Summary

فحوصات قابلية للخلايا في الثقافة

Published: January 20, 2014
doi:

Summary

وغالبا ما يتم فحص المركبات العلاجية الأولى في المختبر مع المقايسات جدوى. عدد الخلايا أعمى من قبل المراقب الإنسان يمكن أن تكون حساسة للغاية للتغيرات صغيرة في عدد الخلايا ولكن لا تقييم وظيفة. المقايسات الجدوى المحوسبة، كما هو موضح هنا، يمكن تقييم كل من هيكل وظيفة بطريقة موضوعية.

Abstract

عدد الخلايا دليل على المجهر هي وسيلة لتقييم الجدوى الحساسة الخلوية ولكنها تستغرق وقتا طويلا، وبالتالي باهظة الثمن. المقايسات الجدوى محوسبة مكلفة من حيث المعدات ولكن يمكن أن يكون أسرع وأكثر موضوعية من عدد الخلايا اليدوي. ويصف هذا التقرير استخدام ثلاثة من هذه المقايسات جدوى. اثنين من هذه المقايسات والأشعة تحت الحمراء واحد هو الانارة. سواء المقايسات الأشعة تحت الحمراء تعتمد على تصوير أوديسي 16 بت. يستخدم فحص الأشعة تحت الحمراء واحدة وصمة عار DRAQ5 للنوى جنبا إلى جنب مع وصمة عار الياقوت لالعصارة الخلوية وتصور في القناة 700 نانومتر. الفحص بالأشعة تحت الحمراء الأخرى، والغربية في خلية، يستخدم الأجسام المضادة ضد البروتينات هيكل الخلية (α-تويولين أنيبيب أو بروتين يرتبط 2) وتصف لهم في القناة 800 نانومتر. فحص صلاحية الثالث هو فحص الانارة تستخدم عادة لاعبي التنس المحترفين، ولكن نحن نستخدم ربع حجم أوصت لانقاذ على التكاليف. هذه القياسات الخطية وكلها ترتبط مع عدد مLLS مطلي، ولكن تختلف في الحساسية. جميع المقايسات ثلاثة الالتفاف المجهر تستغرق وقتا طويلا وأخذ عينات من البئر كله، وبالتالي تقليل هامش الخطأ. أخيرا، كل من المقايسات يمكن بسهولة أن تكتمل في غضون يوم واحد من نهاية التجربة، والسماح أعداد أكبر من التجارب التي يتعين القيام بها ضمن أطر زمنية قصيرة. ومع ذلك، فإنها كلها تعتمد على افتراض أن الأرقام تظل الخلية بما يتناسب مع قوة الإشارة بعد العلاج، وهو افتراض أن في بعض الأحيان لم يتم، وخاصة بالنسبة للاعبي التنس المحترفين الخلوية. وعلاوة على ذلك، إذا كان زيادة أو نقصان الخلايا في الحجم بعد العلاج، وهذا قد يؤثر على قوة الإشارة دون التأثير على عدد الخلايا. نستنتج أن جميع المقايسات الجدوى، بما في ذلك التهم اليدوي، يعاني من عدد من المحاذير، ولكن هذا المقايسات الجدوى محوسبة تستحق الاستثمار الأولي. باستخدام جميع المقايسات الثلاثة معا تعطي رؤية شاملة للبنية الخلية ووظيفتها.

Introduction

فحص الجدوى الأكثر شيوعا في العلوم البيولوجية ينطوي على عدد الخلايا. ويتجلى ذلك من خلال إجراء تحليل للأعلى (أحدث) 200 المطبوعات التي ظهرت في مجلات مع أي من الكلمات الرئيسية "في المختبر" أو "ثقافة" على 2013/04/29 2013/04/30 و. من هذه المنشورات، 23.5٪ تستخدم فحوصات تعداد خلايا، بما في ذلك دليل التهم عدد الخلايا، عدد الخلايا الآلي التهم مع برامج التصوير، والتريبان الأزرق الاستبعاد. تم استخدام لايف / الميت في مقايسة 1٪ من هذه المنشورات. وكان الفحص للبقاء الأيض بنسبة 11٪ – عدد المنشورات باستخدام MTT ((4،5-dimethylthiazol-2-YL) بروميد -2،5-diphenyltetrazolium 3). ويبين هذا المسح من الأدب أيضا أن عدد المنشورات باستخدام فحوصات مثل الإنتقالي العسكري بالتزامن مع المقايسات عدد خلايا كان 3.5٪ فقط. على الرغم من الاتجاه لاستخدام واحد مقايسة جدوى في حد ذاته، وتقييم وظيفة الخلوية بالاشتراك مع عدد الخلايا يبدو الخيار الأفضل لتقييم ط الخلويةntegrity. عدد الخلايا في حد ذاتها ليست كافية لأن الخلايا المتبقية قد لا تكون وظيفية أو صحية على الرغم من أنها موجودة في البئر 1،2. على العكس، وتدابير وظيفية مثل ATP قد تزيد أو تنقص في غياب تغييرات موازية في عدد الخلايا. فك ربط قراءات الأيضية من عدد الخلايا يوحي بأن ATP والمقايسات MTT لا ينبغي أبدا أن تستخدم جدوى الفحص الوحيد. في هذا التقرير، وصفت ثلاثة فحوصات قابلية أن مسح كل الهياكل الخلوية وظيفة التمثيل الغذائي، للحصول على عرض أكثر شمولا من النزاهة الخلوية من أي فحص واحد في حد ذاته يمكن تحمله.

اثنين من المقايسات لدينا تتطلب تصوير بالأشعة تحت الحمراء الذي يقيس مضان في القنوات نانومتر 700 و 800. ضوضاء منخفضة في موجات الأشعة تحت الحمراء، مما يؤدي إلى ارتفاع إشارة إلى الضوضاء نسب 3. وتصوير أوديسي التي نستخدمها لديها مجموعة ديناميكية 4.5 سجل وبت عمق 16، translatinز 16 إلى 2 أو 65،536 ظلال من الأشعة تحت الحمراء. وهذا يمكن أن يتناقض التصوير اللون 8 بت، والتي توفر سوى 2 8 أو 256 ظلال من اللون لكل طول موجي. وبالتالي، والتصوير 16 بت لديه قرار الدقيقة. تجدر الإشارة إلى أن الصور بالأشعة تحت الحمراء الأصلي وغالبا ما pseudocolored الأخضر (800 نانومتر) والحمراء (700 نانومتر) في التقارير المنشورة للعرض. وتستخدم عادة أوديسي التصوير على حد سواء لالنشاف الغربية والغرب في خلية 4-7. في خلية الغرب على الخلايا الثابتة الفورمالديهايد استخدام الأجسام المضادة الأولية ضد أي بروتين من الفائدة وتسمية لهم بدوره مع الأجسام المضادة الثانوية الفلورية الأشعة تحت الحمراء. وتعرف هذه التقنية لتكون مفيدة بشكل خاص بالنسبة لنهايات الفسفرة 6. لدينا في الغرب في خلية، ونحن وصمة عار الخلايا ثابتة لهيكل الخلية البروتينات α-تويولين أنيبيب العصبية أو البروتين 2 (MAP2) المرتبطة في القناة 800 نانومتر. هذه البروتينات وفيرة بما فيه الكفاية لتحقق نسب عالية إشارة إلى الضوضاء. نحن أيضا لدينا لوحات وصمة عار في 700قناة نانومتر للنوى مع وصمة عار DRAQ5 والسيتوبلازم مع وصمة عار الياقوت. كل من البروتينات هيكل الخلية وDRAQ5 + البقع الياقوت بالتالي تعكس الهياكل الخلوية.

فحص صلاحية الثالث يقيس وظيفة التمثيل الغذائي ويسمى "خلية عيار جلو" في هذا الاختبار القائم على luciferase المراسل، والقيم التلألؤ في نسبة مباشرة إلى مستويات ATP. وتستخدم المقايسات ATP شيوعا لقياس خلايا قابلة للحياة 8-12. ومع ذلك، بما في ذلك كلمة "عيار" في اسم الاختبار هو نوعا من تسمية خاطئة لأن الناتج ATP لكل خلية يمكن أن تتغير بوصفها وظيفة من العلاجات السموم وبالتالي فهي ليست دائما في نسبة إلى الخلية رقم 8. كما يمكن أن تتأثر مستويات ATP عن طريق ايقاعات كل يوم 13 وقبل انقسام الخلية 14 و 15 تمايز الخلايا. ومع ذلك، فإن فحص ATP المبين هنا هو بسيطة لأداء ومفيدة لاعبي التنس المحترفين هو مقياس قوية من التمثيل الغذائي16-21 الجدوى، إن لم يكن الخلية رقم في حد ذاته. عن طريق هذا الاختبار لاستكمال الأشعة تحت الحمراء في سيل وبالتالي ينتج الغرب صورة أكثر شمولا من النزاهة الخلوية من أي فحص واحد فقط.

Protocol

ويتضح التخطيطي للبروتوكولات في الشكل 1. 1. خلية تصفيح خلايا لوحة في لوحات 96 بشكل جيد في مختلف الكثافات الطلاء (الشكل 2). لالشيكات الخطية على خط الخلية العصبية N2A، لوحة 2.5K، 5K، 10K، …

Representative Results

عامل معدل الحد في هذه التجارب هو تلطيخ الأشعة تحت الحمراء، وفحص ATP هو وجيزة نسبيا من حيث المدة. لفحوصات بالأشعة تحت الحمراء، ونحن نتوقع أن ثماني لوحات 96 بشكل جيد يمكن أن تكون ملطخة ومسحها ضوئيا في غضون يوم واحد بواسطة مذهلة دفعتين من أربع لوحات لكل منها (انظر الشكل…

Discussion

لقد وجدنا أن قوة الإشارة في جميع المقايسات بقاء ثلاثة هي الخطية والمترابطة مع كثافة الطلاء. ومع ذلك، ليس كل المقايسات حساسة بالتساوي على 2 أضعاف أو تغييرات 1.5 أضعاف في كثافة الطلاء. لخلايا N2A، والأشعة تحت الحمراء هي فحوصات أقل حساسية من فحص ATP، ولا سيما في أقل كثافة الط?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نحن نعترف جوليان Jaumotte لفكرة الادخار على كميات الكواشف في مقايسة ATP. نحن ممتنون للغاية للدعم الإداري رائعة مريم كاروسو، ديب ويلسون، وجاكي وفيرر إلى مدرسة MYLAN الصيدلة لتوفير الدعم المالي لهذه الدراسات. وذلك بفضل هي نتيجة لأمراض Hunkele مخيف مؤسسة وباركنسون واضطرابات الحركة مؤسسة على دعمها المالي من الدراسات العصبية الأولية أيضا.

Materials

Cell Titer Glo Promega G7572 Buy in 100 ml quantities and aliquot, instead of purchasing the more expensive 10 ml quantity. Reconstituted, unused reagents can be refrozen at -20 °C for at least 21 weeks
18% Formalin Thermo-Shandon 9990244 Buying this fixative avoids the weighing out of formaldehyde powders and boiling of the solution; exposure to vapors is thereby minimized
Sucrose Sigma-Aldrich S0389 It is not essential to add this to formaldehyde solutions but it improves the appearance of the fixed cells
Odyssey Block LI-COR 927-40003 This fish serum can be bought in bulk and frozen at -20 °C for long term use
Triton-X 100 Sigma-Aldrich 21568 We store a stock solution of 10% Triton-X 100 in sterile water at 4 °C
Sodium Phosphate Monobasic Fisher S468 One can also buy PBS tablets or 10x PBS solutions, but they are more expensive
Sodium Phosphate Dibasic Fisher S373 See above
Sodium Azide (250x) Ricca Chemical Company 7144.8-16 Do not buy the powder because sodium azide is very toxic. We store all our used antibodies in 1x sodium azide at 4 °C until they become contaminated with debris
Mouse anti-α-tubulin Sigma-Aldrich T5168 This antibody is expensive but can be greatly diluted and is highly specific
Mouse anti-MAP2 Sigma-Aldrich M9942 This antibody is expensive but is highly specific (a prerequisite for In-Cell Westerns)
800 nm Goat anti-mouse IgG LI-COR 926-32210 Other companies also sell infrared secondary antibodies. Be sure to purchase the highly cross-adsorbed antibodies and note that concentrations of IgGs may vary with the source
DRAQ5 Biostatus DR50200 This compound used to be sold by LI-COR at 1 mM
Sapphire LI-COR 928-40022
Luminometer PerkinElmer VICTOR3 1420 multilabel counter
Odyssey Imager LI-COR 9201-01
Shaker/Mixer Research Products International 248555

Riferimenti

  1. Leak, R. K., Liou, A. K., Zigmond, M. J. Effect of sublethal 6-hydroxydopamine on the response to subsequent oxidative stress in dopaminergic cells: evidence for preconditioning. J Neurochem. 99, 1151-1163 (2006).
  2. Ugarte, S. D., Lin, E., Klann, E., Zigmond, M. J., Perez, R. G. Effects of GDNF on 6-OHDA-induced death in a dopaminergic cell line: modulation by inhibitors of PI3 kinase. J. Neurosci. 73, 105-112 (2003).
  3. Patonay, G., Antoine, M. Near-infrared fluorogenic labels: new approach to an old problem. Anal. Chem. 63, (1991).
  4. Mullett, S. J., Hinkle, D. A. DJ-1 deficiency in astrocytes selectively enhances mitochondrial Complex I inhibitor-induced neurotoxicity. J. Neurochem. 117, 375-387 (2011).
  5. Egorina, E. M., Sovershaev, M. A., Osterud, B. In-cell Western assay: a new approach to visualize tissue factor in human monocytes. J. Thromb. Haemost. 4, 614-620 (2006).
  6. Aguilar, H. N., Zielnik, B., Tracey, C. N., Mitchell, B. F. Quantification of rapid Myosin regulatory light chain phosphorylation using high-throughput in-cell Western assays: comparison to Western immunoblots. PLoS One. 5, (2010).
  7. Jinwal, U. K., Dickey, C. A. Cell-based assays for regulators of tau biology. Methods Mol. Biol. 670, 93-108 (2011).
  8. Unnithan, A. S., Choi, H. J., Titler, A. M., Posimo, J. M., Leak, R. K. Rescue from a two hit, high-throughput model of neurodegeneration with N-acetyl cysteine. Neurochem. Int. 61, 356-368 (2012).
  9. Hoskins, C., Wang, L., Cheng, W. P., Cuschieri, A. Dilemmas in the reliable estimation of the in-vitro cell viability in magnetic nanoparticle engineering: which tests and what protocols? . Nanoscale Res. Lett.. 7, 10-1186 (2012).
  10. Essner, M. D., Javed, A., Eleazer, P. D. Effect of sodium hypochlorite on human pulp cells: an in vitro study. Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 112, 662-666 (2011).
  11. Sims, J. T., Plattner, R. MTT assays cannot be utilized to study the effects of STI571/Gleevec on the viability of solid tumor cell lines. Cancer Chemother. Pharmacol. 64, 629-633 (2009).
  12. Petty, R. D., Sutherland, L. A., Hunter, E. M., Cree, I. A. Comparison of MTT and ATP-based assays for the measurement of viable cell. J. Biolumin. Chemilumin. 10, 29-34 (1995).
  13. Womac, A. D., Burkeen, J. F., Neuendorff, N., Earnest, D. J., Zoran, M. J. Circadian rhythms of extracellular ATP accumulation in suprachiasmatic nucleus cells and cultured astrocytes. Eur. J. Neurosci. 30, 869-876 (2009).
  14. Ataullakhanov, F. I., Vitvitsky, V. M. What determines the intracellular ATP concentration. Biosci. Rep. 22, 501-511 (2002).
  15. Iglehart, J. D., Silver, D. P. Synthetic lethality–a new direction in cancer-drug development. New Engl. J. Med. 361, 189-191 (2009).
  16. Crouch, S. P., Kozlowski, R., Slater, K. J., Fletcher, J. The use of ATP bioluminescence as a measure of cell proliferation and cytotoxicity. J. Immunol. Methods. 160, 81-88 (1993).
  17. Kangas, L., Gronroos, M., Nieminen, A. L. Bioluminescence of cellular ATP: a new method for evaluating cytotoxic agents in vitro. Med. Biol. 62, 338-343 (1984).
  18. Lundin, A., Hasenson, M., Persson, J., Pousette, A. Estimation of biomass in growing cell lines by adenosine triphosphate assay. Methods Enzymol. 133, 27-42 (1986).
  19. Sevin, B. U., et al. Application of an ATP-bioluminescence assay in human tumor chemosensitivity testing. Gynecol. Oncol. 31, 191-204 (1988).
  20. Maehara, Y., Anai, H., Tamada, R., Sugimachi, K. The ATP assay is more sensitive than the succinate dehydrogenase inhibition test for predicting cell viability. Eur. J. Cancer Clin. Oncol. 23, 273-276 (1987).
  21. Andreotti, P. E., et al. Chemosensitivity testing of human tumors using a microplate adenosine triphosphate luminescence assay: clinical correlation for cisplatin resistance of ovarian carcinoma. Cancer Res. 55, 5276-5282 (1995).
  22. Posimo, J. M., Titler, A. M., Choi, H. J., Unnithan, A. S., Leak, R. K. Neocortex and allocortex respond differentially to cellular stress in vitro and aging in vivo. PLoS One. 8, (2013).
  23. Carralot, J. P., et al. A novel specific edge effect correction method for RNA interference screenings. Bioinformatics. 28, 261-268 (2012).
  24. Lundholt, B. K., Scudder, K. M., Pagliaro, L. A simple technique for reducing edge effect in cell-based assays. J. Biomol. Screen. 8, 566-570 (2003).
  25. Oliver, D. G., Sanders, A. H., Hogg, R. D., Hellman, J. W. Thermal gradients in microtitration plates. Effects on enzyme-linked immunoassay. J. Immunol. Methods. 42, 195-201 (1981).
  26. Gilbert, D. F., et al. A novel multiplex cell viability assay for high-throughput RNAi screening.. PLoS One. 6, (2011).
  27. Bayer, S. A., Altman, J. . Neocortical Development. , (1991).
  28. Miller, F. D., Gauthier, A. S. Timing is everything: making neurons versus glia in the developing cortex. Neuron. 54, 357-369 (2007).
  29. Mullett, S. J., Hinkle, D. A. DJ-1 knock-down in astrocytes impairs astrocyte-mediated neuroprotection against rotenone. Neurobiol. Dis. 33, 28-36 (2009).
  30. Jiang, Y., et al. N-Acetyl cysteine blunts proteotoxicity in a heat shock protein-dependent manner. Neuroscienze. 255, 19-32 (1016).
  31. Madeira, A., et al. Caveolin-1 interacts with alpha-synuclein and mediates toxic actions of cellular alpha-synuclein overexpression. Neurochem. Int. 59, 280-289 (2011).
  32. Fioriti, L., et al. Cytosolic prion protein (PrP) is not toxic in N2a cells and primary neurons expressing pathogenic PrP mutations. J. Biol. Chem. 280, 11320-11328 (2005).
  33. Zhang, L., et al. Proteasome inhibition modulates kinase activation in neural cells: relevance to ubiquitination, ribosomes, and survival. J. Neurosci. Res. 87, 3231-3238 (2009).
  34. Braak, H., et al. Staging of brain pathology related to sporadic Parkinson’s disease. Neurobiol. Aging. 24, 197-211 (2003).
  35. Stranahan, A. M., Mattson, M. P. Selective Vulnerability of Neurons in Layer II of the Entorhinal Cortex during Aging and Alzheimer’s Disease.. Neural Plast. 2010, (2010).
  36. Duyckaerts, C., Delatour, B., Potier, M. C. Classification and basic pathology of Alzheimer disease. Acta Neuropathol. 118, 5-36 (2009).
  37. Chu, C. C., Tranel, D., Damasio, A. R., Van Hoesen, G. W. The autonomic-related cortex: pathology in Alzheimer’s disease. Cereb. Cortex. 7, 86-95 (1997).
  38. Braak, H., Del Tredici, K., Bohl, J., Bratzke, H., Braak, E. Pathological changes in the parahippocampal region in select non-Alzheimer’s dementias. Ann. N.Y. Acad. Sci. 911, 221-239 (2000).
  39. Braak, H., Rub, U., Schultz, C., Del Tredici, K. Vulnerability of cortical neurons to Alzheimer’s and Parkinson’s diseases. J. Alzheimers Dis. 9, 35-44 (2006).
  40. Calabrese, E. J. Hormesis is central to toxicology, pharmacology and risk assessment. Hum. Exp. Toxicol. 29, 249-261 (2010).
  41. Giordano, J., Ives, J. A., Jonas, W. B. Hormetic responses in neural systems: consideration, contexts, and caveats. Crit. Rev. Toxicol. 38, 623-627 (2008).
  42. Mattson, M. P. Hormesis defined. . Ageing Res. Rev.. 7, 1-7 (2008).
  43. Wang, P., Henning, S. M., Heber, D. Limitations of MTT and MTS-based assays for measurement of antiproliferative activity of green tea polyphenols. PLoS One. 5, (2010).
  44. Riss, T. L., Moravec, R. A. Use of multiple assay endpoints to investigate the effects of incubation time, dose of toxin, and plating density in cell-based cytotoxicity assays. . Assay Drug Dev. Technol. 2, 51-62 (2004).
  45. Titler, A. M., Posimo, J. M., Leak, R. K. Astrocyte plasticity revealed by adaptations to severe proteotoxic stress. Cell Tissue Res. , (2013).
  46. McLaughlin, B., et al. Caspase 3 activation is essential for neuroprotection in preconditioning. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 715-720 (2003).
  47. Mathews, S. T., Plaisance, E. P., Kim, T. Imaging systems for westerns: chemiluminescence vs. infrared detection. Methods Mol. Biol. 536, 499-513 (2009).
  48. Picariello, L., et al. A comparison of methods for the analysis of low abundance proteins in desmoid tumor cells. Anal. Biochem. 354, 205-212 (2006).
  49. Tapias, V., Cannon, J. R., Greenamyre, J. T. Melatonin treatment potentiates neurodegeneration in a rat rotenone Parkinson’s disease model. J. Neurosci. Res. 88, 420-427 (2010).
  50. Fenteany, G., Schreiber, S. L. Specific inhibition of the chymotrypsin-like activity of the proteasome induces a bipolar morphology in neuroblastoma cells. Chem. Biol. 3, 905-912 (1996).
  51. Omura, S., et al. Lactacystin, a novel microbial metabolite, induces neuritogenesis of neuroblastoma cells. J. Antibiot. 44, 113-116 (1991).
check_url/it/50645?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Posimo, J. M., Unnithan, A. S., Gleixner, A. M., Choi, H. J., Jiang, Y., Pulugulla, S. H., Leak, R. K. Viability Assays for Cells in Culture. J. Vis. Exp. (83), e50645, doi:10.3791/50645 (2014).

View Video