Summary

Isolering och odling av celler från Nefrogen Zonen av embryonala Mouse Kidney

Published: April 22, 2011
doi:

Summary

I denna rapport beskriver vi en metod för isolering och odling av stamceller nisch från embryonala musen njuren som kan användas för att studera signalvägar som reglerar stamceller / progenitorceller av utvecklingsländerna njure. Dessa odlade celler är mycket tillgänglig för små molekyler och rekombinant protein behandling och viktigare även för viral transduktion, som möjliggör en effektiv hantering av kandidat vägar.

Abstract

Embryonala utvecklingen i njuren har studerats både som en modell för epitelceller-mesenkymala interaktion i organogenesen och få förståelse för ursprunget av medfödd njursjukdom. På senare tid har möjligheten att styra naiva embryonala stamceller mot nefrogen öden varit utforskas i det framväxande området regenerativ medicin. Genetiska studier på mus har identifierat flera vägar som krävs för njure utveckling, och en global katalog över gentranskription i orgeln har nyligen skapats http://www.gudmap.org/ , vilket ger många kandidat regulatorer av viktiga utvecklings-funktioner. Organbildande av gnagare njuren kan studeras i orgel kultur, och många rapporter har använt denna metod för att analysera resultaten av antingen tillämpa kandidat proteiner eller knacka ner uttrycket av gener med hjälp av siRNA eller morpholinos. Dock är tillämpningen av orgeln kultur för studier av signalering som reglerar stamceller / stamceller differentiering kontra förnyelse i utvecklingsländerna njure begränsad odlade organ innehåller en kompakt extracellulärmatrix att begränsa spridningen av makromolekyler och partiklar virus. För att studera cellsignalering händelser som påverkar stammen / stamcellstransplantation nisch i njuren har vi utvecklat en primär cell system som fastställer nefrogen zonen eller stamcellstransplantation nisch av utvecklingsländerna njure ex vivo i isolering från epiteliala inducerare av differentiering. Använda begränsat enzymatisk spjälkning kan nefrogen zon celler selektivt befrias från att utveckla njurarna vid E17.5. Efter filtrering kan dessa celler odlas som en oregelbunden cellslager använda optimerade förhållanden. Markörgen analys visar att dessa kulturer innehåller en fördelning av celltyper kännetecknande för nefrogen zonen in vivo, och att de upprätthåller lämpliga uttryck markörgen under kultur perioden. Dessa celler är mycket tillgänglig för små molekyler och rekombinant protein behandling och viktigare även för viral transduktion, vilket avsevärt underlättar studier av kandidat stam / progenitorceller effekter cell regulator. Grundläggande cell biologiska parametrar såsom proliferation och celldöd samt förändringar i uttryck av molekylära markörer kännetecknar nephron stam / progenitorceller in vivo kan med fördel användas som experimentella resultat. Pågående arbete i vårt laboratorium med hjälp av denna roman primärcell teknik syftar till att avslöja grundläggande mekanismer som styr regleringen av självförnyelse kontra differentiering nefronet stam / progenitorceller.

Protocol

1. Förbereda Reagens för Njure Digestion 1,5 ml 0,25% kollagenas A (w / v) och 1% Pankreatin smälta (w / v) lösning kommer att behövas för utvinning av nefrogen zon celler (NZCs) från 8 E17.5 njurarna. Eftersom Pankreatin tar ca 2 timmar att lösa upp i rumstemperatur, nog smälta lösning för det största antalet embryon njurar förväntas göras före experimentet. Förbered smälta lösning genom att först lägga 25 mg kollagenas A till 10 ml Dulbecco är Fosfatbuffrad saltlösning (DPBS) i en tyd…

Discussion

I detta protokoll beskriver vi en metod för att isolera och odla celler från nefrogen zon av embryonala njure. Det är utvecklingen av en metod som ursprungligen publicerades som en del av en studie av effekterna av BMP7 behandling på cellerna i nefrogen zonen (Blank et al., 2009). I den första studien var en serie experiment för att karakterisera celltyperna representerade inom NZC befolkningen genomförts. Kortfattat, rening av NZCs från genetiska reportrar för kortikala stroma (Foxd1 + / lacZ…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av R01 DK078161 från NIDDK (LO), postdoktorstipendium från American Heart Association (AB), Wenner-Gren Stiftelserna av Sverige och Kungliga Fysiografiska Sällskapet, Lund, Sverige (UB). Ytterligare stöd kom från Maine Medical Center Research Institute core faciliteter för Histopatologi, bioinformatik och FACS (med stöd av 2P20RR18789-06) och MMCRI Djuranläggningen.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Watchmaker’s forceps #5   Roboz RS-4905 2 pairs required
Collagenase A   Roche 10 103 578 001 Wear mask
Porcine Pancreatin   Sigma P8096 Wear mask
DPBS w/ Ca, Mg   Lonza 17-513F With Mg & Ca
Fetal bovine serum (FBS)   BioWhittaker 14-901E  
HBSS   Gibco 14175  
KSFM   Gibco 10724-011 without added growth factors
L-Glutamine 200mM   Sigma G7513 Use @ 1% v/v
PenStrep 10,000 U penicillin / ml 10 mg streptomycin / ml   Sigma P4333 Use @ 1% v/v
Fibronectin   BD Biosciences 356008 Supplied as powder
24 well culture plate   Thermo Scientific 142485 Nunclon
DPBS w/o Mg & Ca   Lonza 17-512F  
5mL polystyrene tubes   BD Biosciences 352235  
DNase (1 U/μl)   Invitrogen 18068-015 4 μl per 1.5 ml
40 micron cell-strainer   BD Biosciences 352235 w/cap and tube
Paraformaldehyde   Sigma P6148 Use @ 4 % w/v
Triton X100   VWR VW3929-2 Use @ 0.3 % v/v
PBS   Sigma P3813 Supplied as powder
Donkey serum   Jackson ImmunoResearch 017-000-121 Use @ 5 % v/v
Rabbit anti-PAX2   Invitrogen 71-6000 Dilute 1:100
Rabbit anti-β-gal   MP Biomedicals 559762 Dilute 1:200
Oregon Green 488 phalloidin   Invitrogen O7466 Dilute 1:200
Donkey anti-rabbit Alexa Fluor 568   Invitrogen A10042 Dilute 1:200
DAPI   Invitrogen D1306 Dilute 1:5000
Vectashield   Vector Laboratories H-1000  
Glycerol   EMD GX0185-6 Mix 50 % with H2O
RNeasy Micro Kit   Qiagen 74004 Use “DNase on column” protocol
Transfer pipettes, 3ml   BD Falcon 357575  

Riferimenti

  1. Blank, U., Brown, A., Adams, D. C., Karolak, M. J., Oxburgh, L. BMP7 promotes proliferation of nephron progenitor cells via a JNK-dependent mechanism. Development. 136, 3557-3566 (2009).
  2. Brunskill, E. W., Aronow, B. J., Georgas, K., Rumballe, B., Valerius, M. T., Aronow, J., Kaimal, V., Jegga, A. G., Grimmond, S., McMahon, A. P. Atlas of gene expression in the developing kidney at microanatomic resolution. Developmental Cell. 15, 781-791 (2008).
  3. Godin, R. E., Takaesu, N. T., Robertson, E. J., Dudley, A. T. Regulation of BMP7 expression during kidney development. Development. 125, 3473-3482 (1998).
  4. Grobstein, C. Inductive epitheliomesenchymal interaction in cultured organ rudiments of the mouse. Science. 118, 52-55 (1953).
  5. Grobstein, C. Morphogenetic interaction between embryonic mouse tissues separated by a membrane filter. Nature. 172, 869-870 (1953).
  6. Hatini, V., Huh, S. O., Herzlinger, D., Soares, V. C., Lai, E. Essential role of stromal mesenchyme in kidney morphogenesis revealed by targeted disruption of Winged Helix transcription factor BF-2. Genes and Development. 10, 1467-1478 (1996).
  7. Oxburgh, L., Chu, G. C., Michael, S. K., Robertson, E. J. TGFb superfamily signals are required for morphogenesis of the kidney mesenchyme progenitor population. Development. 131, 4593-4605 (2004).
  8. Srinivas, S., Watanabe, T., Lin, C. S., William, C. M., Tanabe, Y., Jessell, T. M., Costantini, F. Cre reporter strains produced by targeted insertion of EYFP and ECFP into the ROSA26 locus. BMC Developmental Biology. 1, 4-4 (2001).
  9. Yu, J., Carroll, T. J., McMahon, A. P. Sonic hedgehog regulates proliferation and differentiation of mesenchymal cells in the mouse metanephric kidney. Development. 129, 5301-5312 (2002).

Play Video

Citazione di questo articolo
Brown, A. C., Blank, U., Adams, D. C., Karolak, M. J., Fetting, J. L., Hill, B. L., Oxburgh, L. Isolation and Culture of Cells from the Nephrogenic Zone of the Embryonic Mouse Kidney. J. Vis. Exp. (50), e2555, doi:10.3791/2555 (2011).

View Video