JoVE Journal > Medicine
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Résultats
Discussion
Divulgations
Acknowledgements
Materials
References
Traduction automatique
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Médecine

الحفاظ على الخصوبة من خلال التزجيج Oocyte: المنظورات السريرية والمختبرية

Published: September 16, 2021
doi:
10.3791/61963
, , , , , , ,
1Clinica Valle Giulia,GeneraLife IVF

Summary

يعترف العديد من الجمعيات العلمية الدولية بالتبريد البويضات كمعيار ذهبي للحفاظ على الخصوبة لدى النساء بعد الولادة. تضمن الاستراتيجيات السريرية والمختبرية المناسبة أقصى قدر من الفعالية والكفاءة والسلامة لعلاجات الحفاظ على الخصوبة.

Abstract

الحفاظ على خصوبة الإناث أمر بالغ الأهمية في نظام الرعاية الصحية متعدد الوظائف الذي يعتني بنوعية حياة المرضى في المستقبل. يعترف العديد من الجمعيات العلمية الدولية بالتبريد البويضات كمعيار ذهبي للحفاظ على الخصوبة لدى النساء بعد الولادة ، لكل من المؤشرات الطبية وغير الطبية. المؤشرات الطبية الرئيسية هي أمراض الأورام، وأمراض النساء مثل بطانة الرحم الحادة، والأمراض الجهازية التي تعرض احتياطي المبيض للخطر، والظروف الوراثية التي تنطوي على انقطاع الطمث المبكر. تصف هذه الورقة مجمل العمل السريري والمختبري لعلاج الحفاظ على الخصوبة من خلال تحديد توصيات لتقديم المشورة الموضوعية والقائمة على الأدلة. وعلاوة على ذلك، فإنه يركز على فعالية الإجراء ويصف الاستراتيجيات الأنسب لاستغلال احتياطي المبيض بشكل كامل وتعظيم عدد البويضات التي تم استرجاعها في أقصر وقت ممكن. وقد تم تقييم احتياطي المبيض، وتعريف بروتوكول التحفيز المثالي، فضلا عن استرجاع البويضات، والتقييم، وإجراءات التزجيج مفصلة جنبا إلى جنب مع النهج لتحقيق أقصى قدر من الكفاءة والكفاءة والسلامة.

Introduction

كان تطوير وتنفيذ برنامج فعال لالتبريد للبويضات البشرية طفرة كبيرة في الطب التناسلي. وفقا للأدلة الحديثة، التزجيج هو الاستراتيجية الأكثر فعالية للحفاظ على البرد ميتافيزي الثاني (MII) البويضات، كما أنه يؤدي إلى معدلات البقاء على قيد الحياة أعلى إحصائيا بالمقارنة مع تجميد بطيء، بشكل مستقل عن السكان المرضى (المرضى الذين يعانون من العقم أو برنامج التبرع بالبويضات)1،2،3. أدت الإنجازات الملحوظة لتزجيج البويضات إلى أن تنطق لجان الممارسة التابعة للجمعية الأمريكية للطب التناسلي (ASRM) وجمعية التكنولوجيا الإنجابية المساعدة (SART) بأن تكون هذه التقنية الأكثر فعالية للحفاظ على الخصوبة الاختيارية لدى النساء بعد الولادة ، لكل من المؤشرات الطبية وغير الطبية4و5و6. وتشمل المؤشرات الطبية للحفاظ على الخصوبة (1) السرطان وأمراض المناعة الذاتية التي تتطلب العلاجات7 مثل العلاج الإشعاعي، والعلاج الكيميائي السام للخلايا، والعلاج بالغدد الصماء (الذي يرتبط تأثيره الضار على احتياطي المبيض بعمر الأم وكذلك نوع وجرعة العلاج)؛ و(2) الأمراض التي تؤثر تأثيرا ضارا على الخصوبة. ‘2’ أمراض المبيض التي تتطلب جراحة متكررة أو جذرية (مثل بطانة الرحم)8؛ و(3) الحالات الوراثية (مثل X-الهشة) أو فشل المبيض المبكر. وبالإضافة إلى ذلك، أصبح الحفاظ على الخصوبة خيارا قيما لجميع النساء اللاتي لم يحققن هدفهن الأبوي لأسباب غير طبية (تعرف أيضا باسم التجميد الاجتماعي).

بغض النظر عن الإشارة إلى الحفاظ على الخصوبة ووفقا للمبادئ التوجيهية الدولية الرئيسية بشأن الحفاظ على الخصوبة، يجب أن يتلقى جميع المرضى الراغبين في vitrify البويضات الخاصة بهم المشورة المناسبة لإعلامهم بفرصتهم الواقعية للنجاح، والتكاليف، والمخاطر، والقيود المفروضة على الإجراء9،10،11،12،13. الأهم من ذلك، ينبغي أن يكون واضحا أن التزجيج مجموعة من البويضات MII لا يضمن الحمل، ولكن أنه يوفر فرصة أكبر للنجاح في المستقبل في علاج الإخصاب في المختبر (IVF)، إذا لزم الأمر14. في هذا الصدد، فإن عمر المرأة في وقت التزجيج البويضات هو بالتأكيد العامل الأكثر أهمية الحد15 كما سن الأمومة المتقدمة (AMA؛ >35 سنة) هو السبب الرئيسي للعقم الإناث16. إلى جانب انخفاض تدريجي في احتياطي المبيض، ويرتبط AMA مع ضعف كفاءة البويضات بسبب المسارات الفسيولوجية المعيبة مثل التمثيل الغذائي، والتنظيم اللاجيني، ونقاط التفتيش دورة الخلية، والفصل المريوتيكي17. لذلك ، فإن العدد المعقول للبويضات إلى الفيتريف يعتمد بشكل رئيسي على عمر الأم. في النساء الأصغر من 36 سنة، مطلوب ما لا يقل عن 8-10 البويضات MII18 لتحقيق أقصى قدر من فرصة النجاح. بشكل عام ، كلما ارتفع عدد البويضات الزهية ، كلما زاد احتمال النجاح. لذلك، فإن تكييف تحفيز المبيض وفقا لعلامات احتياطي المبيض مثل مستويات الهرمون المضاد للمولريان (AMH) أو عدد الجريبات النملية (AFC) أمر بالغ الأهمية لاستغلال احتياطي المبيض بشكل كامل في أقصر وقت ممكن.

سلامة الإجراء كله هو القضية الرئيسية الأخرى عند تسجيل المرضى للحفاظ على الخصوبة. يجب على الأطباء استخدام أفضل الاستراتيجيات لتقليل المخاطر ومنع (i) متلازمة فرط تحفيز المبيض (OHSS) باستخدام نهج آمنة مثل بروتوكول خصم هرمون إطلاق الغدد التناسلية (GnRH) يليه مشغل ناهض GnRH19 و (2) جهاز التحكم عن بعد ، ولكن من الممكن، مخاطر النزيف البريتوني، إصابة هياكل الحوض (الحالب، الأمعاء، الزائدة الدودية، الأعصاب)، أو عدوى الحوض أثناء استرجاع البويضات. وأخيرا، (3) ترتبط الأنظمة التقليدية للتحفيز مع استراديول مصل فوق الفيزيائية، وبالتالي، لا ينصح في الأمراض الحساسة للاستروجين مثل سرطان الثدي. بروتوكولات تنطوي على مثبطات الأروماتاز (مثل ليتروزول أو تاموكسيفين) هي أكثر ملاءمة في هذه الحالات20,21. في الإعداد المختبري ، لا يزال البروتوكول الأكثر انتشارا لتزجيج البويضات هو البروتوكول الذي وصفه كواياما وزملاؤه2،23، والذي يتكون من إجراء تدريجي يتضمن إضافة تدريجية لمضادات التبريد (CPAs). في المرحلة الأولى (التوازن / الجفاف) ، تتعرض البويضات في محلول CPA يحتوي على 7.5٪ v / v جلايكول الإيثيلين و 7.5٪ v /v ثنائي ميثيل سلفوسيد (DMSO) ، بينما في المرحلة الثانية ، يتم نقل البويضات إلى حل التزجيج مع 15٪ v/v جلايكول الإيثيلين و 15٪ v/v DMSO، بالإضافة إلى 0.5 مول / لتر السكروز. بعد حضانة قصيرة في وسط التزجيج ، يمكن وضع البويضات في مبردات مفتوحة مصممة خصيصا وسقطت أخيرا في النيتروجين السائل عند -196 درجة مئوية ليتم تخزينها حتى الاستخدام.

هنا، تم وصف العمل السريري والمختبري بأكمله لعلاج الحفاظ على الخصوبة من خلال (1) تحديد التوصيات للحصول على المشورة الموضوعية والقائمة على الأدلة، (2) مع التركيز على فعالية تكلفة الإجراء، و (3) وصف الاستراتيجيات الأكثر ملاءمة لاستغلال احتياطي المبيض بشكل كامل وتعظيم عدد البويضات التي تم استرجاعها في أقصر وقت ممكن. سيتم تفصيل تقييم احتياطي المبيض ، وتعريف بروتوكول التحفيز المثالي ، وكذلك إجراءات استرجاع البويضات والتكريد والتزجيج جنبا إلى جنب مع النهج لتحقيق أقصى قدر من فعاليتها وكفاءتها وسلامتها. وبما أن البروتوكولات أو التعديلات الأخرى لهذا البروتوكول موجودة في المؤلفات، فإن النتائج التمثيلية وأقسام المناقشة في هذه المخطوطة تنطبق فقط على هذا الإجراء.

Protocol

1. العمل والمشورة السريرية ملاحظة: في حالة المرضى الذين يحتاجون إلى الحفاظ على الخصوبة لأسباب تتعلق بالأورام، تأكد من عدم وجود قائمة انتظار للتشاور الجدولة، ويتم توفير الموعد في أقرب وقت ممكن. فحص التاريخ الطبي والوثائق السابقة، وتقييم الحالة الصحية العامة للمريض. …

Representative Results

نظرة عامة على برنامج الحفاظ على الخصوبة في المركز وعلى مدى فترة 12 عاما (2008-2020)، خضعت 285 امرأة لاسترجاع بويضات واحدة على الأقل، مما انطوى على تزجيج مجموعة كاملة من البويضات الناضجة التي تم جمعها. وخضع معظم هؤلاء النساء (ن= 250) لاسترجاع واحد، وخضعت 35 امرأة لعمليات استرج?…

Discussion

الاعتبارات السريرية

على الرغم من أن الاستراتيجيات الناشئة، مثل الحفاظ على التبريد أنسجة المبيض والنضج في المختبر، وقد تم استكشاف، تزجيج البويضات بعد COS هو تقنية معيار الذهب للحفاظ على الخصوبة. في هذا السيناريو، ينبغي تعظيم عدد البويضات التي تم استرجاعها والتبري?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

اي

Materials

Collection
Equipment
Hot plate IVF TECH
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stereomicroscope Leica Leica M80
Thermometer
Test tube Warmer
Tri-gas incubator Panasonic MCO-5M-PE 02/CO2
Vacuum Pump Cook K-MAR-5200
Consumables
CSCM (Continuos single culture complete) medium Fujifilm Irvine Scientific 90165 IVF culture medium supplemented with HSA
Mineral Oil for embryo culture Fujifilm Irvine Scientific 9305
Ovum Aspiration Needle (Single lumen) Cook K-OSN-1730-B-60
Primaria Dish Corning 353803 Corning Primaria Dish 100×20 mm style standard cell culture dish
Round- bottom tubes Falcon 352001 Falcon 14ml Round Bottom Polystyrene Test tube with snap cap
Round- bottom tubes Falcon 352003 Oocyte collection tubes/ Falcon 5ml 12×75 Round Bottom Polipropilene Test tube with snap cap
Rubber Bulb Sigma Aldrich Z111589-12EA
Sterile glass Pasteur pipettes Hunter Scientific PPB150-100PL Pipette Pasteur Cotonate, 150mm, MEA e CE
Denudation
Equipment
CO2 incubator Eppendorf Galaxy 14S
Flexipet adjustable handle set Cook G18674 Stripper  holder
Gilson Pipetman Gilson 66003 p20
k-System Incubator Coopersurgical G210Invicell
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stereomicroscope Leica Leica M80
Consumables
Biopur epTIPS Rack Eppendorf 30075331 Micropipettes epTIPS Biopur 2-200 µl
Human Serum Albumin thermoFisher Scietific 9988
Hyaluronidase Fujifilm Irvine Scientific 90101 80 IU/mL of hyaluronidase enzyme in HEPES-buffered HTF
IVF culture dish (60 x 15mm) Corning 353802 Corning Primaria Falcon Dish 60X15mm TC Primaria standard cell culture dish
IVF dish 4-well plate with sliding lid ThermoFisher Scietific 176740 Multidishes 4 wells (Nunc)
IVF One well dish Falcon 353653 Falcon 60 x 15 mm TC treated center-well IVF
Mineral Oil for embryo culture Fujifilm Irvine Scientific 9305
Modified HTF Medium Fujifilm Irvine Scientific 90126 HEPES-Buffered medium
Rubber Bulb Sigma Aldrich Z111589-12EA 1 mL for pasteur pipettes
Sterile glass Pasteur pipettes Hunter Scientific PPB150-100PL Pipette Pasteur Cotonate, 150 mm, MEA e CE
stripping pipette  tips (140 µm) Cook K-FPIP-1140-10BS-6 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
stripping pipette tips (130 µm ) Cook K-FPIP-1130-10BS-7 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
stripping pipette tips (170 µm) Cook K-FPIP-1170-10BS-5 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
Vitrification
Equipment
Electronic Timer
Flexipet adjustable handle set Cook G18674 Stripper  holder
Gilson Pipetman Gilson F123601 p200
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stainless Container for Cooling Rack Kitazato Liquid nitrogen container for vitrification
Stereomicroscope Leica Leica M80
Consumables
Biopur epTIPS Rack Eppendorf 30075331 Micropipettes epTIPS Biopur 2-200 µL
Human Serum Albumin Fujifilm Irvine Scientific 9988
IVF culture dish (60 x 15 mm) Corning 353802 Corning Primaria Falcon Dish 60 x 15 mm TC Primaria standard cell culture dish
IVF dish 6-well Oosafe OOPW-SW02 OOSAFE 6 WELL DISH WITH STRAW HOLDER
Modified HTF Medium Fujifilm Irvine Scientific 90126 HEPES-Buffered medium
stripping pipette tips (170 µm) Cook K-FPIP-1170-10BS-5 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
Vitrification Freeze kit Fujifilm Irvine Scientific 90133-so 2 Vials of ES (Equilibration Solution, 2 x 1 mL) and 2 Vials of VS (Vitrification Solution, 2 x 1 mL)
Vitrifit Coopersurgical Origio 42782001A VitriFit  Box
Warming
Equipment
Electronic Timer
Flexipet adjustable handle set Cook G18674 Stripper  holder
Gilson Pipetman Gilson F123601 p200
k-System Incubator Coopersurgical G210Invicell
Lab Markers Sigma Aldrich
Laminar Flow Hood IVF TECH Grade A air flow
Stainless Container for Cooling Rack Kitazato Liquid nitrogen container for vitrification
Stereomicroscope Leica Leica M80
Consumables
Biopur epTIPS Rack Eppendorf 30075331 Micropipettes epTIPS Biopur 2-200 µL
CSCM (Continuos single culture complete) medium Fujifilm Irvine Scientific 90165 IVF culture medium supplemented with HSA
IVF culture dish (60 x 15 mm) Corning 353802 Corning Primaria Falcon Dish 60X15mm TC Primaria standard cell culture dish
IVF dish 4-well plate with sliding lid ThermoFisher Scietific 176740 Multidishes 4 wells (Nunc)
IVF dish 6-well Oosafe OOPW-SW02 OOSAFE® 6 WELL DISH WITH STRAW HOLDER
Mineral Oil for embryo culture Fujifilm Irvine Scientific 9305
SAtripping pipette tips (300µm) Cook K-FPIP-1300-10BS-5 PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
Vitrification Thaw kit Fujifilm Irvine Scientific 90137-so 4 Vials of TS (Thawing Solution, 4 x 2 mL) + 1 Vial of DS (Dilution Solution, 1 x 2 mL) +1 Vial of WS (Washing Solution, 1 x 2 mL)
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Cobo, A., Diaz, C. Clinical application of oocyte vitrification: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Fertility and Sterility. 96 (2), 277-285 (2011).
  2. Rienzi, L., et al. Oocyte, embryo and blastocyst cryopreservation in ART: systematic review and meta-analysis comparing slow-freezing versus vitrification to produce evidence for the development of global guidance. Human Reproduction Update. 23 (2), 139-155 (2017).
  3. Nagy, Z. P., Anderson, R. E., Feinberg, E. C., Hayward, B., Mahony, M. C. The Human Oocyte Preservation Experience (HOPE) Registry: evaluation of cryopreservation techniques and oocyte source on outcomes. Reproductive Biology and Endocrinology. 15 (1), (2017).
  4. Practice Committees of American Society for Reproductive, M., & Society for Assisted Reproductive, T. Mature oocyte cryopreservation: a guideline. Fertility and Sterility. 99 (1), 37-43 (2013).
  5. Lee, S. J., et al. American Society of Clinical Oncology recommendations on fertility preservation in cancer patients. Journal of Clinical Oncology. 24 (18), 2917-2931 (2006).
  6. Nakayama, K., Ueno, N. T. American Society of Clinical Oncology recommendations on fertility preservation should be implemented regardless of disease status or previous treatments. Journal of Clinical Oncology. 24 (33), 5334-5335 (2006).
  7. Martinez, F. Update on fertility preservation from the Barcelona International Society for Fertility Preservation-ESHRE-ASRM 2015 expert meeting: indications, results and future perspectives. Human Reproduction. 32 (9), 1802-1811 (2017).
  8. Lantsberg, D., Fernando, S., Cohen, Y., Rombauts, L. The role of fertility preservation in women with endometriosis: a systematic review. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 27 (2), 362-372 (2020).
  9. Anderson, R. A., et al. Cancer treatment and gonadal function: experimental and established strategies for fertility preservation in children and young adults. Lancet Diabetes & Endocrinology. 3 (7), 556-567 (2015).
  10. Lambertini, M., et al. Cancer and fertility preservation: international recommendations from an expert meeting. BMC Medicine. 14, 1 (2016).
  11. Kim, S. J., Kim, S. K., Lee, J. R., Suh, C. S., Kim, S. H. Oocyte cryopreservation for fertility preservation in women with ovarian endometriosis. Reproductive Biomedicine Online. 40 (6), 827-834 (2020).
  12. Loren, A. W., et al. Fertility preservation for patients with cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. Journal of Clinical Oncology. 31 (19), 2500-2510 (2013).
  13. Peccatori, F. A., et al. Cancer, pregnancy and fertility: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Annals of Oncology. 24, 160-170 (2013).
  14. Dondorp, W. J., De Wert, G. M. Fertility preservation for healthy women: ethical aspects. Human Reproduction. 24 (8), 1779-1785 (2009).
  15. Cil, A. P., Bang, H., Oktay, K. Age-specific probability of live birth with oocyte cryopreservation: an individual patient data meta-analysis. Fertilility and Steriityl. 100 (2), 492-499 (2013).
  16. Ubaldi, F. M., et al. Advanced maternal age in IVF: still a challenge? The present and the future of its treatment. Frontiers in Endocrinology. 10, 94 (2019).
  17. Cimadomo, D., et al. Impact of maternal age on oocyte and embryo competence. Frontiers in Endocrinology. 9, 327 (2018).
  18. Cobo, A., et al. Oocyte vitrification as an efficient option for elective fertility preservation. Fertility and Sterility. 105 (3), 755-764 (2016).
  19. Devroey, P., Polyzos, N. P., Blockeel, C. An OHSS-Free Clinic by segmentation of IVF treatment. Human Reproduction. 26 (10), 2593-2597 (2011).
  20. Sonigo, C., et al. Impact of letrozole supplementation during ovarian stimulation for fertility preservation in breast cancer patients. European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology X. 4, 100049 (2019).
  21. Marklund, A., et al. Efficacy and safety of controlled ovarian stimulation using GnRH antagonist protocols for emergency fertility preservation in young women with breast cancer-a prospective nationwide Swedish multicenter study. Human Reproduction. 35 (4), 929-938 (2020).
  22. Kuwayama, M. Highly efficient vitrification for cryopreservation of human oocytes and embryos: the Cryotop method. Theriogenology. 67 (1), 73-80 (2007).
  23. Kuwayama, M., Vajta, G., Kato, O., Leibo, S. P. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 11 (3), 300-308 (2005).
  24. Bosch, E., et al. ESHRE guideline: ovarian stimulation for IVF/ICSI(dagger). Human Reproduction Open. 2020 (2), (2020).
  25. ESHRE Working Group on Ultrasound in ART. Recommendations for good practice in ultrasound: oocyte pick up(dagger). Human Reproduction Open. 2019 (4), 025 (2019).
  26. Rienzi, L., et al. Failure mode and effects analysis of witnessing protocols for ensuring traceability during IVF. Reproductive Biomedicine Online. 31 (4), 516-522 (2015).
  27. Mazzilli, R., et al. Effect of the male factor on the clinical outcome of intracytoplasmic sperm injection combined with preimplantation aneuploidy testing: observational longitudinal cohort study of 1,219 consecutive cycles. Fertility and Sterility. 108 (6), 961-972 (2017).
  28. Polyzos, N. P., et al. Cumulative live birth rates according to the number of oocytes retrieved after the first ovarian stimulation for in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection: a multicenter multinational analysis including approximately 15,000 women. Fertility and Steriityl. 110 (4), 661-670 (2018).
  29. Alteri, A., Pisaturo, V., Nogueira, D., D’Angelo, A. Elective egg freezing without medical indications. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 98 (5), 647-652 (2019).
  30. Mesen, T. B., Mersereau, J. E., Kane, J. B., Steiner, A. Z. Optimal timing for elective egg freezing. Fertility and Steriityl. 103 (6), 1551-1556 (2015).
  31. Doyle, J. O., et al. Successful elective and medically indicated oocyte vitrification and warming for autologous in vitro fertilization, with predicted birth probabilities for fertility preservation according to number of cryopreserved oocytes and age at retrieval. Fertility and Sterility. 105 (2), 459-466 (2016).
  32. Rienzi, L., et al. Significance of metaphase II human oocyte morphology on ICSI outcome. Fertility and Sterility. 90 (5), 1692-1700 (2008).
  33. Ubaldi, F. M., et al. Reduction of multiple pregnancies in the advanced maternal age population after implementation of an elective single embryo transfer policy coupled with enhanced embryo selection: pre- and post-intervention study. Human Reproduction. 30 (9), 2097-2106 (2015).
  34. Cakmak, H., Katz, A., Cedars, M. I., Rosen, M. P. Effective method for emergency fertility preservation: random-start controlled ovarian stimulation. Fertility and Sterility. 100 (6), 1673-1680 (2013).
  35. Moravek, M. B., et al. Long-term outcomes in cancer patients who did or did not pursue fertility preservation. Fertility and Sterility. 109 (2), 349-355 (2018).
  36. Vaiarelli, A., Venturella, R., Vizziello, D., Bulletti, F., Ubaldi, F. M. Dual ovarian stimulation and random start in assisted reproductive technologies: from ovarian biology to clinical application. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 29 (3), 153-159 (2017).
  37. Vaiarelli, A., Cimadomo, D., Ubaldi, N., Rienzi, L., Ubaldi, F. M. What is new in the management of poor ovarian response in IVF. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 30 (3), 155-162 (2018).
  38. Venturella, R., et al. State of the art and emerging drug therapies for female infertility. Gynecological Endocrinology. 35 (10), 835-841 (2019).
  39. Venturella, R., et al. A modern approach to the management of candidates for assisted reproductive technology procedures. Minerva Ginecologica. 70 (1), 69-83 (2018).
  40. Ferreiro, E., de Uralde, B. L., Abreu, R., Garcia-Velasco, J. A., Munoz, E. Aromatase inhibitors for ovarian stimulation in patients with breast cancer. Current Drug Targets. 21 (9), 910-921 (2020).
  41. Oktay, K., et al. Letrozole reduces estrogen and gonadotropin exposure in women with breast cancer undergoing ovarian stimulation before chemotherapy. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 91 (10), 3885-3890 (2006).
  42. Meirow, D., et al. Tamoxifen co-administration during controlled ovarian hyperstimulation for in vitro fertilization in breast cancer patients increases the safety of fertility-preservation treatment strategies. Fertility and Steriity. 102 (2), 488-495 (2014).
  43. Friedler, S., Koc, O., Gidoni, Y., Raziel, A., Ron-El, R. Ovarian response to stimulation for fertility preservation in women with malignant disease: a systematic review and meta-analysis. Fertility and Steriity. 97 (1), 125-133 (2012).
  44. Tsampras, N., Gould, D., Fitzgerald, C. T. Double ovarian stimulation (DuoStim) protocol for fertility preservation in female oncology patients. Human Fertility. 20 (4), 248-253 (2017).
  45. Vaiarelli, A., et al. Double stimulation in the same ovarian cycle (DuoStim) to maximize the number of oocytes retrieved from poor prognosis patients: a multicenter experience and SWOT analysis. Frontiers in Endocrinology. 9, 317 (2018).
  46. Cimadomo, D., et al. Luteal phase anovulatory follicles result in the production of competent oocytes: intra-patient paired case-control study comparing follicular versus luteal phase stimulations in the same ovarian cycle. Human Reproduction. 33 (8), 1442-1448 (2018).
  47. Rienzi, L., Ubaldi, F. M. Oocyte versus embryo cryopreservation for fertility preservation in cancer patients: guaranteeing a women’s autonomy. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 32 (8), 1195-1196 (2015).
  48. Oktay, K., Harvey, B. E., Loren, A. W. Fertility preservation in patients with cancer: ASCO clinical practice guideline update summary. JCO Oncology Practice. 14 (6), 381-385 (2018).
  49. Iussig, B., et al. A brief history of oocyte cryopreservation: Arguments and facts. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 98 (5), 550-558 (2019).
  50. Best, B. P. Cryoprotectant toxicity: facts, issues, and questions. Rejuvenation Research. 18 (5), 422-436 (2015).
  51. Fuller, B., Paynter, S. Fundamentals of cryobiology in reproductive medicine. Reproductive Biomedicine Online. 9 (6), 680-691 (2004).
  52. Konc, J., Kanyo, K., Kriston, R., Somoskoi, B., Cseh, S. Cryopreservation of embryos and oocytes in human assisted reproduction. BioMed Research International. 2014, 307268 (2014).
  53. Erstad, B. L. Osmolality and osmolarity: narrowing the terminology gap. Pharmacotherapy. 23 (9), 1085-1086 (2003).
  54. Sunde, A., et al. Time to take human embryo culture seriously. Human Reproduction. 31 (10), 2174-2182 (2016).
  55. Swain, J. E., Cabrera, L., Xu, X., Smith, G. D. Microdrop preparation factors influence culture-media osmolality, which can impair mouse embryo preimplantation development. Reproductive Biomedicine Online. 24 (2), 142-147 (2012).
  56. Wale, P. L., Gardner, D. K. The effects of chemical and physical factors on mammalian embryo culture and their importance for the practice of assisted human reproduction. Human Reproduction Update. 22 (1), 2-22 (2016).
  57. Seki, S., Mazur, P. The dominance of warming rate over cooling rate in the survival of mouse oocytes subjected to a vitrification procedure. Cryobiology. 59 (1), 75-82 (2009).
  58. Karlsson, J. O. A theoretical model of intracellular devitrification. Cryobiology. 42 (3), 154-169 (2001).
  59. Jin, B., et al. Equilibrium vitrification of mouse embryos. Biololgy of Reproduction. 82 (2), 444-450 (2010).
  60. Mazur, P. Equilibrium, quasi-equilibrium, and nonequilibrium freezing of mammalian embryos. Cell Biophysics. 17 (1), 53-92 (1990).
  61. Parmegiani, L., et al. “Universal Warming” protocol for vitrified oocytes to streamline cell exchange for transnational donation programs: a multi-center study. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 37 (6), 1379-1385 (2020).
  62. Vajta, G., Rienzi, L., Ubaldi, F. M. Open versus closed systems for vitrification of human oocytes and embryos. Reproductive Biomedicine Online. 30 (4), 325-333 (2015).
  63. Cai, H., et al. Open versus closed vitrification system of human oocytes and embryos: a systematic review and meta-analysis of embryologic and clinical outcomes. Reproductive Biology & Endocrinology. 16 (1), 123 (2018).
  64. Parmegiani, L., et al. Sterilization of liquid nitrogen with ultraviolet irradiation for safe vitrification of human oocytes or embryos. Fertility and Sterility. 94 (4), 1525-1528 (2010).
  65. Parmegiani, L., et al. Efficiency of aseptic open vitrification and hermetical cryostorage of human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 23 (4), 505-512 (2011).
  66. Cobo, A., et al. Storage of human oocytes in the vapor phase of nitrogen. Fertility and Sterility. 94 (5), 1903-1907 (2010).
  67. Eum, J. H., et al. Long-term liquid nitrogen vapor storage of mouse embryos cryopreserved using vitrification or slow cooling. Fertility and Sterility. 91 (5), 1928-1932 (2009).
  68. Fabozzi, G., et al. Which key performance indicators are most effective in evaluating and managing an in vitro fertilization laboratory. Fertility and Sterility. 114 (1), 9-15 (2020).
  69. Dessolle, L., et al. Learning curve of vitrification assessed by cumulative summation test for learning curve (LC-CUSUM). Fertility and Sterility. 92 (3), 943-945 (2009).
  70. Alpha Scientists In Reproductive Medicine. The Alpha consensus meeting on cryopreservation key performance indicators and benchmarks: proceedings of an expert meeting. Reproductive Biomedicine Online. 25 (2), 146-167 (2012).
  71. Edgar, D. H., Gook, D. A. A critical appraisal of cryopreservation (slow cooling versus vitrification) of human oocytes and embryos. Human Reproduction Update. 18 (5), 536-554 (2012).
  72. Edgar, D. H., Archer, J., Bourne, H. The application and impact of cryopreservation of early cleavage stage embryos in assisted reproduction. Human Fertility. 8 (4), 225-230 (2005).

Tags

Oocyte VitrificationFertility PreservationCryopreservationOocyte WarmingIVFCryoprotectantsEquilibration SolutionVitrification SolutionCryo DeviceHEPES Buffer MediumHuman Serum AlbuminStripper PipetteCentral Well IVF Dish

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citer Cet Article
Maggiulli, R., Vaiarelli, A., Cimadomo, D., Giancani, A., Tacconi, L., Fabozzi, G., Ubaldi, F. M., Rienzi, L. Fertility Preservation Through Oocyte Vitrification: Clinical and Laboratory Perspectives. J. Vis. Exp. (175), e61963, doi:10.3791/61963 (2021).
Télécharger la Citation
Réimpressions et Autorisations

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image