Summary

Нейробластов Анализ: Анализ для создания и обогащения нейронов клетки-предшественники из Дифференцируя нейронных потомков стволовых клеток методом проточной цитометрии

Published: April 22, 2012
doi:

Summary

Это видео демонстрирует протокол новый метод генерации и последующей очистки нейронных клеток-предшественников из возобновляемых источников нервные стволовые клетки (НСК) на основе их физических (размер и внутренней детализации) и флуоресцентные свойства с помощью технологии проточной цитометрии.

Abstract

Нервные стволовые клетки (НСК) могут быть выделены и расширен в больших масштабах, используя neurosphere анализа и дифференцированы на три основных типа клеток центральной нервной системы (ЦНС), а именно астроциты, олигодендроциты и нейроны. Эти характеристики делают нейронных стволовых и прогениторных клеток бесценный возобновляемый источник клеток для лабораторного исследования, такие как наркотики, Нейротоксикология и электрофизиологии, а также для мобильных заместительной терапии при многих неврологических заболеваний. На практике, однако, неоднородность НСК потомство, низкое производство нейронов и олигодендроцитов и астроцитов преобладание после дифференциации ограничить их клинического применения. Здесь мы описываем новую методологию для создания и последующей очистки незрелых нейронов с мышиным потомством НСК активировать с помощью флуоресцентной сортировки клеток (FACS) технологии. Используя эту методологию, обогащенного нейронные популяции клеток-предшественников может быть достигнут умомHout заметного астроцитов и добросовестных загрязнения НСК. Процедура включает в себя дифференциацию НСК потомство изолированы и расширен с E14 мыши ганглиозные возвышения использованием neurosphere анализа, с последующим выделением и обогащение незрелых нервных клеток в зависимости от их физических (размер и внутреннюю сложность) и флуоресцентные свойства с помощью технологии проточной цитометрии. В целом, это занимает 5-7 дней для получения нейросферы и 6-8 дней, чтобы дифференцировать НСК потомство и изоляции высокоочищенных незрелых нервных клеток.

Protocol

1. Основная настройка Прежде чем приступить к культуре клеток NeuroCult НСК базальной среды и NeuroCult НСК распространения добавки смешиваются в соотношении 9:1, соответственно, сделать полный среднего НСК. 37 ° С водяной бане используется для разогрева среды. Соответствующее ко…

Discussion

Возможность изолировать определенный нейронных клеточных популяций (например, нейроны, астроциты и олигодендроциты) может решить некоторые из препятствий, связанных с клиническим применением нервные стволовые клетки (НСК). Во-первых, она позволяет нам в полной мере характеризуют нач?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана финансирование от Фонда Overstreet.

Materials

Name of the reagent Tipo Company Catalogue number Comments
NeuroCult NSC Basal Medium Medium Stem Cell Technologies 05700  
NeuroCult NSC Proliferation Supplements Medium supplement Stem Cell Technologies 05701  
%0.05    trypsin-EDTA Reagent Gibco 25300-062  
Soybean trypsin inhibitor Reagent Sigma T6522  
Pen/Strep Reagent Gibco 15140-122  
*MEM Reagent Gibco 41500-018 HEM component
*HEPES Reagent Sigma H4034 HEM component
*Distilled water Reagent Gibco 15230-147  
Cell strainer Sieve BD Falcon 352340  
T25 flask Culture ware Nalge Nunc international 136196  
T80 flask Culture ware Nalge Nunc international 178905  
15 ml tubes Culture ware BD Falcon 352096  
50 ml tubes Culture ware BD Falcon 352070  
EGF Growth factor R&D 2028-EG  
b-FGF Growth factor R&D 3139-FB  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
Anti-PSA-NCAM-PE Antibody Miltenyi Biotec 130-093-274  
PE- Conjugated mouse IgG1 Isotype control antibody BD Pharminogen 556029  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
HrBMP-4 Growth factor R&D 314-BP-010  
Poly-L-Ornithine Reagent Sigma P4957  
Fetal Calf Serum Medium Supplement Gibco 10099-141  
GFAP Antibody DAKO Z0334  
B-III tubulin Antibody Promega G7121  

*To make HEM, mix 1 x 10 L packet of MEM and 160 ml of 1M HEPES and bring the volume to 8.75 L using distilled water. Set the final PH to 7.4 and store it at 4 °C.

Riferimenti

  1. Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (45), e2393 (2010).
  2. Azari, H., Sharififar, S., Rahman, M., Ansari, S., Reynolds, B. Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (47), e2457 (2011).
  3. Siebzehnrubl, F. A., Vedam-Mai, V., Azari, H., Reynolds, B. A., Deleyrolle, L. P. Isolation and Characterization of Adult Neural Stem Cells. Methods. Mol. Biol. 750, 61-77 (2011).
  4. Scheffler, B. Phenotypic and functional characterization of adult brain neuropoiesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 9353-9358 (2005).
  5. Azari, H. Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny. PLoS One. 6, e20941-e20941 (2011).
  6. Amariglio, N. Donor-Derived Brain Tumor Following Neural Stem Cell Transplantation in an Ataxia Telangiectasia Patient. Plos Medicine. 6, 221-231 (2009).
check_url/it/3712?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. The Neuroblast Assay: An Assay for the Generation and Enrichment of Neuronal Progenitor Cells from Differentiating Neural Stem Cell Progeny Using Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (62), e3712, doi:10.3791/3712 (2012).

View Video