Summary

물 샘플 및 조직에서 규조류 DNA 추출

Published: November 10, 2023
doi:

Summary

이 글에서는 수정된 일반 DNA 추출 키트를 사용한 규조류 DNA 추출 프로토콜에 대해 설명합니다.

Abstract

규조류 검사는 법의학 실무에서 시체가 물에 빠졌는지 여부를 결정하고 익사 위치를 추론하는 데 필수적인 보조 수단입니다. 규조류 검사는 환경과 플랑크톤 분야에서도 중요한 연구 내용입니다. 규조류 DNA를 주요 연구 대상으로 하는 규조류 분자 생물학 검사 기술은 규조류 검사의 새로운 방법입니다. 규조류 DNA 추출은 규조류 분자 검사의 기초입니다. 현재 규조류 DNA 추출에 일반적으로 사용되는 키트는 고가이므로 관련 연구 수행 비용이 증가합니다. 우리 연구실은 일반 전혈 유전체 DNA 신속 추출 키트를 개선하여 만족스러운 규조류 DNA 추출 효과를 얻어 관련 연구를 위한 글라스 비드 기반의 경제적이고 저렴한 대안 DNA 추출 솔루션을 제공합니다. 이 프로토콜을 사용하여 추출된 규조류 DNA는 PCR 및 염기서열분석과 같은 많은 다운스트림 응용 분야를 만족시킬 수 있습니다.

Introduction

법의학에서는 물속에서 발견된 시체가 익사했는지 아니면 사망 후 물에 던져졌는지를 판단하는 것이 사건의 적절한 해결을 위해 필수적이다1. 또한 법의학 실무에서 시급히 해결해야 할 어려운 문제 중 하나입니다2. 규조류는 자연 환경(특히 물)에 풍부합니다.3,4. 익사 과정에서 저산소증과 스트레스 반응으로 인해 사람들은 격렬한 호흡 움직임을 보이고 많은 양의 익사 액체를 흡입합니다. 따라서 물 속의 규조류는 익사액과 함께 폐로 들어가고 일부 규조류는 폐포-모세혈관 장벽을 통해 혈액 순환에 들어가 혈류와 함께 내부 장기로 퍼질 수 있습니다 5,6. 폐, 간, 골수와 같은 내부 조직과 장기에서 규조류가 검출되는 것은 사망 전 익사의 강력한 증거입니다 7,8. 현재 법의학 규조류 검사는 주로 형태학적 검사 방법을 기반으로 합니다. 조직의 일련의 사전 소화 후, 소화되지 않은 규조류의 형태학적 정성적 및 정량적 추정이 현미경 하에서 수행됩니다. 이 기간 동안 질산과 같은 위험하고 환경 친화적이지 않은 시약을 사용해야 합니다. 이 프로세스는 시간이 많이 걸리며 연구자는 확실한 분류학 전문 지식과 광범위한 경험을 필요로 합니다. 이 모든 것은 법의학 직원에게 특정 문제를 야기합니다9. 규조류 DNA 검사 기술은 최근 몇 년 동안 개발된 규조류 검사의 새로운 기술입니다 10,11,12. 이 기술은 규조류13,14의 특정 DNA 서열 조성을 분석하여 규조류의 종 식별을 실현합니다. PCR 기술과 시퀀싱 기술은 일반적으로 사용되는 기술적 방법이지만 그 기본은 규조류에서 DNA를 성공적으로 추출하는 것입니다. 그러나 규조류는 다른 유기체와 다른 특별한 구조를 가지고 있어 DNA 추출 기술도 다릅니다.

규조류의 세포벽은 규화도가 높으며 주성분은 이산화규소15,16,17입니다. 규산질 세포벽은 매우 단단하며 DNA를 추출하기 전에 파괴해야 합니다. 통상의 DNA 추출 키트는 규조류18의 규산질 껍질을 파괴할 수 없기 때문에 규조류 DNA의 추출에 직접 사용하기 어려운 경우가 많다. 따라서 규조류의 규산 껍질을 파괴하는 것은 규조류 DNA를 추출할 때 해결해야 할 주요 기술 문제 중 하나입니다.

동시에 법의학 연구 샘플에 포함된 규조류의 수는 물 샘플이든 익사한 시체의 장기 및 조직이든 종종 제한되어 있기 때문에 규조류를 농축할 필요가 있습니다. 농축의 본질은 물질의 분리입니다. 규조류를 함께 모으려고 할 때 다른 재료 구성 요소(간섭 구성 요소)의 함량을 최소화합니다. 법의학 작업에서, 실험실은 규조류 세포를 분리하기 위해 종종 원심분리 또는 막 여과 농축 방법을 사용한다19. 그러나 진공 펌핑 장비가 널리 사용되지 않기 때문에 멤브레인 농축 방법은 일반 1차 법의학 실험실에서 자주 사용되지 않습니다. 따라서, 원심분리 방법은 여전히 법의학 실험실(20)에서 규조류 농축이다.

규조류에서 DNA를 추출하는 것은 현재 법의학 분야에서 주로 사용되며 그 적용에는 상당한 한계가 있습니다. 현재 시중에 법의학에 사용되는 규조류 DNA 추출 키트는 거의 없으며 일반적으로 고가입니다21. 이 기사는 규조류 DNA 추출을 간단하고 편리하며 비용 효율적으로 만드는 개선된 규조류 DNA 추출 방법을 제공합니다. 이는 규조류의 후속 분자 생물학 테스트의 적용을 증가시키고 규조류 테스트를 통해 법의학에서 익사와 관련된 문제를 더 잘 해결할 수 있습니다. 이 방법은 유리 구슬을 첨가하고 소용돌이에 적절한 시간을 설정하여 규조류의 규산 세포벽을 파괴합니다. 이러한 방식으로 단백질 분해 효소 K와 결합 용액은 세포를 빠르게 용해시키고 세포 내의 다양한 효소를 비활성화합니다. 게놈 DNA는 흡착 컬럼의 매트릭스 막에 흡수되고 최종적으로 용출 완충액에 의해 용출됩니다. 이러한 개선된 전혈 유전자 추출 키트는 법의학 검사 재료에서 혈액 키트의 규조류 DNA 추출 효과를 향상시키고, 법의학 실무에서 규조류 DNA 추출 비용을 절감하며, 풀뿌리 법의학 연구에 더 잘 적용될 수 있습니다.

Protocol

이 연구는 하이난 의과 대학 윤리위원회의 승인을 받았습니다. 이 연구에 사용된 조직 샘플은 인간 피험자와 관련된 연구로 간주되지 않습니다. 이 표본은 법의학 병리학적 진단을 위해 얻었고 나머지는 이 실험에서 규조류 DNA 추출에 사용되었습니다. 연구자는 관련 이해 관계자로부터 정보에 입각한 동의를 얻기 위해 개인을 쉽게 식별할 수 없습니다. 참고: 이 실험에서 보?…

Representative Results

현재 사용되는 DNA 추출 방법에 의해 추출된 DNA 용액은 샘플의 다른 출처에서 추출된 모든 DNA 성분을 포함하기 때문에 이 프로토콜에 의해 얻어진 DNA도 예외는 아니었습니다. 따라서 DNA 용액은 규조류 게놈 DNA의 단순한 용액이 아니었습니다. 규조류 18S rDNA 단편을 특이적으로 증폭할 수 있는 프라이머는 문헌 22,23,24를 참조하여 선택하였다.<sup cla…

Discussion

규조류 세포는 단단한 규산질 세포벽(17)에 의해 보호되며, 규조류 DNA를 추출하기 위해서는 이 구조를 파괴해야 한다. 일반 키트는 규조류의 규산 껍질을 쉽게 파괴하지 않습니다. 따라서 규조류 DNA21을 성공적으로 추출하는 것은 어렵다. 우리 연구실은 규조류 추출 과정에서 직경과 질량비가 다른 유리 구슬을 추가하여 가장 일반적으로 사용되는 혈액 DNA 추출 ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 중국 국립 자연 과학 재단 (82060341,81560304)과 하이난성 학술 혁신 플랫폼 과학 연구 프로젝트 (YSPTZX202134)의 지원을 받았습니다.

Materials

Binding Buffer BioTeke B010006022 rapidly lysing cells
ChemoHS qPCR Mix Monad 00007547-120506 qPCR Mix
D2000 DNA ladder Real-Times(Beijing) Biotechnology RTM415 Measure the position of electrophoretic bands
D512 Taihe Biotechnology TW21109196 forword primer
D978 Taihe Biotechnology TW21109197 reverse primer
Elution buffer BioTeke B010006022 A low-salt elution buffer washes off the DNA
Glass bead Yingxu Chemical Machinery(Shanghai)  70181000 Special glass beads for dispersing and grinding
Import adsorption column BioTeke B2008006022 Adsorption column with silica matrix membrane
Inhibitor Removal Buffer BioTeke B010006022 Removal of Inhibitors in DNA Extraction
Isopropanol BioTeke B010006022 Precipitate or isolate DNA
MIX-30S Mini Mixer Miulab MUC881206 oscillatory action
Proteinase K BioTeke B010006022 Inactivation of intracellular nucleases and other proteins
Rotor-Gene Q 5plex HRM Qiagen R1116175 real-time fluorescence quantification PCR
Speed Micro-Centrifuge Scilogex 9013001121 centrifuge
Tanon 3500R Gel Imager Tanon 16T5553R-455 gel imaging
Taq Mix Pro Monad 00007808-140534 PCR Mix
Thermo Cycler Zhuhai Hema VRB020A ordinary PCR
Wash Buffer BioTeke B010006022 Remove impurities such as cell metabolites

References

  1. Liu, C., Cong, B. Review and prospect of diagnosis of drowning deaths in water. Fa Yi Xue Za Zhi. 38 (1), 3-13 (2022).
  2. Frisoni, P., et al. Forensic diagnosis of freshwater or saltwater drowning using the marker aquaporin 5: An immunohistochemical study. Medicina (Kaunas). 58 (10), 1458 (2022).
  3. Mann, D. G., Vanormelingen, P. An inordinate fondness? The number, distributions, and origins of diatom species. J Eukaryot Microbiol. 60 (4), 414-420 (2013).
  4. Pfister, L., et al. Terrestrial diatoms as tracers in catchment hydrology: a review. WIREs Water. 4, 1241 (2017).
  5. Yu, W., et al. An improved automated diatom detection method based on YOLOv5 framework and its preliminary study for taxonomy recognition in the forensic diatom test. Front Microbiol. 13, 963059 (2022).
  6. Zhang, P., et al. The length and width of diatoms in drowning cases as the evidence of diatoms penetrating the alveoli-capillary barrier. Int J Legal Med. 134 (3), 1037-1042 (2020).
  7. Kihara, Y., et al. Experimental water injection into lungs using an animal model: Verification of the diatom concentration test to diagnose drowning. Forensic Sci Int. 327, 110983 (2021).
  8. Shen, X., et al. Analysis of false-positive results of diatom test in the diagnosis of drowning-would not be an impediment. Int J Legal Med. 133 (6), 1819-1824 (2019).
  9. Manoylov, K. M. Taxonomic identification of algae (morphological and molecular): species concepts, methodologies, and their implications for ecological bioassessment. J Phycol. 50 (3), 409-424 (2014).
  10. Uchiyama, T., et al. A new molecular approach to help conclude drowning as a cause of death: simultaneous detection of eight bacterioplankton species using real-time PCR assays with TaqMan probes. Forensic Sci Int. 222 (1-3), 11-26 (2012).
  11. Kakizaki, E., et al. Detection of diverse aquatic microbes in blood and organs of drowning victims: first metagenomic approach using high-throughput 454-pyrosequencing. Forensic Sci Int. 220 (1-3), 135-146 (2012).
  12. Cai, J., Wang, B., Chen, J. H., Deng, J. Q. Application Progress of High-Throughput Sequencing Technology in Forensic Diatom Detection. Fa Yi Xue Za Zhi. 38 (1), 20-30 (2022).
  13. Xiao, C., et al. Development and application of a multiplex PCR system for drowning diagnosis. Electrophoresis. 42 (11), 1270-1278 (2021).
  14. Yarimizu, K., et al. Development of an absolute quantification method for ribosomal RNA gene copy numbers per eukaryotic single cell by digital PCR. Harmful Algae. 103, 102008 (2021).
  15. Dalgic, A. D., Atila, D., Karatas, A., Tezcaner, A., Keskin, D. Diatom shell incorporated PHBV/PCL-pullulan co-electrospun scaffold for bone tissue engineering. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 100, 735-746 (2019).
  16. Malviya, S., et al. Insights into global diatom distribution and diversity in the world’s ocean. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (11), 1516-1525 (2016).
  17. Brunner, E., et al. Analytical studies of silica biomineralization: towards an understanding of silica processing by diatoms. Appl Microbiol Biotechnol. 84 (4), 607-616 (2009).
  18. Annunziata, R., et al. An optimised method for intact nuclei isolation from diatoms. Sci Rep. 11 (1), 1681 (2021).
  19. Zhao, J., et al. The diagnostic value of quantitative assessment of diatom test for drowning: An analysis of 128 water-related death cases using microwave digestion-vacuum filtration-automated scanning electron microscopy. J Forensic Sci. 62 (6), 1638-1642 (2017).
  20. Zhao, J., Liu, C., Hu, S., He, S., Lu, S. Microwave digestion-vacuum filtration-automated scanning electron microscopy as a sensitive method for forensic diatom test. Int J Legal Med. 127 (2), 459-463 (2013).
  21. Cai, J., et al. Improved glass bead-vortex oscillation method for DNA extraction from diatom. Fa Yi Xue Za Zhi. 38 (1), 119-126 (2022).
  22. Zimmermann, J., Jahn, R., Gemeinholzer, B. Barcoding diatoms: evaluation of the V4 subregion on the 18S rRNA gene, including new primers and protocols. Org Divers Evol. 11 (3), 173-192 (2011).
  23. Vinayak, V. Chloroplast gene markers detect diatom DNA in a drowned mice establishing drowning as a cause of death. Electrophoresis. , (2020).
  24. Plante, C. J., Hill-Spanik, K., Cook, M., Graham, C. Environmental and Spatial Influences on Biogeography and Community Structure of Saltmarsh Benthic Diatoms. Estuaries and Coasts. 44, 147-161 (2021).
  25. Heid, C. A., Stevens, J., Livak, K. J., Williams, P. M. Real time quantitative PCR. Genome Res. 6 (10), 986-994 (1996).
  26. Ben Amor, F., et al. Development of a novel TaqMan qPCR assay for rapid detection and quantification of Gymnodinium catenatum for application to harmful algal bloom monitoring in coastal areas of Tunisia. Environ Sci Pollut Res Int. 29 (42), 63953-63963 (2022).
  27. Doddaraju, P., et al. Reliable and early diagnosis of bacterial blight in pomegranate caused by Xanthomonas axonopodis pv. punicae using sensitive PCR techniques. Sci Rep. 9 (1), 10097 (2019).
  28. Lunetta, P., Miettinen, A., Spilling, K., Sajantila, A. False-positive diatom test: a real challenge? A post-mortem study using standardized protocols. Leg Med (Tokyo). 15 (5), 229-234 (2013).
  29. Marquesda Silva, J., Cruz, S., Cartaxana, P. Inorganic carbon availability in benthic diatom communities: photosynthesis and migration. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 372 (1728), 20160398 (2017).
  30. Yu, Z., et al. The effect of enzyme digestion time on the detection of diatom species. Pak J Pharm Sci. 27 (3 Suppl), 691-694 (2014).
  31. Liu, M., et al. Diatom DNA barcodes for forensic discrimination of drowning incidents. FEMS Microbiol Lett. 367 (17), 145 (2020).
  32. Mizushima, W., et al. The novel heart-specific RING finger protein 207 is involved in energy metabolism in cardiomyocytes. J Mol Cell Cardiol. 100, 43-53 (2016).
  33. Zimmermann, J., et al. Taxonomic reference libraries for environmental barcoding: a best practice example from diatom research. PLoS One. 9 (9), 108793 (2014).
check_url/fr/65792?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhou, Y., Wang, B., Cai, J., Xu, Y., Qin, X., Ha, S., Cong, B., Chen, J., Deng, J. Extraction of Diatom DNA from Water Samples and Tissues. J. Vis. Exp. (201), e65792, doi:10.3791/65792 (2023).

View Video