Summary

Medição da captação de glicose em modelos de Drosophila de Proteinopatia TDP-43

Published: August 03, 2021
doi:

Summary

A absorção de glicose é aumentada em neurônios motores Drosophila afetados pela proteína de ligação de DNA TAR (TDP-43), como indicado por um sensor de glicose à base de FRET, geneticamente codificado.

Abstract

A esclerose lateral amiotrófica é uma doença neurodegenerativa que causa fraqueza muscular progressiva e morte dentro de 2-5 anos após o diagnóstico. As manifestações clínicas incluem perda de peso, dislipidemia e hipermetabolismo; no entanto, ainda não está claro como estes se relacionam com a degeneração do neurônio motor. Usando um modelo de Drosophila de proteinopatia TDP-43 que recapitula várias características da ELA, incluindo inclusões citoplasmáticas, disfunção locomotor e redução da vida útil, recentemente identificamos amplos déficits metabólicos. Entre elas, verificou-se que a glicólise era regulada e os experimentos de interação genética forneceram evidências para um mecanismo neuroprotetor compensatório. De fato, apesar da regulação da fosfofructokinase, a taxa que limita a enzima na glicólise, um aumento da glicólise usando manipulações dietéticas e genéticas foi mostrado para mitigar a disfunção locomotor e o aumento da vida útil em modelos de moscas da proteinopatia TDP-43. Para investigar melhor o efeito sobre a proteinopatia TDP-43 no fluxo glicóglitico em neurônios motores, foi utilizado um sensor geneticamente codificado geneticamente, baseado em FRET, FLII12Pglu-700μδ6. Este sensor é composto por um domínio bacteriano de sensoriamento de glicose e proteínas fluorescentes ciano e amarela como o par FRET. Após a ligação de glicose, o sensor sofre uma alteração conformacional permitindo que o FRET ocorra. Utilizando FLII12Pglu-700μδ6, a absorção de glicose foi significativamente aumentada em neurônios motores expressando TDP-43G298S, uma variante causadora de ELA. Aqui, mostramos como medir a absorção de glicose, ex vivo,nas preparações do cabo do nervo ventral larval expressando o sensor de glicose FLII12Pglu-700μδ6 no contexto da proteinopatia TDP-43. Essa abordagem pode ser usada para medir a absorção de glicose e avaliar o fluxo glicóltico em diferentes tipos de células ou no contexto de várias mutações que causam ELA e distúrbios neurodegenerativos relacionados.

Introduction

A Esclerose Lateral Amiotrófica (ELA) é uma doença neurodegenerativa progressiva que atualmente é incurável. A ELA afeta neurônios motores superiores e inferiores levando à perda da coordenação motora, paralisia irreversível, insuficiência respiratória e eventual morte dentro de 2-5 anos após o diagnóstico1. A ELA está associada a defeitos metabólicos como perda de peso, dislipidemia e hipermetabolismo (revisado em2); no entanto, ainda não está claro como essas alterações no metabolismo se relacionam com a degeneração do neurônio motor. Um denominador comum em ELA e doenças neurodegenerativas relacionadas é o TDP-43, uma proteína de ligação nucleica de ácido envolvida em várias etapas do processamento de RNA3,4,5. Embora as mutações no TDP-43 afetem apenas 3%-5% dos pacientes, a proteína TDP-43 de tipo selvagem é encontrada dentro de agregados citoplasmicos em >97% dos casos de ELA (revisados em6). Esta patologia foi modelada em Drosophila por superexpressão do tipo selvagem humano ou mutante TDP-43 (G298S) em neurônios motores, que recapitula múltiplos aspectos da ELA, incluindo inclusões citoplasmáticas, disfunção locomotora e redução da vida útil7,8. Usando esses modelos, foi recentemente relatado que a proteinopatia TDP-43 causa um aumento significativo nos níveis de piruvato e mRNA de fosfofructokinase (PFK), a enzima que limita a taxa da glicólise9. Aumentos semelhantes nas transcrições de PFK foram encontrados em neurônios motores derivados do paciente e medulas espinhais, sugerindo que a glicólise é regulada no contexto da proteinopatia TDP-43. Curiosamente, o aumento da glicolise usando manipulações dietéticas e genéticas mitigau vários fenótipos da ALS, como disfunção locomotor e aumento da vida útil em modelos de moscas de proteinopatia TDP-43, consistente com um mecanismo compensatório e neuroprotetor na degeneração de neurônios motores.

Para sondar ainda mais mudanças na glicólise e medir a absorção de glicose em modelos de Drosophila de proteinopatia TDP-43, um sensor baseado em FRET geneticamente codificado anteriormente FLII12Pglu-700μδ610 foi expresso em neurônios motores especificamente usando o sistema de expressão UAS-GAL4. O sensor de glicose FLII12Pglu-700μδ6 utiliza a transferência de energia de ressonância entre duas variantes de proteína fluorescente verde, ciano e proteínas fluorescentes amarelas (CFP e YFP) para detectar glicose no nível celular. Consiste em um domínio de ligação de glicose bacteriana do gene E. coli MglB fundido a CFP e YFP em extremidades opostas da molécula. Quando ligado a uma molécula de glicose, o sensor sofre uma alteração conformacional aproximando o PCP e o YFP e permitindo que o FRET ocorra, que pode ser usado para quantificar os níveis de glicose intracelulares10,11,12 (Figura 1). Aqui, mostramos como o sensor FLII12Pglu-700μδ6 pode ser usado para determinar alterações na absorção de glicose causadas pela proteinopatia TDP-43 em neurônios motores. Os experimentos descritos aqui mostram que a superexpressão de um mutante associado à ALS, TDP-43G298S,em neurônios motores causa um aumento significativo na absorção de glicose em comparação com os controles. Essa abordagem pode ser usada em outros tipos de ELA (por exemplo, SOD1, C9orf72, etc.) e/ou outros tipos de células (por exemplo, glia, músculos) para determinar alterações na absorção de glicose associadas à neurodegeneração.

Protocol

As moscas transgênicas UAS FLII12Pglu-700μδ6 foram relatadas em Volkenhoff et al.10 e gentilmente fornecidas pelo Dr. S. Schirmeier. As linhas transgênicas UAS TDP-43G298S foram gentilmente fornecidas pelo Dr. T. Iwatsubo13. As linhas recombinantes de Drosophila que abrigam tanto os transgênicos UAS FLII12Pglu-700μδ6 quanto uas TDP-43 foram gerados no laboratório Zarnescu utilizando abordagens genéticas padrão e relatados em Manzo et al.<sup cl…

Representative Results

Aquisição de imagem do sensor de glicose no fio do nervo ventral (VNC), ex vivoPara determinar diferenças na absorção de glicose em um modelo de Drosophila de ALS baseado no TDP-43, foi utilizado um sensor de glicose à base de FRET geneticamente codificado. O sensor era composto por CFP e YFP fundidos ao domínio de ligação de glicose do gene E. coli MglB. A ligação de glicose provoca uma alteração conformacional, que pode ser detectada por tr…

Discussion

A técnica descrita em detalhes aqui pode ser aplicada para medir a absorção de glicose em um tipo específico de interesse celular em Drosophila viva usando FLII12Pglu-700μδ6, um sensor baseado em FRET que pode detectar alterações nos níveis de glicose para uma faixa mililitro10,11,12. Este sensor foi usado anteriormente em conjunto com o sistema UAS-GAL4 para direcionar sua expressão para tipos celulares espec…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a Stefanie Schirmeier e Takeshi Iwatsubo por fornecerem cepas de Drosophila. Agradecemos também a Patricia Jansma por ajudar com a imagem no Marley Imaging Core na Universidade do Arizona. Este trabalho foi financiado pelos Institutos Nacionais de Saúde NIH NS091299, NS115514 (para DCZ), HHMI Gilliam Fellowship (para EM) e o Programa de Pesquisa em Biologia de Graduação (para HB).

Materials

35 mm tissue culture dishes Sigma Aldrich CLS430165
40X water immersion lens Zeiss 440090 dippable, N.A. 0.8
dissection scissors Roboz RS-5618
Dumont #5 forceps VWR 100189-236
Dumont #55 forceps VWR 100189-244
Minutien pins Fine Science tools 26002-10 used for dissections
SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit Dow 1317318
Zeiss LSM880 NLO upright multiphoton/confocal microscope Zeiss N/A

References

  1. Ingre, C., Roos, P. M., Piehl, F., Kamel, F., Fang, F. Risk factors for amyotrophic lateral sclerosis. Clinical Epidemiology. 7, 181-193 (2015).
  2. Dupuis, L., Pradat, P. F., Ludolph, A. C., Loeffler, J. P. Energy metabolism in amyotrophic lateral sclerosis. The Lancet Neurology. 10 (1), 75-82 (2011).
  3. Buratti, E., Baralle, F. E. Characterization and functional implications of the RNA binding properties of nuclear factor TDP-43, a novel splicing regulator of CFTR exon 9. The Journal of Biological Chemistry. 276 (39), 36337-36343 (2001).
  4. Polymenidou, M., et al. Long pre-mRNA depletion and RNA missplicing contribute to neuronal vulnerability from loss of TDP-43. Nature Neuroscience. 14 (4), 459-468 (2011).
  5. Tollervey, J. R., et al. Characterizing the RNA targets and position-dependent splicing regulation by TDP-43. Nature Neuroscience. 14 (4), 452-458 (2011).
  6. Ling, S. C., Polymenidou, M., Cleveland, D. W. Converging mechanisms in ALS and FTD: disrupted RNA and protein homeostasis. Neuron. 79 (3), 416-438 (2013).
  7. Estes, P. S., et al. Wild-type and A315T mutant TDP-43 exert differential neurotoxicity in a Drosophila model of ALS. Human Molecular Genetics. 20 (12), 2308-2321 (2011).
  8. Estes, P. S., et al. Motor neurons and glia exhibit specific individualized responses to TDP-43 expression in a Drosophila model of amyotrophic lateral sclerosis. Disease Models & Mechanisms. 6 (3), 721-733 (2013).
  9. Manzo, E., et al. Glycolysis upregulation is neuroprotective as a compensatory mechanism in ALS. eLife. 8, 45114 (2019).
  10. Volkenhoff, A., Hirrlinger, J., Kappel, J. M., Klambt, C., Schirmeier, S. Live imaging using a FRET glucose sensor reveals glucose delivery to all cell types in the Drosophila brain. Journal of Insect Physiology. 106, 55-64 (2018).
  11. Fehr, M., Lalonde, S., Lager, I., Wolff, M. W., Frommer, W. B. In vivo imaging of the dynamics of glucose uptake in the cytosol of COS-7 cells by fluorescent nanosensors. The Journal of Biological Chemistry. 278 (21), 19127-19133 (2003).
  12. Takanaga, H., Chaudhuri, B., Frommer, W. B. GLUT1 and GLUT9 as major contributors to glucose influx in HepG2 cells identified by a high sensitivity intramolecular FRET glucose sensor. Biochimedica et Biophysica Acta. 1778 (4), 1091-1099 (2008).
  13. Ihara, R., et al. RNA binding mediates neurotoxicity in the transgenic Drosophila model of TDP-43 proteinopathy. Human Molecular Genetics. 22 (22), 4474-4484 (2013).
  14. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  15. Diaz-Garcia, C. M., et al. Quantitative in vivo imaging of neuronal glucose concentrations with a genetically encoded fluorescence lifetime sensor. Journal of Neuroscience Research. 97 (8), 946-960 (2019).
  16. Mergenthaler, P., Lindauer, U., Dienel, G. A., Meisel, A. Sugar for the brain: the role of glucose in physiological and pathological brain function. Trends in Neurosciences. 36 (10), 587-597 (2013).
  17. Lu, B., Vogel, H. Drosophila models of neurodegenerative diseases. Annual Review of Pathology. 4, 315-342 (2009).
check_url/fr/62936?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Loganathan, S., Ball, H. E., Manzo, E., Zarnescu, D. C. Measuring Glucose Uptake in Drosophila Models of TDP-43 Proteinopathy. J. Vis. Exp. (174), e62936, doi:10.3791/62936 (2021).

View Video