Summary

Выделение пигментных эпителиальных клеток сетчатки из глаз морской свинки

Published: May 09, 2023
doi:

Summary

Описан простой и эффективный метод выделения клеток пигментного эпителия сетчатки (РПЭ) из глаз молодых пигментированных морских свинок. Эта процедура позволяет проводить последующие молекулярно-биологические исследования изолированного RPE, включая анализ экспрессии генов.

Abstract

Этот протокол описывает выделение клеток пигментного эпителия сетчатки (RPE) из глаз молодых пигментированных морских свинок для потенциального применения в исследованиях молекулярной биологии, включая анализ экспрессии генов. В контексте регуляции роста глаз и близорукости RPE, вероятно, играет роль клеточного реле для сигналов модуляции роста, поскольку он расположен между сетчаткой и двумя стенками глаза, такими как сосудистая оболочка и склера. Хотя протоколы изоляции RPE были разработаны как для цыплят, так и для мышей, оказалось, что эти протоколы не могут быть напрямую перенесены на морскую свинку, которая стала важной и широко используемой моделью близорукости млекопитающих. В этом исследовании инструменты молекулярной биологии использовались для изучения экспрессии специфических генов, чтобы подтвердить, что образцы не были загрязнены соседними тканями. Ценность этого протокола уже была продемонстрирована в исследовании RNA-Seq RPE молодых пигментированных морских свинок, подвергшихся оптическому расфокусированию, вызывающему близорукость. Помимо регуляции роста глаз, этот протокол имеет и другие потенциальные применения в исследованиях заболеваний сетчатки, включая миопическую макулопатию, одну из основных причин слепоты при миопах, в которую был вовлечен RPE. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он относительно прост и после совершенствования дает высококачественные образцы RPE, подходящие для исследований молекулярной биологии, включая анализ РНК.

Introduction

RPE содержит уникальный монослой пигментированных клеток, расположенных между нервной сетчаткой и сосудистой сосудистой сосудистой оболочкой, и RPE играет хорошо известную роль в развитии и поддержании нормальной функции сетчатки, включая фототрансдукцию 1,2. Совсем недавно РПЭ была отведена дополнительная ключевая роль в регуляции ростаглаз 3 и, таким образом, в развитии близорукости4. Это назначение основано на критическом расположении RPE, расположенном между сетчаткой и сосудистой оболочкой, и в настоящее время широко распространенном признании того, что рост глаз и, следовательно, аномалии рефракции регулируются локально5. Считается, что RPE играет ключевую роль в качестве сигнального реле, связывающего сетчатку, предполагаемый источник сигналов модуляции роста, с сосудистой оболочкой и склерой, двумя мишенями ретранслируемых сигналов 6,7,8.

Увеличение осевой длины, которое характеризует большинство близорукости, не может считаться доброкачественным, при этом патофизиологические изменения, затрагивающие сетчатку, сосудистую оболочку и/или склеру, представляют собой неизбежные и в настоящее время хорошо известные последствия чрезмерного удлинения глаза 7,9. В этом контексте RPE, пожалуй, наиболее уязвим, поскольку, будучи немитотической тканью, он способен приспосабливаться к расширяющейся стекловидной камере только за счет растяжения и истончения отдельных клеток. Хотя его роль в патологиях, связанных с близорукостью, таких как миопическая макулярная дегенерация, еще предстоит полностью понять, RPE был вовлечен в патогенез ряда других заболеваний сетчатки, включая географическую атрофию, одну из основных причин слепоты, которая связана с документально подтвержденными аномалиями сетчатки, RPE и сосудистой оболочки10,11, Статья 12.

Успешная изоляция клеток RPE, свободных от загрязнения из соседних тканей глаза, потенциально открывает множество исследовательских возможностей для получения нового понимания механизмов, лежащих в основе различных заболеваний глаз / сетчатки. Тем не менее, выделение РПЭ оказалось сложной задачей, и по этой причине во многих опубликованных исследованиях использовались комбинированные образцы сетчатки/РПЭ или РПЭ/сосудистой оболочки13,14,15. Исследования, связанные с успешным выделением RPE качества, подходящего для исследований молекулярной биологии, были ограничены глазами цыплят и мышей16,17. Например, метод одновременной изоляции RPE и стабилизации РНК (SRIRS), описанный Wang et al.18. Выделение клеток RPE у мышей, по-видимому, не очень хорошо работает в глазах морских свинок. Описанный здесь протокол представляет собой усовершенствование подхода, который был первоначально прототипирован с глазами землеройки одним из авторов (М.Ф.) и доказал, что дает высококачественные образцы RPE, подходящие для анализа РНК и других молекулярной биологии, из глаз молодых пигментированных морских свинок19.

Protocol

Весь уход за животными и лечение, используемые в этом исследовании, соответствовали Заявлению ARVO об использовании животных в офтальмологических и офтальмологических исследованиях. Экспериментальные протоколы были одобрены Комитетом по уходу за животными и их использованию Калифорн…

Representative Results

Анализ образцов RPE, собранных с использованием вышеуказанного протокола, показал хорошо сохранившуюся РНК (RIN >8.0, рис. 2B) с 240,2 нг ± 35,1 нг на глаз (n = 8, NanoDrop, рис. 2B). Для дальнейшей оценки качества выделенных образцов RPE, в частности, отсутствия контаминантов ?…

Discussion

В этой статье мы описываем метод выделения RPE, подходящий для анализа экспрессии генов RPE, из глаз молодых пигментированных морских свинок. Достоинства этого протокола заключаются в том, что он дает высококачественные образцы RPE, которые относительно свободны от загрязнения, с РНК, соот?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование поддержано стипендиями Японского общества содействия науке за рубежом (S.G.), докторантом Лориса и Дэвида Рича (S.G.) и грантом Национального глазного института Национальных институтов здравоохранения (R01EY012392; К.Ф.В.).

Materials

1 mL Syringe with Slip Tip Bd Vacutainer Labware Medical 22-253-260
2-Mercaptoethanol Invitrogen 21985-023
6 Well Tissue Culture Plate with Lid, Flat Bottom, Sterile pectrum Chemical Mfg. Corp 970-95008
12 Well Tissue Culture Plate with Lid, Individual, Sterile Thomas Scientific LLC 1198D72
Agilent 2100 Bioanalyzer automated electrophoresis to check RNA quality
Balanced Salt Solutions Gibco 10010031
Bonn Micro Forceps, Straight Smooth, 0.3 mm Tip, 7 cm Fine Science Tools, Inc. 11083-07
Dumont forceps no. 5 ROBOZ RS-5045
Hypodermic disposable needles Exelint International, Co. 26419
Hypodermic disposable needles Exelint International, Co. 26437
MiniSpin Microcentrifuges Eppendorf 540108 Max. Speed: 8,000 g
RNAlater Stabilization Solution Invitrogen AM7020 tissue storage reagent
RNeasy Mini kits Qiagen 74104 RNA isolation kit
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools, Inc. 91500-09

References

  1. Strauss, O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiological Reviews. 85 (3), 845-881 (2005).
  2. Amram, B., Cohen-Tayar, Y., David, A., Ashery-Padan, R. The retinal pigmented epithelium – from basic developmental biology research to translational approaches. The International Journal of Developmental Biology. 61 (3-4-5), 225-234 (2017).
  3. Goto, S., et al. Neural retina-specific Aldh1a1 controls dorsal choroidal vascular development via Sox9 expression in retinal pigment epithelial cells. Elife. 7, 32358 (2018).
  4. Rymer, J., Wildsoet, C. F. The role of the retinal pigment epithelium in eye growth regulation and myopia: A review. Visual Neuroscience. 22 (3), 251-261 (2005).
  5. Wallman, J., et al. Moving the retina: Choroidal modulation of refractive state. Vision Research. 35 (1), 37-50 (1995).
  6. Wu, H., et al. Scleral hypoxia is a target for myopia control. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (30), 7091-7100 (2018).
  7. Troilo, D., et al. Imi – Report on experimental models of emmetropization and myopia. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 60 (3), 31-88 (2019).
  8. Jiang, X., et al. Violet light suppresses lens-induced myopia via neuropsin (OPN5) in mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (22), e2018840118 (2021).
  9. Zhang, Y., Wildsoet, C. F. RPE and choroid mechanisms underlying ocular growth and myopia. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 134, 221-240 (2015).
  10. Jager, R. D., Mieler, W. F., Miller, J. W. Age-related macular degeneration. New England Journal of Medicine. 358 (24), 2606-2617 (2008).
  11. McLeod, D. S., et al. Relationship between RPE and choriocapillaris in age-related macular degeneration. Investigative Opthalmology and Visual Science. 50 (10), 4982 (2009).
  12. Bhutto, I., Lutty, G. Understanding age-related macular degeneration (AMD): Relationships between the photoreceptor/retinal pigment epithelium/Bruch’s membrane/choriocapillaris complex. Molecular Aspects of Medicine. 33 (4), 295-317 (2012).
  13. Shelton, L., et al. Microarray analysis of choroid/RPE gene expression in marmoset eyes undergoing changes in ocular growth and refraction. Molecular Vision. 14, 1465-1479 (2008).
  14. Wang, S., Liu, S., Mao, J., Wen, D. Effect of retinoic acid on the tight junctions of the retinal pigment epithelium-choroid complex of guinea pigs with lens-induced myopia in vivo. International Journal of Molecular Medicine. 33 (4), 825-832 (2014).
  15. He, L., Frost, M. R., Siegwart, J. T., Norton, T. T. Altered gene expression in tree shrew retina and retinal pigment epithelium produced by short periods of minus-lens wear. Experimental Eye Research. 168 (3), 77-88 (2018).
  16. Nickla, D. L., Wallman, J. The multifunctional choroid. Progress in Retinal and Eye Research. 29 (2), 144-168 (2010).
  17. Zhang, Y., Liu, Y., Wildsoet, C. F. Bidirectional, optical sign-dependent regulation of BMP2 gene expression in chick retinal pigment epithelium. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 53 (10), 6072-6080 (2012).
  18. Xin-Zhao Wang, C., Zhang, K., Aredo, B., Lu, H., Ufret-Vincenty, R. L. Novel method for the rapid isolation of RPE cells specifically for RNA extraction and analysis. Experimental Eye Research. 102 (1), 1-9 (2012).
  19. Goto, S., et al. Gene expression signatures of contact lens-induced myopia in guinea pig retinal pigment epithelium. Investigative Opthalmology and Visual Science. 63 (9), 25 (2022).
  20. De Schaepdrijver, L., Simoens, P., Lauwers, H., De Geest, J. P. Retinal vascular patterns in domestic animals. Research in Veterinary Science. 47 (1), 34-42 (1989).
  21. Araki, H., et al. Base-resolution methylome of retinal pigment epithelial cells used in the first trial of human induced pluripotent stem cell-based autologous transplantation. Stem Cell Reports. 13 (4), 761-774 (2019).
  22. Sonoda, S., et al. A protocol for the culture and differentiation of highly polarized human retinal pigment epithelial cells. Nature Protocols. 4 (5), 662-673 (2009).
  23. Fernandez-Godino, R., Garland, D. L., Pierce, E. A. Isolation, culture and characterization of primary mouse RPE cells. Nature Protocols. 11 (7), 1206-1218 (2016).
check_url/fr/64837?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Goto, S., Frost, M., Wildsoet, C. Isolation of Retinal Pigment Epithelial Cells from Guinea Pig Eyes. J. Vis. Exp. (195), e64837, doi:10.3791/64837 (2023).

View Video