Summary

TDP-43 단백질 요법의 드로소필라 모델에서 포도당 섭취 측정

Published: August 03, 2021
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Summary

포도당 섭취량은 FRET 기반의 유전자 인코딩 된 포도당 센서에 의해 표시된 바와 같이 TAR DNA 결합 단백질 (TDP-43) 단백질 병증에 의해 영향을받는 Drosophila 운동 뉴런에서 증가합니다.

Abstract

근위축성 측삭 경화증은 진단 후 2-5 년 이내에 진보적 인 근육 약점과 죽음을 일으키는 신경 퇴행성 질환입니다. 임상 증상은 체중 감소를 포함, 이상 지질 혈 증, 그리고 과대사; 그러나, 이러한 모터 뉴런 변성에 어떻게 관련 되어 불분명 남아. 세포질 내재, 운동 장애 및 수명 감소를 포함한 ALS의 여러 특징을 재구성하는 TDP-43 단백질 요법의 Drosophila 모델을 사용하여, 우리는 최근에 광범위한 신진 대사 적자를 확인했습니다. 이들 중, 글리코리시스는 조절되고 유전적 상호작용 실험이 보상 신경보호 메커니즘에 대한 증거를 제공하는 것으로 밝혀졌다. 실제로, 인산화루크토키나아제의 강화 규제에도 불구하고, 글리코리시스의 효소를 제한하는 속도, 식이 및 유전 적 조작을 이용한 글리코리시스의 증가는 TDP-43 단백질 요법의 비행 모델에서 운동 기능 장애 및 증가수명을 완화하는 것으로 나타났다. 모터 뉴런의 글리코리틱 플럭스에 대한 TDP-43 단백질 요법에 대한 효과를 더욱 조사하기 위해 이전에 보고된 유전자 인코딩, FRET 기반 센서, FLII12Pglu-700μδ6이 사용되었다. 이 센서는 FRET 쌍으로 세균성 포도당 감지 도메인및 시안 및 황형 광성 단백질로 구성됩니다. 포도당 결합시 센서는 FRET가 발생할 수 있도록 형성적 변화를 겪습니다. FLII12Pglu-700μδ6를 사용하여, 포도당 섭취량은 TDP-43G298S,ALS를 유발하는 변형을 발현하는 운동 뉴런에서 현저하게 증가하는 것으로 나타났다. 여기서, TDP-43 단백질요법의 맥락에서 포도당 센서 FLII12Pglu-700δ6을 발현하는 애벌레 복부 신경코드 제제에서 포도당 통풍구, ex vivo를측정하는 방법을 보여 준다. 이 접근법은 포도당 섭취량을 측정하고 다른 세포 유형또는 ALS 및 관련 신경 퇴행성 질환을 일으키는 다양한 돌연변이의 맥락에서 글리코리틱 플럭스를 평가하는 데 사용할 수 있습니다.

Introduction

근위축성 측삭 경화증 (ALS)은 현재 불치의 진보적 인 신경 퇴행성 질환입니다. ALS는 진단1의2-5 년 안에 운동 조정, 돌이킬 수 없는 마비, 호흡 부전 및 최종 죽음의 손실로 이끌어 내는 상부 및 하부 운동 뉴런에 영향을 미칩니다. ALS는 체중 감소, 이상지질혈증 및 과대사와 같은 신진 대사 결함과 관련이 있습니다(2에서검토됨); 그러나, 그것은 어떻게 신진 대사에 이러한 변경 모터 뉴런 변성관련 불분명 남아. ALS 및 관련 신경퇴행성 질환에서 흔히 발생하는 분모는 TDP-43, RNA처리3,4,5의여러 단계에 관여하는 핵산 결합 단백질이다. TDP-43에 있는 돌연변이는 환자의 3%-5%에 영향을 미치지만, 야생 형 TDP-43 단백질은 ALS 케이스의 >97%에서 세포질 집계 에서 발견됩니다(6에서검토). 이 병리학은 세포질 포함, 운동 기능 장애 및 감소수명을포함하여 ALS의 여러 측면을 재구성하는 모터 뉴런에서 인간 야생형 또는 돌연변이 TDP-43 (G298S)의 과발현에 의해 드로소필라에서 모델링되었다7,8. 이러한 모델을 이용하여, 최근에는 TDP-43 단백질요법이 피루바테 수준및 인포스포프락토키나아제(PFK) mRNA, 글리코리시스9의속도 제한 효소의 상당한 증가를 야기한다고 보고되었다. PFK 성적증명서의 유사한 증가는 환자 유래 운동 뉴런과 척수에서 발견되었으며, 이는 당해가 TDP-43 단백질 요법의 맥락에서 강화된다는 것을 시사한다. 흥미롭게도, 식이 및 유전 조작을 이용한 글리코리시스의 추가 증가는 운동 신경을 퇴행성화하는 보상, 신경 보호 메커니즘과 일치하여 TDP-43 단백질 요법의 플라이 모델에서 운동 기능 장애 및 증가수명과 같은 여러 ALS 표현형을 완화시켰습니다.

TDP-43 단백병증의 드로소필라 모델에서 글리코리시스의 변화를 더욱 조사하고 포도당 섭취를 측정하기 위해 이전에 보고된 유전자 인코딩 된 FRET 계 센서 FLII12Pglu-700μδ610은 UAS-GAL4 발현 시스템을 사용하여 모터 뉴런으로 발현되었다. FLII12Pglu-700μδ6 포도당 센서는 녹색 형광 단백질, 시안 및 황형 단백질(CFP 및 YFP)의 두 가지 변이체 간의 공명 에너지 전달을 사용하여 세포 수준에서 포도당을 검출합니다. 분자의 반대쪽 끝에 CFP 및 YFP에 융합된 대장균 MglB 유전자로부터 세균성 포도당 결합 도메인으로 구성된다. 포도당 분자에 바인딩될 때, 센서는 CFP와 YFP를 더 가깝게 가져오고 FRET가 생기도록 허용하는 형성 변화를 겪으며, 이는 세포내 포도당 수준10,11,12(도 1)를정량화하는 데 사용될 수 있다. 여기서, 우리는 FLII12Pglu-700μδ6 센서가 모터 뉴런에서 TDP-43 단백질 요법에 의한 포도당 섭취의 변화를 결정하는 데 어떻게 사용될 수 있는지 를 보여줍니다. 여기에 설명된 실험은 운동 뉴런에서 ALS 관련 돌연변이, TDP-43G298S의과발현이 대조군에 비해 포도당 섭취량이 현저하게 증가한다는 것을 보여준다. 이 접근법은 다른 유형의 ALS(예를 들어, SOD1, C9orf72 등) 및/또는 다른 세포 유형(예: 신경변성과 관련된 포도당 섭취의 변화를 결정하기 위해 사용될 수 있다).

Protocol

UAS FLII12Pglu-700μδ6 형질식 파리는 볼켄호프 외10에서 보고되었으며 S. Schirmeier 박사가 친절하게 제공했습니다. UAS TDP-43G298S 형질전환라인은 T. 이왓츠보13박사가 친절하게 제공했습니다. UAS FLII12Pglu-700μmδ6 및 UAS TDP-43 전염을 모두 수용하는 재조합 드로소필라 라인은 표준 유전적 접근법을 사용하여 자르네스쿠 실험실에서 생성되어 만조 외<sup class=…

Representative Results

복부 신경 코드 (VNC), 전 생체 에서 포도당 센서의 이미지 수집TDP-43에 근거를 둔 ALS의 Drosophila 모형에 있는 포도당 섭취에 있는 다름을 결정하기 위하여, 유전으로 인코딩된 FRET 기지를 둔 포도당 센서를 이용했습니다. 센서는 대장균 MglB 유전자로부터 포도당 결합 도메인에 융합된 CFP 및 YFP를 구성했다. 포도당 결합은 CFP와 YFP <sup class="xref"…

Discussion

여기서 상세히 기술된 기술은 FLII12Pglu-700δ6, 밀리몰라 범위10,11,12로포도당 수준의 변화를 검출할 수 있는 FRET 기반 센서를 사용하여 살아있는 드로소필라에 대한 특정 세포 유형의 포도당섭취를측정하도록 적용될 수 있다. 이 센서는 이전에 UAS-GAL4 시스템과 함께 뉴런9,10을포?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 드로소필라 균주를 제공 스테파니 쉬르마이어와 다케시 이왓스보 감사합니다. 우리는 또한 애리조나 대학의 말리 이미징 코어에서 이미징을 지원한 패트리샤 얀스마에게 감사드립니다. 이 작품은 건강 NIH NS091299의 국가 학회에 의해 투자되었다, NS115514 (DCZ에), HHMI 길리엄 펠로우십 (EM에) 및 학부 생물학 연구 프로그램 (HB에).

Materials

35 mm tissue culture dishes Sigma Aldrich CLS430165
40X water immersion lens Zeiss 440090 dippable, N.A. 0.8
dissection scissors Roboz RS-5618
Dumont #5 forceps VWR 100189-236
Dumont #55 forceps VWR 100189-244
Minutien pins Fine Science tools 26002-10 used for dissections
SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit Dow 1317318
Zeiss LSM880 NLO upright multiphoton/confocal microscope Zeiss N/A

References

  1. Ingre, C., Roos, P. M., Piehl, F., Kamel, F., Fang, F. Risk factors for amyotrophic lateral sclerosis. Clinical Epidemiology. 7, 181-193 (2015).
  2. Dupuis, L., Pradat, P. F., Ludolph, A. C., Loeffler, J. P. Energy metabolism in amyotrophic lateral sclerosis. The Lancet Neurology. 10 (1), 75-82 (2011).
  3. Buratti, E., Baralle, F. E. Characterization and functional implications of the RNA binding properties of nuclear factor TDP-43, a novel splicing regulator of CFTR exon 9. The Journal of Biological Chemistry. 276 (39), 36337-36343 (2001).
  4. Polymenidou, M., et al. Long pre-mRNA depletion and RNA missplicing contribute to neuronal vulnerability from loss of TDP-43. Nature Neuroscience. 14 (4), 459-468 (2011).
  5. Tollervey, J. R., et al. Characterizing the RNA targets and position-dependent splicing regulation by TDP-43. Nature Neuroscience. 14 (4), 452-458 (2011).
  6. Ling, S. C., Polymenidou, M., Cleveland, D. W. Converging mechanisms in ALS and FTD: disrupted RNA and protein homeostasis. Neuron. 79 (3), 416-438 (2013).
  7. Estes, P. S., et al. Wild-type and A315T mutant TDP-43 exert differential neurotoxicity in a Drosophila model of ALS. Human Molecular Genetics. 20 (12), 2308-2321 (2011).
  8. Estes, P. S., et al. Motor neurons and glia exhibit specific individualized responses to TDP-43 expression in a Drosophila model of amyotrophic lateral sclerosis. Disease Models & Mechanisms. 6 (3), 721-733 (2013).
  9. Manzo, E., et al. Glycolysis upregulation is neuroprotective as a compensatory mechanism in ALS. eLife. 8, 45114 (2019).
  10. Volkenhoff, A., Hirrlinger, J., Kappel, J. M., Klambt, C., Schirmeier, S. Live imaging using a FRET glucose sensor reveals glucose delivery to all cell types in the Drosophila brain. Journal of Insect Physiology. 106, 55-64 (2018).
  11. Fehr, M., Lalonde, S., Lager, I., Wolff, M. W., Frommer, W. B. In vivo imaging of the dynamics of glucose uptake in the cytosol of COS-7 cells by fluorescent nanosensors. The Journal of Biological Chemistry. 278 (21), 19127-19133 (2003).
  12. Takanaga, H., Chaudhuri, B., Frommer, W. B. GLUT1 and GLUT9 as major contributors to glucose influx in HepG2 cells identified by a high sensitivity intramolecular FRET glucose sensor. Biochimedica et Biophysica Acta. 1778 (4), 1091-1099 (2008).
  13. Ihara, R., et al. RNA binding mediates neurotoxicity in the transgenic Drosophila model of TDP-43 proteinopathy. Human Molecular Genetics. 22 (22), 4474-4484 (2013).
  14. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  15. Diaz-Garcia, C. M., et al. Quantitative in vivo imaging of neuronal glucose concentrations with a genetically encoded fluorescence lifetime sensor. Journal of Neuroscience Research. 97 (8), 946-960 (2019).
  16. Mergenthaler, P., Lindauer, U., Dienel, G. A., Meisel, A. Sugar for the brain: the role of glucose in physiological and pathological brain function. Trends in Neurosciences. 36 (10), 587-597 (2013).
  17. Lu, B., Vogel, H. Drosophila models of neurodegenerative diseases. Annual Review of Pathology. 4, 315-342 (2009).
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Citer Cet Article
Loganathan, S., Ball, H. E., Manzo, E., Zarnescu, D. C. Measuring Glucose Uptake in Drosophila Models of TDP-43 Proteinopathy. J. Vis. Exp. (174), e62936, doi:10.3791/62936 (2021).

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