Summary

İn Vitro Modelleme için Primer Domuz Retinal Pigment Epitel Hücrelerinin İzolasyonu

Published: May 03, 2024
doi:

Summary

Bu protokol, lokal kaynaklı domuz gözlerinden primer retinal pigment epitel (RPE) hücrelerinin elde edilmesi ve kültürlenmesi prosedürünü özetlemektedir. Bu hücreler, kök hücrelere yüksek kaliteli bir alternatif olarak hizmet eder ve in vitro retinal araştırmalar için uygundur.

Abstract

Retina pigment epiteli (RPE), dış retinada fotoreseptörleri desteklemekten sorumlu çok önemli bir tek tabakadır. RPE dejenerasyonu genellikle yaşa bağlı makula dejenerasyonu (AMD) gibi ilerleyici görme kaybıyla kendini gösteren hastalıklarda görülür. AMD üzerine yapılan araştırmalar genellikle RPE’yi temsil etmek için insan donör gözlerine veya indüklenmiş pluripotent kök hücrelere (iPSC’ler) dayanır. Bununla birlikte, bu RPE kaynakları, uzun farklılaşma süreleri ve kültürleme için önemli uzmanlık gerektirir. Ek olarak, bazı araştırma kurumları, özellikle kırsal alanlardakiler, donör gözlerine kolay erişimden yoksundur. Ticari olarak temin edilebilen ölümsüzleştirilmiş bir RPE hücre dizisi (ARPE-19) mevcut olsa da, temel in vivo RPE özelliklerinden yoksundur ve birçok oftalmoloji araştırma yayınında yaygın olarak kabul görmemektedir. Temsili primer RPE hücrelerini daha kolay bulunabilen ve uygun maliyetli bir kaynaktan elde etmek için acil bir ihtiyaç vardır. Bu protokol, domuz gözlerinden ölüm sonrası elde edilen ve yerel olarak ticari veya akademik tedarikçilerden temin edilebilen primer RPE hücrelerinin izolasyonunu ve alt kültürünü açıklar. Bu protokol, tipik olarak doku kültürü laboratuvarlarında bulunan ortak materyalleri gerektirir. Sonuç, iPSC’lere, insan donör gözlerine ve ARPE-19 hücrelerine birincil, farklılaştırılmış ve uygun maliyetli bir alternatiftir.

Introduction

Retina pigment epiteli (RPE), dış retinada Bruch zarı ile fotoreseptörlerarasında bulunan bir tek tabakadır 1. RPE hücreleri, zonula okcludens-1 (ZO-1) gibi proteinlerle sıkı bağlantılar oluşturur ve pigmentasyon ve altıgen morfoloji 2,3 ile karakterize edilen ayırt edici bir fenotipe sahiptir. Bu hücreler kan-retina bariyerine katkıda bulunur, böylece fotoreseptör sağlığını destekler ve retina homeostazını korur 4,5. Ek olarak, RPE hücreleri, ışığı emerek ve fotoreseptörler için gerekli bileşenleri geri dönüştürerek görmede kritik bir rol oynar6. Örneğin, RPE hücrelerinde yüksek oranda eksprese edilen bir protein olan RPE65, all-trans retinil esterleri 11-cis retinol 7,8’e dönüştürür. RPE hücreleri tarafından gerçekleştirilen çok sayıda işlev göz önüne alındığında, işlev bozuklukları yaşa bağlı makula dejenerasyonu ve diyabetik retinopati dahil olmak üzere çeşitli hastalıklarda rol oynar 9,10. Retina patolojilerinin daha iyi anlaşılmasını sağlamak ve yeni tedaviler geliştirmek için retinanın in vitro modelleri sıklıkla kullanılmaktadır.

Sağlıklı veya hastalıklı retinaların temsili modellerini oluşturmak için, mimetik bir RPE hücre tipi kullanmak zorunludur. Ticari olarak temin edilebilen ARPE-19 hücre hattı, pigmentasyon gibi doğal fenotiplerden yoksunken, iPSC’lerin 11,12,13’ü ayırt etmesi aylar alabilir. İnsan donör gözleri ideal olsa da, çoğu araştırma laboratuvarı için genellikle hazır değildir.

Burada, birincil RPE hücrelerini elde etmek için insan gözüyle14 birçok benzerliği paylaşan domuz gözlerini kullanmak için bir yöntem geliştirdik. Bu primer domuz RPE hücreleri, çoklu retinal modellerdekullanılmıştır 15,16. Bu hücreler sadece uygun maliyetli olmakla kalmaz, aynı zamanda iPSC’lerden veya donör gözlerinden daha az zaman gerektirirler. Ek olarak, pigmentasyon ve mikrovillus gibi doğal özellikler sergilerler. Domuz RPE ekstraksiyonu için benzer protokoller mevcut olsada 17,18,19, bu basit ve ayrıntılı teknik, enzimatik ayrışmayı daha da doğrular ve çoğu hücre kültürü laboratuvarında yaygın olarak bulunan malzemeleri kullanır.

Protocol

Bu prosedürde kullanılan gözler, USDA tarafından denetlenen yerel bir kasap dükkanından ölüm sonrası elde edilir ve canlı hayvanlar kullanılarak herhangi bir çalışma yapılmaz. Hayvanlar kurban edildikten sonra, gözler enükleasyona kadar yaklaşık 2 saat geçer. Doku çürümesi oluşmaya başlayabileceğinden, daha fazla çürümeyi önlemek için taşıma sırasında gözleri serin tutmak önemlidir. Bu prosedürde, enükleasyondan sonra gözler hemen bir buzdolabına yerleştirilir. Daha sonra, göz t…

Representative Results

Bu prosedür kullanılarak, primer RPE hücreleri domuz gözlerinden başarılı bir şekilde izole edildi. Şekil 1A , karakteristik pigmentasyon ile izolasyondan 3 gün sonra RPE hücrelerini göstermektedir. 1 haftalık büyümeden sonra, hücreler tamamen birleşti ve sağlıklı bir tek tabaka oluşturdu (Şekil 1B). Hücreler daha sonra pigmentasyonlarını ve morfolojilerini korudukları hücre kültürü eklerine aktarıldı (Şekil …

Discussion

Bu protokol, RPE hücrelerinin domuz gözlerinden nasıl izole edileceğini açıklar. İzolasyondan sonraki 7 gün içinde pigmentasyon ve parke taşı morfolojisi görülür (Şekil 1B). Ayrıca, TEER verileri sıkı bağlantı oluşumunu22 ve sağlıklı bir tek tabakayı göstermektedir (Şekil 5). Bu sonuçlar, bu yöntemle izole edilen RPE hücrelerinin insan RPE’sine benzer olduğunu ve retina hücre kültürü modellerinde faydal?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, domuz RPE hücre kültürü ve izolasyonu ile ilgili yardımları için Farhad Farjood’a ve SEM ile ilgili yardımları için Thomas Harris’e teşekkür eder. Yazarlar, SEM analizi için Utah Eyalet Üniversitesi’ndeki Mikroskopi Çekirdek Tesisi’nin desteğini kabul ediyor. Tesis, Ulusal Bilim Vakfı Büyük Araştırma Enstrümantasyon Hibesi (CMMI-1337932) aracılığıyla edinilen bir taramalı elektron mikroskobuna sahiptir. Bu çalışmanın finansmanı, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından Hibe 1R15EY028732 (Vargis) ve BrightFocus Vakfı Hibe M2019109 (Vargis) aracılığıyla sağlanmıştır. Ek finansman, Utah Eyalet Üniversitesi Araştırma Ofisi’nden bir Lisans Araştırma ve Yaratıcı Fırsatlar Hibesi (Weatherston) ve Utah Eyalet Üniversitesi Alzheimer Hastalığı ve Demans Araştırma Merkezi’nden bir tohum hibesi (Vargis) tarafından sağlandı.

Materials

6 Micro-well glass bottom plate with 14 mm micro-well #1 cover glass Cellvis P06-14-1-N
Antibiotic-Antimycotic (100x) Gibco 15240062
Biosafety Cabinet
Calcium Chloride, Dried, Powder, 97% Alfa Aesar L13191.30
Cell Strainer Fisher Scientific  22-363-548 one per eye
Centrifuge
Centrifuge Tubes, 15 mL Fisher Scientific  05-539-12
Cooler, 8 L Igloo 32529
Corning Transwell Multiple Well Plate with Permeable Polyester Membrane Inserts Fisher Scientific  07-200-154 Culture inserts
Cut Resistant Glove Dowellife 712971375857
Cytiva HyClone Dulbecco's Phosphate Buffered Saline, Solution Fisher Scientific  SH3026401 for ICC dilutions only 
Deionized Water
DMEM, 1x with 4.5 g/L glucose, L-glutamine & sodium pyruvate Corning 10-013-CV
DNase I from Bovine Pancreas Sigma Aldrich DN25
DPBS/Modified – calcium – magnesium Cytiva SH3002B.02 stored at 4 °C
ELISA kit, Q-Plex Human Angiogenesis (9-Plex)  Quansys Biosciences, Logan, UT
ENDOHM 6 TEER device World Precision Instruments
Fetal Bovine Serum (FBS) Avantor 232B20
Fisher BioReagents Bovine Serum Albumin (BSA) DNase- and Protease-free Powder Fisher Scientific  BP9706100
Flashlight
Formaldehyde, ACS Grade, 36.5% (w/w) to 38.0% (w/w), LabChem Fisher Scientific  LC146501
Gauze Sponges Fisher Scientific  22-415-504 One per eye
Goat anti-Mouse IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor Plus 647, Invitrogen Thermo Scientific A32728 RPE65 secondary antibody
Ice  Crushed prefered
Inverted Phase Contrast Microscope
Invitrogen NucBlue Live ReadyProbes Reagent (Hoechst 33342) Fisher Scientific  R37605
Iris Fine Tip Scissors, Standard Grade, Curved, 4.5" Cole-Palmer EW-10818-05
Iris Scissors, 11 cm, Straight, Tungsten Carbide Fisher Scientific  50-822-379
LSM-710 Confocal Microscope Zeiss
Petri Dish, 100 mm x 20 mm  Corning 430167 one per 2-3 eyes and one for dissection surface/waste 
Povidone-Iondine Solution, 10% Equate 49035-050-34
RPE65 Monoclonal Antibody (401.8B11.3D9), Invitrogen Thermo Scientific MA116578 RPE65 primary antibody
Scalpel Blades Size 10 Fisher Scientific  22-079-683
Scalpel Handles Style 3 Fisher Scientific  50-118-4164
Surgical Drape, 18 x 26" Fisher Scientific  50-209-1792
Tissue Culture Incubator 37 °C, 5% CO2, 95% Humidity
Tissue Culture Plates, 6 Wells VWR 10062-892 One for eye wash and one for seeding 
Tri-Cornered Polypropylene Beaker, 1000 mL Fisher Scientific  14-955-111F
Triton X-100 Sigma Aldrich T8787
Trypsin 0.25%, 2.21 mM EDTA in HBSS; w/o Ca, Mg, Sodium Bicarbonate Corning 25053Cl
Tweezers Style 20A Fisher Scientific  17-467-231
Tweezers Style 2A Fisher Scientific  50-238-47 for removing neural retina
Tweezers Style 5-SA-PI Fisher Scientific  17-467-168
Vacuum Aspiration System
Water Bath, 37 °C
ZO-1 Monoclonal Antibody (ZO1-1A12), FITC, Invitrogen Fisher Scientific  33-911-1 ZO-1 conjugated primary antibody

References

  1. Booij, J. C., Baas, D. C., Beisekeeva, J., Gorgels, T. G. M. F., Bergen, A. A. B. The dynamic nature of Bruch’s membrane. Progress in Retinal and Eye Research. 29 (1), 1-18 (2010).
  2. Caceres, P. S., Rodriguez-Boulan, E. Retinal pigment epithelium polarity in health and blinding diseases. Current Opinion in Cell Biology. 62, 37-45 (2020).
  3. Georgiadis, A., et al. The tight junction associated signalling proteins ZO-1 and ZONAB regulate retinal pigment epithelium homeostasis in mice. PLOS One. 5 (12), e15730 (2010).
  4. Sparrow, J. R., Hicks, D., Hamel, C. P. The retinal pigment epithelium in health and disease. Current Molecular Medicine. 10 (9), 802-823 (2010).
  5. Strauss, O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiological Reviews. 85 (3), 845-881 (2005).
  6. Yang, S., Zhou, J., Li, D. Functions and diseases of the retinal pigment epithelium. Frontiers in Pharmacology. 12, 727870 (2021).
  7. Moiseyev, G., Chen, Y., Takahashi, Y., Wu, B. X., Ma, J. RPE65 is the isomerohydrolase in the retinoid visual cycle. Proceedings of the National Academy of Sciences. 102 (35), 12413-12418 (2005).
  8. Uppal, S., Liu, T., Poliakov, E., Gentleman, S., Redmond, T. M. The dual roles of RPE65 S-palmitoylation in membrane association and visual cycle function. Scientific Reports. 9 (1), 5218 (2019).
  9. Somasundaran, S., Constable, I. J., Mellough, C. B., Carvalho, L. S. Retinal pigment epithelium and age-related macular degeneration: A review of major disease mechanisms. Clinical & Experimental Ophthalmology. 48 (8), 1043-1056 (2020).
  10. Xu, H. Z., Song, Z., Fu, S., Zhu, M., Le, Y. Z. RPE barrier breakdown in diabetic retinopathy: seeing is believing. Journal of Ocular Biology, Diseases, and Informatics. 4 (1-2), 83-92 (2011).
  11. Hellinen, L., et al. Characterization of artificially re-pigmented ARPE-19 retinal pigment epithelial cell model. Scientific Reports. 9 (1), 13761 (2019).
  12. Hazim, R. A., Volland, S., Yen, A., Burgess, B. L., Williams, D. S. Rapid differentiation of the human RPE cell line, ARPE-19, induced by nicotinamide. Experimental Eye Research. 179, 18-24 (2019).
  13. Samuel, W., et al. Appropriately differentiated ARPE-19 cells regain phenotype and gene expression profiles similar to those of native RPE cells. Molecular Vision. 23, 60-89 (2017).
  14. Middleton, S. Porcine ophthalmology. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 26 (3), 557-572 (2010).
  15. Farjood, F., Ahmadpour, A., Ostvar, S., Vargis, E. Acute mechanical stress in primary porcine RPE cells induces angiogenic factor expression and in vitro angiogenesis. Journal of Biological Engineering. 14, 13 (2020).
  16. Fietz, A., Hurst, J., Joachim, S. C., Schnichels, S. Establishment of a primary porcine retinal pigment epithelium monolayer to complement retinal ex vivo cultures. STAR Protocols. 4 (3), 102443 (2023).
  17. Hood, E. M. S., Curcio, C. A., Lipinski, D. Isolation, culture, and cryosectioning of primary porcine retinal pigment epithelium on transwell cell culture inserts. STAR Protocols. 3 (4), 101758 (2022).
  18. Toops, K. A., Tan, L. X., Lakkaraju, A. A detailed three-step protocol for live imaging of intracellular traffic in polarized primary porcine RPE monolayers. Experimental Eye Research. 124, 74-85 (2014).
  19. Rickabaugh, E., Weatherston, D., Harris, T. I., Jones, J. A., Vargis, E. Engineering a biomimetic in vitro model of bruch’s membrane using hagfish slime intermediate filament proteins. ACS Biomaterials Science & Engineering. 9 (8), 5051-5061 (2023).
  20. Harris, T. I., et al. Utilizing recombinant spider silk proteins to develop a synthetic bruch’s membrane for modeling the retinal pigment epithelium. ACS Biomaterials Science & Engineering. 5 (8), 4023-4036 (2019).
  21. Zou, X. L., et al. Protection of tight junction between RPE cells with tissue factor targeting peptide. International Journal of Ophthalmology. 11 (10), 1594-1599 (2018).
check_url/fr/66079?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Paterson, C. A., Weatherston, D., Teeples, T., Vargis, E. Isolation of Primary Porcine Retinal Pigment Epithelial Cells for In Vitro Modeling. J. Vis. Exp. (207), e66079, doi:10.3791/66079 (2024).

View Video