Summary

一个微流控芯片单细胞的多功能化学分析

Published: October 15, 2013
doi:

Summary

在这篇文章中,我们提出了一个微流控芯片单细胞分析。它使细胞内的蛋白质,酶,辅因子,以及第二信使通过荧光测定法或免疫测定装置的量化。

Abstract

我们提出了一个微流体装置,使多个单体电池并联定量测定细胞内生物分子。为此目的,将细胞被动被困在一个微容器的中间。在激活时,控制层,所述细胞是从一个小的腔室周围的容积隔离。周围的体积然后可以在不影响分离的细胞进行交换。然而,在该腔室的短的开闭,在该腔室中的溶液可在几百毫秒取代。由于腔室的可逆性,可以将细胞暴露于不同溶液依次以高度可控的方式, 例如 ,用于温育,洗涤,最后,细胞裂解。该密封的微容器使裂解液的潴留,尽量减少和细胞裂解后,控制稀释。自体溶解和分析出现在同一位置,高灵敏度被保持,因为没有进一步ðilution分析物的损失或运输过程中发生。因此,微室的设计使之从单个细胞释放的细胞内分子(阿托摩尔,zeptomoles)非常小的拷贝数的可靠和可重复的分析。此外,许多微容器可以被布置成阵列格式,允许在一次许多细胞的分析,考虑到合适的光学仪器被用于监视。我们已经使用该平台的概念验证研究,分析细胞内蛋白质,酶,辅助因子和相对或绝对量化的方式第二信使。

Introduction

在过去的许多研究已经揭示了大量的细胞群1-3中的细胞-细胞间的差异,特别是信号处理4,或细胞内的生物分子如蛋白质5,6,代谢物,辅因子和7,8的量。这些非均匀性被认为是对细胞的适应和进化9极其重要,而且在癌症等疾病63-82的产生和治疗中发挥关键作用。因此,在单细胞水平的研究是在生物和药理研究兴趣高的,尤其是当这些研究揭示了不同的细胞反应与生物活性的化学物质,处理后。

近年来,许多分析平台已经开发了促进单个活细胞的分析或细胞含量的化学组成。而荧光激活细胞分选(FACS)是金圣andard对单个活细胞的非常高通量分析,该方法不能被用于细胞内或分泌化合物的定量。微流体平台的出现已经答应为定位,治疗和观察单个细胞的新的分析策略。微流控芯片中的一个里程碑达成与由地震和同事14,15实现灵活的PDMS阀门的整合。这些阀门是有用的,因为它们可以隔离区域上的芯片, 例如分开两种文化16。此外,它们特别适用于单细胞分析,因此有助于减少分析物的稀释问题。这种方法对单细胞分析的力量已经由汉森和他的同事,谁从几百单细胞在17平行分析的基因表达最近展示。

当靶向蛋白质和代谢物的分析是非常困难的,由于缺乏合适的一mplification方法中,大量不同的化合物存在,和它们的化学性质的变化。此外,大多数胞内生物分子预计将存在于几万种18的次序低的拷贝数,因此所用的分析方法必须具有高灵敏度。更强大的测定例如免疫测定和酶联免疫分析(ELISA)是很难集成到微流控装置,因为它们需要几个洗涤和温育步骤,以及表面固定。

由于这些挑战,这并不奇怪,只有几个例子被报道了,其中蛋白质或代谢物进行定量的单细胞水平。例如,关于荧光化合物的分泌的研究已有报道19,20。最近,用ELISA法的实施,提出了从细胞培养分泌(非荧光)蛋白(THP-1细胞)21和单(我的分析mmune)细胞10。靶向细胞内的蛋白质,Shi 等人开发了促进细胞内蛋白质的鉴定通过免疫测定11的装置的信令在肿瘤细胞途径的分析的微流体装置。然而,蛋白质的唯一的相对量进行了测定,并没有酶促扩增被用来增加对低丰度蛋白的信号。

最近,我们能够以单细胞俘获微型装置用荧光测定法8和免疫22( 图1)相结合。细胞是被动被困在微米级关卡结构,它允许供应和(快速)交换媒介和其他化学试剂无细胞的任何运动。围绕每个陷阱的环形阀使细胞的分离在一个非常小的量(以下简称“微室”)。该阀引入细胞裂解(低渗)缓冲,他后立即启动NCE防止细胞内分子或分泌的分子扩散而去。最重要的是,由于量(625 PL)的小尺寸,避免大量稀释的分子。此外,由于溶解和分析都在芯片的同一位置进行的,不存在损失,由于运输分析物。这里所描述的芯片设计包括8交替的行,7或8微容器的,共计60微容器。腔被致动以行,从而使交叉污染沿一条线被排除。

该平台可以与荧光测定法,以及免疫学测定法( 图1d)组合使用。对于后者,我们建立了协议的抗体,这是与芯片的生产和装配过程兼容的固定。因此,该平台开辟了道路敏感,可靠和可计量的测定在单细胞水平。到现在为止,我们已经使用该设备为i的分析ntracellular和分泌的酶(通过酶测定法相对定量),细胞内辅助因子,蛋白质和小分子(绝对定量通过终点测定法或ELISA)。在下文中,我们描述了由多层软光刻和抗体的形成图案的协议通过微接触印刷和表面化学的手段的手段芯片制造的过程。此外,芯片的使用和操作的一些例子给出。

Protocol

1。 SU-8制作大师准备两个主模具的通道(流体和控制,原理图及尺寸见图2)以下协议,但不同的掩模图案。该过程示于图3a。 开始通过10分钟在180℃下加热4英寸硅晶片装载于旋涂机脱水晶片,并使用下列协议旋涂SU-8 2015: 旋转晶片,在100 rpm离心20秒(开放旋涂机的盖子,分配后在该步骤中,盖上盖子分配的SU-8)。 旋转晶片,在500…

Representative Results

我们的平台能够分析存在于或由单个细胞产生的多种细胞内的以及所分泌的分子。在这里,我们想呈现不同的实例研究强调了各种可能的分析。我们将举一个例子,对于分泌的酶( 图5a),以及细胞内的酶( 图5b)和蛋白质( 图5c和d)所示 。更多的例子,如辅助因子或小分子,请参阅Eyer 等(2012)和Eyer 等人 (2013)。 <p class="jo…

Discussion

微流体技术开辟为单细胞分析的新的和引人入胜的可能性。特别是,可能性陷阱和微流控工具分别固定细胞已经允许在单细胞特性和响应系统的短期和长期的研究。此外,细胞在高频率的微滴,在微型芯片上所产生的封装性,使单个细胞分泌的研究,这不能用传统的流式细胞仪设备来执行。微滴的方法,但是,当有需要的分析协议孵化和洗涤步骤一定的局限性。本方法结合了细胞俘获和隔离的两?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

作者非常感谢汤姆罗宾逊的手稿,C.Bärtschi和H.奔驰的定制压力控制系统建设的校对。我们还要承认使用洁净室设施第一和光学显微镜中心(LMC),无论是在ETH苏黎世。这项工作是在第七框架计划(ERC开始格兰特,项目编号203428,nμLIPIDs)资助下,由默克雪兰诺公司和欧洲研究委员会(ERC)。

Materials

REAGENTS:
Name of the Reagent Company Catalogue Number Comments (optional)
SU-8 2015 MicroChem Corp. (Netwon, MA) n.a.
1H,1H,2H,2H-Perfluorodecyl-dimethylchloro-silane ABCR (Karlsruhe, Germany) AB103608
4-Methylumbelliferyl β-D-N,N′-diacetylchitobioside hydrate Sigma Aldrich M9763
Acetone Merck VWR (Darmstadt, Germany) 100014
Avidin AppliChem (Axon Lab AG) A-2568
AZ 1518 AZ Electronic Materials (Wiesbaden, Germany) n.a.
AZ 726 developer AZ Electronic Materials (Wiesbaden, Germany) n.a.
Bovine serum albumin Sigma Aldrich A-4503
Bovine serum albumin, biotin Sigma Aldrich A-8549
Cell dissociation buffer Invitrogen 13151-014
Hexamethyldisilazane (HDMS) Sigma Aldrich 40215
Hydrochloric acid Fluka 84422
Isopropanol Merck VWR (Darmstadt, Germany) 109634
Magnesium chloride hexahydrate Fluka 63068
MR developer 600 Microresist technology GmbH (Berlin, Germany) n.a.
PBS Invitrogen 10010-031
PLL-g-PEG grafted SuSoS, (Dübendorf, Switzerland) n.a.
PLL-g-PEG grafted biotin SuSoS, (Dübendorf, Switzerland) n.a.
Potassium chloride Fluka 60132
Protein G, biotin Sigma Fine Chemicals 41624
Silicon wafer Si-Mat (Kaufering, Germany) n.a.
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit (PDMS) Dow Corning 39100000
Tris(hydroxymethyl)-aminomethan Biorad 1610716
Tween 20 Biorad 1706531
EQUIPMENT:
Material Name Company Catalogue Number Comments (optional)
0.22 µm PES syringe filter TRP 99722
1/1.5 mm biopsy puncher Miltex, York PA 33-31AA/33-31A
Cell Trics filter 20 µm Partec 04-004-2325
Centrifuge Sigma 3-18K Kuehner n.a.
Hotplate HP 160 III BM Sawatec, Sax, Switzerland n.a.
MA-6 mask aligner Karl Suess n.a.
Multizoom AZ100M microscope Nikon Corporation n.a.
Photomask Microlitho, Essex, U.K. n.a
Plasma Cleaner PDC-32G Harrick n.a.
Spin coater Modell WS-400 BZ-6NPP/LITE Laurell n.a.
Spin Modules SM 180 BM Sawatec, Sax, Switzerland n.a.
Step profiler Dektak XT Advanced Bruker n.a.
Syringe pump neMESYS Cetoni n.a.

Riferimenti

  1. Walling, M. A., Shepard, J. R. E. Cellular heterogeneity and live cell arrays. Chem. Soc. Rev. 40 (7), 4049-4076 (2011).
  2. Schmid, A., Kortmann, H., Dittrich, P. S., Blank, L. M. Chemical and biological single cell analysis. Curr. Opin. Biotechnol. 20 (1), 12-20 (2010).
  3. Lecault, V., White, A. K., Singhal, A., Hansen, C. L. Microfluidic single cell analysis: from promise to practice. Curr. Opin. Chem. Biol. 16 (3-4), 381-390 (2012).
  4. Faley, S., Seale, K., et al. Microfluidic platform for real-time signaling analysis of multiple single T cells in parallel. Lab Chip. 8 (10), 1700-1712 (2008).
  5. Huang, B., Wu, H., et al. Counting low-copy number proteins in a single cell. Science. 315 (5808), 81-84 (2007).
  6. Di Carlo, D., Aghdam, N., Lee, L. P. Single-cell enzyme concentrations, kinetics, and inhibition analysis using high-density hydrodynamic cell isolation arrays. Anal. Chem. 78 (15), 4925-4930 (2006).
  7. Cecala, C., Rubakhin, S. S., Mitchell, J. W., Gillette, M. U., Sweedler, J. V. A hyphenated optical trap capillary electrophoresis laser induced native fluorescence system for single-cell chemical analysis. Analyst. 137 (13), 2965-2972 (2012).
  8. Eyer, K., Kuhn, P., Hanke, C., Dittrich, P. S. A microchamber array for single cell isolation and analysis of intracellular biomolecules. Lab Chip. 12 (4), 765-772 (2012).
  9. Agresti, J. J., Antipov, E., et al. Ultrahigh-throughput screening in drop-based microfluidics for directed evolution. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (9), 4004-4009 (2010).
  10. Ma, C., Fan, R., et al. A clinical microchip for evaluation of single immune cells reveals high functional heterogeneity in phenotypically similar T cells. Nat. Methods. 17 (6), 738-743 (2011).
  11. Shi, Q., Qin, L., et al. Single-cell proteomic chip for profiling intracellular signaling pathways in single tumor cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109 (2), 419-424 (2012).
  12. Powell, A. A., Talasaz, A. H., et al. Single cell profiling of circulating tumor cells: transcriptional heterogeneity and diversity from breast cancer cell lines. PLoS ONE. 7 (5), e33788 (2012).
  13. Martin-Belmonte, F., Perez-Moreno, M. Epithelial cell polarity, stem cells and cancer. Nature. 12 (1), 23-38 (2012).
  14. Unger, M. A., Chou, H. P., Thorsen, T., Scherer, A., Quake, S. R. Monolithic microfabricated valves and pumps by multilayer soft lithography. Science. 288 (5463), 113-116 (2000).
  15. Thorsen, T., Maerkl, S. J., Quake, S. R. Microfluidic large-scale integration. Science. 298 (5593), 580-584 (2002).
  16. Gao, Y., Majumdar, D., et al. A versatile valve-enabled microfluidic cell co-culture platform and demonstration of its applications to neurobiology and cancer biology. Biomed. Microdevices. 13 (3), 539-548 (2011).
  17. White, A. K., VanInsberghe, M., et al. High-throughput microfluidic single-cell RT-qPCR. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108 (34), 13999-14004 (2011).
  18. Schwanhäusser, B., Busse, D., et al. Global quantification of mammalian gene expression control. Nature. 473 (7437), 337-342 (2011).
  19. Kortmann, H., Kurth, F., Blank, L. M., Dittrich, P. S., Schmid, A. Towards real time analysis of protein secretion from single cells. Lab Chip. 9 (21), 3047-3049 (2009).
  20. Huang, Y., Cai, D., Chen, P. Micro- and Nanotechnologies for Study of Cell Secretion. Anal. Chem. 83 (12), 4393-4406 (2011).
  21. Huang, N. T., Chen, W., et al. An integrated microfluidic platform for in situ cellular cytokine secretion immunophenotyping. Lab Chip. 12 (20), 4093-4101 (2012).
  22. Eyer, K., Stratz, S., Kuhn, P., Küster, S. K., Dittrich, P. S. Implementing enzyme-linked immunosorbent assays on a microfluidic chip to quantify intracellular molecules in single cells. Anal. Chem. 85 (6), 3280-3287 .
  23. Aebi, U., Pollard, T. D. A glow discharge unit to render electron microscope grids and other surfaces hydrophilic. J. Electron Microsc. Tech. 7 (1), 29-33 (1987).
  24. Pandolfi, P. P., Sonati, F., Rivi, R., Mason, P., Grosveld, F., Luzzatto, L. Targeted disruption of the housekeeping gene encoding glucose 6-phosphate dehydrogenase (G6PD): G6PD is dispensable for pentose synthesis but essential for defense against oxidative stress. EMBO J. 14 (21), 5209-5215 (1995).
check_url/it/50618?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Eyer, K., Kuhn, P., Stratz, S., Dittrich, P. S. A Microfluidic Chip for the Versatile Chemical Analysis of Single Cells. J. Vis. Exp. (80), e50618, doi:10.3791/50618 (2013).

View Video