Summary

In vitro en in vivo bioluminescente reportergen-beeldvorming van menselijke embryonale stamcellen

Published: May 02, 2008
doi:

Summary

Met de groeiende belangstelling voor stamceltherapieën, moleculaire imaging technieken zijn ideaal voor de bewaking stamceltransplantatie gedrag na transplantatie. Luciferase reporter genen hebben ingeschakeld non-invasieve, repetitieve evaluatie van de overleving van de cel, de locatie en de proliferatie in vivo. Deze video zal laten zien hoe je hESC proliferatie track in een levende muis.

Abstract

De ontdekking van menselijke embryonale stamcellen (hESC 's) is dramatisch toegenomen de instrumenten die beschikbaar zijn medische wetenschappers die geïnteresseerd zijn in de regeneratieve geneeskunde. Echter, heeft directe injectie van hESC 's, en cellen onderscheiden van hESC' s, in levende organismen tot nu toe gehinderd door aanzienlijke celdood, teratoom vorming, en host afstoting. Het begrijpen van de in vivo hESC gedrag na de transplantatie zijn nieuwe vormen van beeldvormende technieken om de lengte te controleren hESC lokalisatie, proliferatie en levensvatbaarheid. Moleculaire beeldvorming heeft gegeven onderzoekers een high-throughput, goedkoop, en gevoelige betekent voor het bijhouden van in-vivo-celproliferatie over dagen, weken en zelfs maanden. Deze vooruitgang is aanzienlijk toegenomen het begrip van de spatio-temporele kinetiek van hESC aanslaan, proliferatie en teratoom-vorming in levende onderwerpen.

Een grote vooruitgang in de moleculaire beeldvorming is de uitbreiding van niet-invasieve reportergen assays uit de moleculaire en cellulaire biologie in de in vivo multi-modaliteit beeldvorming platforms. Deze reporter genen, onder controle van technisch promotors en enhancers die gebruik maken van transcriptionele de gastheercel s machines, worden ingevoerd in cellen met behulp van een verscheidenheid van vector-en niet-vector methoden. Eenmaal in de cel, kan reporter genen ofwel constitutief of alleen worden overgeschreven onder specifieke biologische of cellulaire voorwaarden, afhankelijk van het type van de promoter wordt gebruikt. Transcriptie en vertaling van reporter genen in bioactieve eiwitten wordt vervolgens gedetecteerd met gevoelige, niet-invasieve instrumenten (bv., CCD-camera's) met behulp van signaal-genererende sondes, zoals D-luciferine.

Om te voorkomen dat de noodzaak voor prikkelende lichte tot stamcellen track in vivo als nodig is voor fluorescentie beeldvorming, bioluminescentie reportergen beeldvormende systemen vereisen slechts een exogeen toegediende sonde aan het licht emissie te veroorzaken. Vuurvlieg luciferase, afgeleid van de vuurvlieg Photinus pyralis, codeert voor een enzym dat D-luciferine katalyseert de optisch actieve metaboliet, oxyluciferine. Optische activiteit kan dan worden gecontroleerd met een externe CCD camera. Stabiel getransduceerde cellen die de reporter dragen bouwen in hun chromosomale DNA passeert de reporter DNA-construct op dochter cellen, waardoor longitudinale monitoring van hESC overleving en proliferatie in vivo. Bovendien, omdat de expressie van het reportergen product is nodig voor het signaal generatie zal enige levensvatbare ouder en dochter cellen te creëren bioluminescentie signaal; apoptotische of dode cellen niet.

In deze video, zal de specifieke materialen en methodes die nodig zijn voor het bijhouden van stamcel proliferatie en teratoom formatie met bioluminescentie beeldvorming worden beschreven.

Protocol

Bouw van Double Fusion Reporter Gene Met het oog op bioluminescentie beeldvorming van menselijke embryonale stamcellen uit te voeren, moet je eerst cellen die stabiel drukken een luciferase reportergen zoals vuurvlieg luciferase aangedreven door een constitutieve promoter zoals Ubiquitine of EF1a te verkrijgen. De focus van dit protocol is op de reporter-gen-toepassingen, zodat gedetailleerde procedures zijn hier niet voorzien. Echter, onze lab van de algemene strategie is het gebruik van een dubbele…

Discussion

In vergelijking met andere modaliteiten, zoals PET en MRI, bioluminescentie heeft een beperkte ruimtelijke resolutie en een verminderde penetratie als gevolg van de relatief zwakke energie van de uitgezonden fotonen (2-3 eV), om deze redenen is het tot nu toe niet van toepassing in grote dieren. Echter, bioluminescentie heeft het voordeel dat het low-cost, high-throughput, en niet-invasieve, waardoor het zeer wenselijk dat in vivo stamcellen volgen in kleine dieren. Niet-bioluminescentie reporter genen zoals PET en fluorescentie constructen…

Acknowledgements

Met dank aan Tim Doyle, PhD en de Stanford Centrum voor in vivo beeldvorming voor hulp bij bioluminescentie beeldvorming. Mede dankzij Ngan Huang, PhD voor het delen van haar techniek op stamcellen co-injectie met matrix-oplossing. Tot slot dank aan Steve Vilt, Ph.D. voor hulp met de veterinaire verzorging van dieren.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM)   HyClone    
BD Matrigel™ Basement Membrane Matrix Growth factor reduced (optional: phenol-red free) BD Biosciences    
mTeSR1 Maintenance Medium for Human Embryonic Stem Cells   StemCell Technologies    
Phosphate Buffered Saline (PBS)        
D-Luciferin Firefly, potassium salt   Biosynth AG    
Collagenase IV solution       Dissolve 30 mg Collagenase Type IV in 30 mL DMEM-F12 media. Sterile filter and store at 4 degrees (Celsius).
Baked Pasteur pipets        
6-well tissue culture-treated plates   TPP 92006  

References

  1. Passier, R., et al. Increased cardiomyocyte differentiation from human embryonic stem cells in serum-free cultures. Stem Cells. 23, 772-780 (2003).
  2. Laflamme, M. A., et al. Cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells in pro-survival factors enhance function of infarcted rat hearts. Nature biotechnology. 25, 1015-1024 (2007).
  3. Baharvand, H., et al. Neural differentiation from human embryonic stem cells in a defined adherent culture conditi. Int J Dev Biol. 51, 371-378 (2007).
  4. Schulz, T. C., et al. Directed neuronal differentiation of human embryonic stem cells. BMC Neurosci. 4, (2007).
  5. Jiang, J. Generation of Insulin-producing Islet-like Clusters from Human Embryonic Stem Cells. Stem Cells. 17, 17 (2007).
  6. Swijnenburg, R. J., van der Bogt, K. E. A., Sheikh, A. Y., Cao, F., Wu, J. C. Clinical hurdles for the transplantation of cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells: role of molecular imaging. Current Opinion in Biotechnology. 18, 38-45 (2007).
  7. Herschman, H. R. Molecular imaging: looking at problems, seeing solutions. Science. 302, 605-608 (2003).
  8. Lippincott-Schwartz, J., Patterson, G. H. Development and use of fluorescent protein markers in living cells. Science. 300, 87-91 (2003).
  9. Contag, P. R., Olomu, I. N., Stevenson, D. K., Contag, C. H. Bioluminescent indicators in living mammals. Nature medicine. 4, 245-247 (1998).
  10. Bhaumik, S., Gambhir, S. S. Optical imaging of Renilla luciferase reporter gene expression in living mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99, 377-382 (2002).
  11. Tisi, L. C., et al. Development of a thermostable firefly luciferase. Analyica Chimica Acta. 457, 115-123 (2002).
  12. Ray, P., Tsien, R., Gambhir, S. S. Construction and validation of improved triple fusion reporter gene vectors for molecular imaging of living subjects. Cancer Res. 67, 3085-3093 (2007).
  13. Cao, F., et al. In vivo visualization of embryonic stem cell survival, proliferation, and migration after cardiac delivery. . Circulation. 113, 1005-1014 (2006).
  14. Cao, F., et al. Molecular Imaging of Embryonic Stem Cell Misbehavior and Suicide Gene Ablation. Cloning and Stem Cells. 9, 107-117 (2007).
  15. Ray, P., De, A., Min, J. J., Tsien, R. Y., Gambhir, S. S. Imaging tri-fusion multimodality reporter gene expression in living subjects. Cancer Res. 64, 1323-1330 (2004).
  16. Wu, J. C., et al. Proteomic analysis of reporter genes for molecular imaging of transplanted embryonic stem cells. Proteomics. 6, 6234-6249 (2006).
  17. Eiges, R., et al. Establishment of human embryonic stem cell-transfected clones carrying a marker for undifferentiated cells. Curr Biol. 11, 514-518 (2001).
  18. Mohr, J. C., de Pablo, J. J., Palecek, S. P. Electroporation of human embryonic stem cells: Small and macromolecule loading and DNA transfection. Biotechnol Prog. 22, 825-834 (2006).
  19. Siemen, H., et al. Nucleofection of human embryonic stem cells. Stem Cells Dev. 14, 378-383 (2005).
  20. Lakshmipathy, U., et al. Efficient transfection of embryonic and adult stem cells. Stem Cells. 22, 531-543 (2004).
  21. Ma, Y., Ramezani, A., Lewis, R., Hawley, R. G., Thomson, J. A. High-Level Sustained Transgene Expression in Human Embryonic Stem Cells Using Lentiviral Vectors. Stem Cells. 21, 111-117 (2003).
  22. Menendez, P., Wang, L., Chadwick, K., Li, L., Bhatia, M. Retroviral transduction of hematopoietic cells differentiated from human embryonic stem cell-derived CD45(neg)PFV hemogenic precursors. Molecular therapy. 10, 1109-1120 (2004).
  23. Thyagarajan, B., et al. Creation of engineered human embryonic stem cell lines using phiC31 integrase. Stem cells. 26, 119-126 (2008).
  24. Liew, C. -. G., Draper, J. S., Walsh, J., Moore, H., Andrews, P. W. . Transient and Stable Transgene Expression in Human Embryonic Stem Cell. , .

Play Video

Citer Cet Article
Wilson, K., Yu, J., Lee, A., Wu, J. C. In vitro and in vivo Bioluminescence Reporter Gene Imaging of Human Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (14), e740, doi:10.3791/740 (2008).

View Video