physiology. 75, 685-705 (2013).
  6. Galkin, F., Zhang, B., Dmitriev, S. E., Gladyshev, V. N. Reversibility of irreversible aging. Ageing Research Reviews. 49, 104-114 (2019).
  7. Khan, S. S., Singer, B. D., Vaughan, D. E. Molecular and physiological manifestations and measurement of aging in humans. Aging Cell. 16 (4), 624-633 (2017).
  8. Riera, C. E., Merkwirth, C., De Magalhaes Filho, C. D., Dillin, A. Signaling networks determining life span. Annual Review of Biochemistry. 85, 35-64 (2016).
  9. Powers, R. W., Kaeberlein, M., Caldwell, S. D., Kennedy, B. K., Fields, S. Extension of chronological life span in yeast by decreased TOR pathway signaling. Genes & Development. 20 (2), 174-184 (2006).
  10. Lapierre, L. R., Hansen, M. Lessons from C. elegans: signaling pathways for longevity. Trends in Endocrinology & Metabolism. 23 (12), 637-644 (2012).
  11. Fontana, L., Partridge, L., Longo, V. D. Extending healthy life span-from yeast to humans. Science. 328 (5976), 321-326 (2010).
  12. Houtkooper, R. H., Pirinen, E., Auwerx, J. Sirtuins as regulators of metabolism and healthspan. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 13 (4), 225-238 (2012).
  13. Bitto, A., et al. Transient rapamycin treatment can increase lifespan and healthspan in middle-aged mice. elife. 5, 16351 (2016).
  14. Fang, E. F., et al. NAD+ replenishment improves lifespan and healthspan in ataxia telangiectasia models via mitophagy and DNA repair. Cell Metabolism. 24 (4), 566-581 (2016).
  15. Kaeberlein, M., Kennedy, B. K. Large-scale identification in yeast of conserved ageing genes. Mechanisms of Ageing and Development. 126 (1), 17-21 (2005).
  16. Fabrizio, P., et al. Genome-wide screen in Saccharomyces cerevisiae identifies vacuolar protein sorting, autophagy, biosynthetic, and tRNA methylation genes involved in life span regulation. PLoS Genetics. 6 (7), (2010).
  17. Longo, V. D., Shadel, G. S., Kaeberlein, M., Kennedy, B. Replicative and chronological aging in Saccharomyces cerevisiae. Cell Metabolism. 16 (1), 18-31 (2012).
  18. He, C., Zhou, C., Kennedy, B. K. The yeast replicative aging model. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Basis of Disease. 1864 (9), 2690-2696 (2018).
  19. Lee, S. S., Vizcarra, I. A., Huberts, D. H., Lee, L. P., Heinemann, M. Whole lifespan microscopic observation of budding yeast aging through a microfluidic dissection platform. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (13), 4916-4920 (2012).
  20. Fabrizio, P., Longo, V. D. The chronological life span of Saccharomyces cerevisiae. Aging Cell. 2 (2), 73-81 (2003).
  21. Smith, J., Daniel, L., McClure, J. M., Matecic, M., Smith, J. S. Calorie restriction extends the chronological lifespan of Saccharomyces cerevisiae independently of the Sirtuins. Aging Cell. 6 (5), 649-662 (2007).
  22. Orozco, H., Matallana, E., Aranda, A. Genetic manipulation of longevity-related genes as a tool to regulate yeast life span and metabolite production during winemaking. Microbial Cell Factories. 12 (1), 1 (2013).
  23. Tissenbaum, H. A., Guarente, L. Increased dosage of a sir-2 gene extends lifespan in Caenorhabditis elegans. Nature. 410 (6825), 227-230 (2001).
  24. Huang, W. P., Klionsky, D. J. Autophagy in yeast: a review of the molecular machinery. Cell Structure and Function. 27 (6), 409-420 (2002).
  25. Barbosa, M. C., Grosso, R. A., Fader, C. M. Hallmarks of aging: an autophagic perspective. Frontiers in Endocrinology. 9, 790 (2019).
  26. Aris, J. P., et al. Autophagy and leucine promote chronological longevity and respiration proficiency during calorie restriction in yeast. Experimental Gerontology. 48 (10), 1107-1119 (2013).
  27. Cheong, H., Nair, U., Geng, J., Klionsky, D. J. The Atg1 kinase complex is involved in the regulation of protein recruitment to initiate sequestering vesicle formation for nonspecific autophagy in Saccharomyces cerevisiae. Molecular Biology of the Cell. 19 (2), 668-681 (2008).
  28. Matsuura, A., Tsukada, M., Wada, Y., Ohsumi, Y. Apg1p, a novel protein kinase required for the autophagic process in Saccharomyces cerevisiae. Gene. 192 (2), 245-250 (1997).
  29. Cherry, J. M., et al. Saccharomyces Genome Database: the genomics resource of budding yeast. Nucleic Acids Research. 40, 700-705 (2012).
  30. Engel, S. R., et al. The reference genome sequence of Saccharomyces cerevisiae: then and now. G3: Genes, Genomes, Genetics. 4 (3), 389-398 (2014).
  31. Imai, S. I., Armstrong, C. M., Kaeberlein, M., Guarente, L. Transcriptional silencing and longevity protein Sir2 is an NAD-dependent histone deacetylase. Nature. 403 (6771), 795-800 (2000).
  32. Sampaio-Marques, B., et al. SNCA (α-synuclein)-induced toxicity in yeast cells is dependent on Sir2-mediated mitophagy. Autophagy. 8 (10), 1494-1509 (2012).
  33. Nagalakshmi, U., et al. The transcriptional landscape of the yeast genome defined by RNA sequencing. Science. 320 (5881), 1344-1349 (2008).
  34. De Boer, C. G., Hughes, T. R. YeTFaSCo: a database of evaluated yeast transcription factor sequence specificities. Nucleic Acids Research. 40, 169-179 (2012).
  35. Sanders, E. R. Aseptic laboratory techniques: plating methods. Journal of Visualized Experiments. (63), e3064 (2012).
  36. Gietz, R. D., Woods, R. A. . Methods in Enzymology. 350, 87-96 (2002).
  37. Salvi, S., et al. Serum and plasma copy number detection using real-time PCR. Journal of Visualized Experiments. (130), e56502 (2017).
  38. McIsaac, R. S., et al. Visualization and analysis of mRNA molecules using fluorescence in situ hybridization in Saccharomyces cerevisiae. Journal of Visualized Experiments. (76), e50382 (2013).
  39. Mirisola, M. G., Braun, R. J., Petranovic, D. Approaches to study yeast cell aging and death. FEMS Yeast Research. 14 (1), 109-118 (2014).
  40. Ricardo, R., Phelan, K. Counting and determining the viability of cultured cells. Journal of Visualized Experiments. (16), e752 (2008).
  41. Lin, S. J., Guarente, L. Nicotinamide adenine dinucleotide, a metabolic regulator of transcription, longevity and disease. Current Opinion in Cell Biology. 15 (2), 241-246 (2003).
  42. Sikorski, R. S., Hieter, P. A system of shuttle vectors and yeast host strains designed for efficient manipulation of DNA in Saccharomyces cerevisiae. Génétique. 122 (1), 19-27 (1989).
  43. Romanos, M. A., Scorer, C. A., Clare, J. J. Foreign gene expression in yeast: a review. Yeast. 8 (6), 423-488 (1992).
  44. Pfaffl, M. W. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR. Nucleic Acids Research. 29 (9), 45 (2001).
  45. Storici, F., Resnick, M. A. The delitto perfetto approach to in vivo site-directed mutagenesis and chromosome rearrangements with synthetic oligonucleotides in yeast. Methods in Enzymology. 409, 329-345 (2006).
  46. DiCarlo, J. E., et al. Genome engineering in Saccharomyces cerevisiae using CRISPR-Cas systems. Nucleic Acids Research. 41 (7), 4336-4343 (2013).
  47. Arnone, J. T. Genomic Considerations for the Modification of Saccharomyces cerevisiae for Biofuel and Metabolite Biosynthesis. Microorganisms. 8 (3), (2020).
  48. Murakami, C., Kaeberlein, M. Quantifying yeast chronological life span by outgrowth of aged cells. Journal of Visualized Experiments. (27), e1156 (2009).
  49. Steffen, K. K., Kennedy, B. K., Kaeberlein, M. Measuring replicative life span in the budding yeast. Journal of Visualized Experiments. (28), e1209 (2009).
  50. Huberts, D. H., Janssens, G. E., Lee, S. S., Vizcarra, I. A., Heinemann, M. Continuous high-resolution microscopic observation of replicative aging in budding yeast. Journal of Visualized Experiments. (78), e50143 (2013).
check_url/fr/61506?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Dix, C., Sgro, S., Patel, A., Perrotta, C., Eldabagh, N., Lomauro, K. L., Miguez, F. W., Chohan, P., Jariwala, C., Arnone, J. T. A Suppressor Screen for the Characterization of Genetic Links Regulating Chronological Lifespan in Saccharomyces cerevisiae. J. Vis. Exp. (163), e61506, doi:10.3791/61506 (2020).

View Video