Summary

Isolering av aktiv caenorhabditis elegans kärnextrakt och rekonstitution för in vitro-transkription

Published: August 11, 2021
doi:

Summary

Här beskriver vi ett detaljerat protokoll för att isolera aktiva kärnämne extrakt från larv steg 4 C. elegans och visualisera transkription verksamhet i ett in vitro system.

Abstract

Caenorhabditis elegans har varit ett viktigt modellsystem för biologisk forskning sedan det infördes 1963. C. elegans har dock inte utnyttjats fullt ut i den biokemiska studien av biologiska reaktioner med hjälp av dess kärnextrakt såsom in vitro-transkription och DNA-replikering. Ett betydande hinder för att använda C. elegans i biokemiska studier stör nematodens tjocka yttre nagelband utan att offra aktiviteten hos kärnextraktet. Medan flera metoder används för att bryta nagelbandet, såsom Dounce homogenisering eller ultraljudsbehandling, leder de ofta till proteininstabilitet. Det finns inga etablerade protokoll för att isolera aktiva nukleära proteiner från larva eller vuxen C. elegans för in vitro reaktioner . Här beskriver protokollet i detalj homogeniseringen av larvstadium 4 C. elegans med hjälp av en Balch homogenisator. Balch homogenisator använder tryck för att långsamt tvinga djuren genom ett smalt mellanrum som bryter nagelbandet i processen. Balch homogenisators enhetliga konstruktion och exakta bearbetning möjliggör konsekvent slipning av djur mellan experimenten. Fraktionering av homogenatet som erhålls från Balch homogenisator ger funktionellt aktiva kärnextrakt som kan användas i en in vitro-metod för att analysera transkriptionsaktiviteten hos C. elegans.

Introduction

Den lilla, frilevande nematoden Caenorhabditis elegans är en enkel men kraftfull modellorganism för att ta itu med ett brett spektrum av biologiska frågor. Sedan introduktionen 1963 har nematoderna varit ovärderliga för att svara på frågor inom neurobiologi, metabolism, åldrande, utveckling, immunitet och genetik1. Några av djurets många egenskaper som gör det till en idealisk modellorganism inkluderar kort generationstid, effektiviteten av RNA-interferens, transparent kropp och de färdiga kartorna över både dess cellulära härstamning och nervsystem.

Medan nematodens bidrag till vetenskapen är enorma, har de underutnyttjats för att klargöra det eukaryota transkriptionssystemet, med det mesta av vår förståelse för dessa mekanismer som kommer från studier med kärnextrakt från jäst, fruktfluga och däggdjurscellkultur2. Det största hindret som avskräcker forskare från att utvinna funktionellt kärnextrakt är nematodens tuffa yttre nagelband. Detta exoskelett består av korslänkade kollagener, cuticlins, glykoproteiner och lipider, vilket gör C. elegans från larvstadium till vuxen ålder resistent mot proteinutvinning via kemiska eller mekaniska krafter3. Ett in vitro transkriptionssystem med C. elegans kärnextrakt utvecklades en gång men inte allmänt antogs på grund av systemets begränsade omfattning, och användningen av Dounce homogenizer för att förbereda extraktet kan leda till protein instabilitet4,5.

Till skillnad från det tidigare protokollet för kärnextraktisolering som använde en Dounce homogenisator för att bryta C. elegans, använder detta protokoll en Balch homogenisator. Balch homogenisator består av två huvudkomponenter: en volframkarbidboll och ett rostfritt stålblock med en kanal uttråkad från ena änden till en annan. Balch homogenisator är laddad med volframkarbidbollen och täckt på vardera sidan för att försegla slipkammaren. Sprutor kan laddas på de två vertikala portarna som leder in i slipkammaren. När materialet överförs från en spruta till en annan genom slipkammaren tvingar trycket från sprutorna materialet genom ett smalt mellanrum mellan bollen och kammarens vägg. Detta långsamma och konstanta tryck bryter materialet tills det når en jämn storlek som lätt kan passera genom det smala gapet. Att tvinga C. elegans genom det smala gapet via ett konstant men ändå mjukt tryck bryter djuren öppna och släpper ut deras innehåll i den omgivande bufferten. Om du byter bollstorlekar skärps gapet ytterligare, de nyutgivna cellerna bryts och kärnorna frigörs i bufferten. Flera fall av centrifugering separerar kärnorna från resten av cellskräpet, vilket möjliggör insamling av ett rent kärnextrakt. Balch homogenisator föredras framför Dounce homogenisator av flera skäl: systemet kan hantera ett stort antal djur, vilket gör det möjligt att extrahera en hög mängd aktiva proteiner i ett enda försök; Den exakta bearbetningen av bollarna och stålblocket möjliggör konsekvent slipning mellan flera prover. det tunga stålblocket fungerar som en kylfläns och drar jämnt bort värme från slipkammaren, vilket förhindrar denaturering.

Efter isolering måste transkriptionsaktiviteten av kärnextrakt verifieras innan den används i några biokemiska experiment. Traditionellt mättes transkriptionsaktivitet med hjälp av radiomärkta nukleotider för att spåra och visualisera det nyligen syntetiserade RNA. Radioaktiv märkning kan dock vara betungande eftersom det kräver försiktighet vid användning och bortskaffande6. Tekniska framsteg gör det möjligt för forskare idag att använda mycket mindre skadliga eller besvärliga metoder för att mäta även små RNA-mängder med hjälp av tekniker som kvantitativ realtid PCR (qRT-PCR)7. Här beskriver protokollet en metod för att isolera aktiva kärnextrakt från larvstadium 4 (L4) C. elegans och visualisera transkriptionsaktivitet i ett in vitro-system.

Protocol

1. Medieförberedelser Förbered sterila lysogena buljongplattor (LB) och flytande medier enligt tillverkarens instruktioner. Streak Escherichia coli (E. coli) stam OP50 på en LB agar tallrik. Inkubera bakteriestrimmen vid 37 °C över natten. Förvara E. coli OP50-streckplattan vid 4 °C efter inkubation. E. coli OP50-plattan kan förvaras säkert vid 4 °C i 2 veckor om den är insvept i parafilm för att förhindra fuktförlust. Förbered 2 L…

Representative Results

Enligt de skisserade stegen bör ge funktionellt kärnextrakt (figur 1) kan avvikelse i slip- eller tvättstegen leda till dålig aktivitet eller låg avkastning. Om funktionellT C. elegans kärnextrakt erhålls kommer det att transkribera regionen nedströms CMV-promotorn på DNA-mallen när den läggs till i den tidigare beskrivna in vitro-analysen . Den resulterande RNA-transkriptionen kan renas från kärnproteinerna och DNA-mallen med …

Discussion

C. elegans är en tilltalande modellorganism för att studera det eukaryota transkriptionssystemet på grund av dess billiga underhåll och den enkla genetiska manipulationen. Här beskrivs ett protokoll för konsekvent isolering av funktionellt aktiva kärnämne extrakt från L4 C. elegans . Även om detta protokoll fokuserade på att visualisera transkription verksamhet, cDNA produceras post-transcriptionally kan kvantifieras med RT-qPCR för att få en mer exakt mätning av transkription <sup class="…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av ett NIH MIRA-bidrag (R35GM124678 till J. S.).

Materials

Consumables and reagents
0.2 mL 8-Strip Tubes & Flat Strip Caps, Clear Genesee Scientific  24-706
0.2 mL Individual PCR tubes Genesee Scientific  24-153G
1.7 mL sterile microtubes Genesee Scientific 24-282S
100% absolute molecular grade ethanol Fisher Scientific  BP2818
100% ethanol, Koptec Decon Labs  V1001
10 mL serological pipet VWR international  89130-898
150 mm petri plates Tritech Research  T3325
15 mL conical centrifuge tubes Genesee Scientific  28-103
20 mL plastic syringes Fisher Scientific 14955460
2 mL Norm-Ject syringes Henke-Sass Wolf GmbH 4020
500 mL vacuum filter cup 0.22 µm PES, Stericup Millipore Express Plus Millipore Sigma SCGPU10RE
50 mL conical centrifuge tubes ThermoFisher Scientific 339652
50 mL serological pipet VWR international  89130-902
5 mL serological pipet VWR international  89130-896
Agar, Criterion VWR International  C7432
Agarose Denville Scientific  CA3510-6
Alcohol proof marker VWR International  52877-310
Bacto peptone VWR International  90000-264
Caenorhabditis elegans CGC N2
Calcium dichloride Millipore Sigma  C4901
Cholesterol Millipore Sigma  C8667
Control DNA temple cloning primers, Forward 5’- ctc atg ttt gac agc tta tcg atc cgg gc -3’
Control DNA temple cloning primers, Forward 5’- aca gga cgg gtg tgg tcg cca tga t -3’
Deionized water
Dithiothreitol Invitrogen  15508-013
DNA gel stain, SYBR safe Invitrogen  S33102
DNA ladder mix, O’gene ruler Fisher Scientific  SM1173
DNA Loading Dye, 6x TriTrack Fisher Scientific  FERR1161
DNase, Baseline-ZERO Lucigen  DB0715K
Dry ice
Escherichia coli OP50 strain CGC OP50
Glacial acetic acid Fisher Scientific  A38
Glycerol Millipore Sigma  G6279
HeLa nuclear extract in vitro transcription system, HeLaScribe Promega  E3110
Hepes Solution, 1 M Gibco Millipore Sigma 15630080
Hydrochloric acid 37% Millipore Sigma  P0662
Hypochlorite bleach Clorox
LB Broth Millipore Sigma  L3022
Magnesium dichloride Millipore Sigma  M8266
Magnesium Sulfate Millipore Sigma  M7506
Medium weigh dishes Fisher Scientific  02-202-101
microscope slides, Vista vision VWR International 16004-368
molecular grade water, Hypure Hyclone Laboratories  SH30538
Nystatin Millipore Sigma  N1638
PCR system, FailSafe with premix A Lucigen  FS99100
Potassium chloride Millipore Sigma  P39111
Potassium phosphate dibasic Millipore Sigma  P3786
Potassium phosphate monobasic Millipore Sigma  P0662
Protease inhibitor, Halt single use cocktail 100x ThermoFisher Scientific 78430
protein assay kit, Qubit ThermoFisher Scientific  Q33211
reverse transcription kit, Sensiscript Qiagen 205211
RNA extraction kit RNeasy micro kit Qiagen 74004
RNase Inhibitor Applied Biosystems  N8080119
Sodium Chloride VWR International  BDH9286-12KG
Sodium hydroxide Millipore Sigma  1-09137
Sterile syringe filter with 0.2 µm Polyethersulfone membrane VWR international 28145-501
Sucrose VWR International  200-334-9
transcription primers, Forward 5’- gcc ggg cct ctt gcg gga tat -3’
transcription primers, Reverse 5’- cgg cca aag cgg tcg gac agt-3’
Tris-Base Fisher Scientific  BP152
Tween20 Millipore Sigma  P2287
Equipment
-20 °C incubator ThermoFisher Scientific
20 °C incubator ThermoFisher Scientific
37 °C incubator Forma Scientific
4 °C refrigerator ThermoFisher Scientific
-80 °C freezer Eppendorf
Autoclave Sanyo
Balch homogenizer, isobiotec cell homogenizer Isobiotec
Benchtop Vortexer Fisher Scientific 2215365
Centrifuge, Eppendorf 5418 R Eppendorf 5401000013
Centrifuge, VWR Clinical 50 VWR International 82013-800
Dissection microscope, Leica M80 Leica Microsystems
Fluorometer, Qubit 2.0 Invitrogen Q32866
Gel imaging system, iBright FL1500 ThermoFisher Scientific  A44241
Gel system ThermoFisher Scientific
Heat block VWR International 12621-048
Microcentrifuges, Eppendorf 5424 Eppendorf 22620401
PIPETBOY acu 2 Integra 155017
Pipette L-1000 XLS+, Pipet-Lite LTS Rainin 17014382
Pipette L-10 XLS+, Pipet-Lite LTS Rainin 17014388
Pipette L-200 XLS+, Pipet-Lite LTS Rainin 17014391
Pipette L-20 XLS+, Pipet-Lite LTS Rainin 17014392
Rocking platform VWR International
Thermocycler, Eppendorf Mastercycler Pro Eppendorf 950030010

References

  1. Corsi, A. K., Wightman, B., Chalfie, M. A Transparent window into biology: A on Caenorhabditis elegans. Genetics. 200 (2), 387-407 (2015).
  2. Blackwell, T. K., Walker, A. K. Transcription mechanisms. WormBook: The Online Review of C. elegans Biology. , 1-16 (2006).
  3. Page, A. P., Johnstone, I. L. The cuticle. WormBook: The Online Review of C. elegans Biology. , 1-15 (2007).
  4. Lichtsteiner, S., Tjian, R. Cloning and properties of the Caenorhabditis elegans TATA-box-binding protein. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (20), 9673-9677 (1993).
  5. Lichtsteiner, S., Tjian, R. Synergistic activation of transcription by UNC-86 and MEC-3 in Caenorhabditis elegans embryo extracts. EMBO Journal. 14 (16), 3937-3945 (1995).
  6. Shan, G., et al. Isotope-labeled immunoassays without radiation waste. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (6), 2445-2449 (2000).
  7. Voss, C., et al. A novel, non-radioactive eukaryotic in vitro transcription assay for sensitive quantification of RNA polymerase II activity. BMC Molecular Biology. 15, 7 (2014).
  8. Wibisono, P., Liu, Y., Sun, J. A novel in vitro Caenorhabditis elegans transcription system. BMC Molecular and Cell Biology. 21 (1), 87 (2020).
  9. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook: The Online Review of C. elegans Biology. , 1-11 (2006).
  10. Zbacnik, T. J., et al. Role of buffers in protein formulations. Journal of Pharmaceutical Sciences. 106 (3), 713-733 (2017).
check_url/62723?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wibisono, P., Sun, J. Isolation of Active Caenorhabditis elegans Nuclear Extract and Reconstitution for In Vitro Transcription. J. Vis. Exp. (174), e62723, doi:10.3791/62723 (2021).

View Video