Summary

A Novel<em> In vivo</em> Gene Transfer Teknik och<em> In vitro</em> cellbaserade analyser för studier av benförlust i belastningsskador

Published: June 08, 2014
doi:

Summary

Differentiation of precursor cells into osteoclasts is regulated by cytokines and growth factors. Here, a novel gene transfer technique for differentiation of osteoclasts in vivo and cell culture protocols for differentiating precursor cells into osteoclasts in vitro as a method to study the effects of cytokines on osteoclastogenesis are described.

Abstract

Differentiation and activation of osteoclasts play a key role in the development of musculoskeletal diseases as these cells are primarily involved in bone resorption. Osteoclasts can be generated in vitro from monocyte/macrophage precursor cells in the presence of certain cytokines, which promote survival and differentiation. Here, both in vivo and in vitro techniques are demonstrated, which allow scientists to study different cytokine contributions towards osteoclast differentiation, signaling, and activation. The minicircle DNA delivery gene transfer system provides an alternative method to establish an osteoporosis-related model is particularly useful to study the efficacy of various pharmacological inhibitors in vivo. Similarly, in vitro culturing protocols for producing osteoclasts from human precursor cells in the presence of specific cytokines enables scientists to study osteoclastogenesis in human cells for translational applications. Combined, these techniques have the potential to accelerate drug discovery efforts for osteoclast-specific targeted therapeutics, which may benefit millions of osteoporosis and arthritis patients worldwide.

Introduction

Muskuloskeletala sjukdomar drabbar miljontals människor i USA och nuvarande allvarliga konsekvenser för nationella och lokala hälso-och sjukvårdssystemen 1. Dessa sjukdomar kännetecknas av förlust av ben och gemensamma funktion som kräver omfattande behandling och långa perioder av återhämtning. Vanligen en relativ ökning av antalet och / eller aktiviteten av osteoklaster, celler specialiserade för att resorberas ben, vid osteoporos och artrit observeras 2. Under fysiologiska betingelser av antalet och aktiviteten av osteoklaster regleras av receptor aktivator av nukleär faktor κ-B-ligand (RANKL), som produceras av osteoblaster. Osteoprotegerin (OPG), är ett lockbete receptor för RANKL också produceras av osteoblaster 3 In vivo djurmodeller som innebär systemuttryck av sRANKL, eller radering av OPG är mycket värdefulla i osteoporosforskning.; Men dessa metoder kräver generering av transgena möss 4,5. Här har ett nytt alternativmetod för att överuttrycka sRANKL för studier av muskuloskeletala relaterade störningar beskrivs. Specifikt var minicircle (MC) DNA-teknik och hydrodynamiska leveransmetoder som används för att uppnå genöverföring av sRANKL in vivo och överuttrycker mus sRANKL system 6.

Denna metod är också ett komplement till andra in vivo-modeller av benskörhet, till exempel hormonella modulering av osteoklaster efter ovariektomi 7 och dietary intervention av låg-kalcium diet 8. Dessa modeller är mycket användbara för att studera olika aspekter av belastningsrelaterade besvär men de kräver kirurgiska ingrepp och kan ta upp till flera månader, till stora kostnader 9. Äggstockar (OVX) gnagarmodell är en experimentell djurmodell där avlägsnande av äggstockarna leder till östrogenbrist och därmed härma mänskligt postmenopausal osteoporos 10. Human post-menopausal osteoporos, ett tillstånd där östrogen Deficitransparensen leder till ökad risk för benfrakturer och benskörhet drabbar cirka åtta miljoner kvinnor i USA ensam. Fastän OVX modell är användbar för post-menopausal osteoporos är det inte ger några större fördelar i att studera osteoporos i allmänhet. Östrogen hämmar benförlust, genom att inducera osteoklaster och hämma osteoblast apoptos, alltså i sin frånvaro en ökad osteoklastaktivitet observeras 10-12. En RANKL-OPG förhållande obalans som gynnar benresorption observeras också 13. Emellertid är östrogenbrist in vivo också åtföljas av minskade nivåer av transformerande tillväxtfaktor β (TGF β), ökad interleukin-7 (IL-7) och TNF, IL-1 och IL-6 14,15. Eftersom dessa cytokiner har känt benremodellering modulatoriska funktioner oberoende av RANKL reaktionsvägen, är det omöjligt att tillskriva någon osteoklast-aktivering enbart till den RANKL-RANK axel. Modellen som beskrivs i detta dokument ger forskarna möjlighet att studera i vivo RANKL-rank-axeln i osteoclastogenesis och benförlust utan proinflammatoriska cytokiner jämfört med OVX gnagarmodeller.

Dessutom, in vitro osteoclastogenesis tekniker är viktiga verktyg för att studera osteoclast aktivering för potentiella terapeutiska behandlingar av sjukdomar i rörelseorganen. Tidigare studier har också visat att odling av mus-benmärg härledda makrofager (BMMs) med mus-makrofag kolonistimulerande faktor (M-CSF) och mus sRANKL kan leda till osteoklastdifferentiering 3,16,17. Här är de protokoll för att generera flerkärniga osteoklaster-liknande celler från benmärg från mus samt från humana perifera mononukleära blodceller (PBMC) in vitro 18 beskrivs. De cell-baserade analyser som krävs för att definiera en mogen terminalt differentierade och fullt funktionell osteoklast är också kortfattat beskrivas. Dessa in vitro-tekniker kompletterar romanen in vivo strategi och tillsammans fungera som powerful undersökande verktyg för att studera osteoklastdifferentiering och-aktivering. Med hjälp av dessa system, forskare kan generera osteoklaster in vivo och in vitro och definierar stimuli och signaler som krävs för deras spridning och aktivering samt testa effekten av farmakologiska och biologiska hämmare.

Protocol

1. Hydrodynamisk Leverans av sRANKL MC DNA Hydrodynamisk Leverans via Mouse Tail Vein Väg musen innan injektion i svansvenen. Späd sRANKL eller grönt fluorescerande protein (GFP) MC i Ringers lösning (pre-varm vid 37 ° C) i en total volym av ~ 10% av musens kroppsvikt. Värm upp musen i en bur i 10 min före injektion för att vidga blodkärlen och göra laterala vener (LVs) synliga. Övervaka musen försiktigt för att undvika uttorkning och hypertermi. Så snart LVs är dil…

Representative Results

Här är en ny gen överföringsteknik för differentiering av osteoklaster in vivo-och cellodlings protokoll för differentiering av prekursorceller i osteoklaster in vitro som en metod för att studera effekterna av cytokiner på osteoclastogenesis beskrivs. I fig. 1 är de representativa resultat av framgångsrik genöverföring av GFP och mus sRANKL MC i möss visas. I figur 2, är representativa bilder av benmärg från mus eller humana PBMC-celldifferentiering ti…

Discussion

Muskuloskeletala förhållanden är ledande orsakerna till sjuklighet och funktionshinder och består av över 150 sjukdomar och syndrom; drabbar cirka 90 miljoner amerikaner idag. Ledinflammation och benförstöring är dominerande inslag i muskuloskeletala förhållanden, bland annat artrit och benskörhet. Benskörhet är ett tillstånd som försvagar ben integritet, vilket ofta leder till frakturer i benet. Artrit är en kronisk, invalidiserande sjukdom som kännetecknas av inflammation i lederna som blir svullna, ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Research was partly supported by NIH research grants R01 AR062173 and SHC 250862 to IEA. ES is the recipient of NIH T32 CTSC predoctoral fellowship.

Materials

alpha-MEM Life Technologies  12561-056
Human M-CSF Miltenyi Biotec 130-096-492
Mouse M-CSF Miltenyi Biotec 130-094-643
Human RANK-Ligand – soluble Miltenyi Biotec 130-094-631
Mouse RANK-Ligand – soluble Miltenyi Biotec 130-094-076
Tailveiner Restrainer for mice Braintree TV-150 STD
Mouse TRANCE/RANK L/TNFSF11 Quantikine ELISA Kit  R&D systems MTR00
Acid Phosphatase, Leukocyte (TRAP) Kit Sigma 387A
MouseTRAP assay  immunodiagnostic systems SB-TR103

Riferimenti

  1. Yelin, E. Cost of musculoskeletal diseases: impact of work disability and functional decline. The Journal of rheumatology. Supplement. 68, 8-11 (2003).
  2. Boyce, B. F., Rosenberg, E., de Papp, A. E., Duong le, T. The osteoclast, bone remodelling and treatment of metabolic bone disease. European journal of clinical investigation. 42, 1332-1341 (2012).
  3. Lacey, D. L., et al. Osteoprotegerin ligand is a cytokine that regulates osteoclast differentiation and activation. Cell. 93, 165-176 (1998).
  4. Mizuno, A., et al. Transgenic mice overexpressing soluble osteoclast differentiation factor (sODF) exhibit severe osteoporosis. Journal of bone and mineral metabolism. 20, 337-344 (2002).
  5. Bucay, N., et al. osteoprotegerin-deficient mice develop early onset osteoporosis and arterial calcification. Gene., & development. 12, 1260-1268 (1998).
  6. Suda, T., Liu, D. Hydrodynamic gene delivery: its principles and applications. Molecular therapy: the journal of the American Society of Gene Therapy. 15, 2063-2069 (2007).
  7. Wronski, T. J., Dann, L. M., Scott, K. S., Cintron, M. Long-term effects of ovariectomy and aging on the rat skeleton. Calcified tissue international. 45, 360-366 (1989).
  8. Seto, H., Aoki, K., Kasugai, S., Ohya, K. Trabecular bone turnover, bone marrow cell development, and gene expression of bone matrix proteins after low calcium feeding in rats. Bone. 25, 687-695 (1999).
  9. Lelovas, P. P., Xanthos, T. T., Thoma, S. E., Lyritis, G. P., Dontas, I. A. The laboratory rat as an animal model for osteoporosis research. Comparative medicine. 58, 424-430 (2008).
  10. Sherman, B. M., West, J. H., Korenman, S. G. The menopausal transition: analysis of LH, FSH, estradiol, and progesterone concentrations during menstrual cycles of older women. The Journal of clinical endocrinology and metabolism. 42, 629-636 (1976).
  11. Hughes, D. E., et al. Estrogen promotes apoptosis of murine osteoclasts mediated by TGF-beta. Nature medicine. 2, 1132-1136 (1996).
  12. Kousteni, S., et al. Nongenotropic, sex-nonspecific signaling through the estrogen or androgen receptors: dissociation from transcriptional activity. Cell. 104, 719-730 (2001).
  13. Ominsky, M. S., et al. RANKL inhibition with osteoprotegerin increases bone strength by improving cortical and trabecular bone architecture in ovariectomized rats. Journal of bone and mineral research : the official journal of the American Society for Bone and Mineral Research. 23, 672-682 (2008).
  14. Kitazawa, R., Kimble, R. B., Vannice, J. L., Kung, V. T., Pacifici, R. Interleukin-1 receptor antagonist and tumor necrosis factor binding protein decrease osteoclast formation and bone resorption in ovariectomized mice. The Journal of clinical investigation. 94, 2397-2406 (1994).
  15. Weitzmann, M. N., Pacifici, R. Estrogen deficiency and bone loss: an inflammatory tale. The Journal of clinical investigation. 116, 1186-1194 (2006).
  16. Suda, T., Nakamura, I., Jimi, E., Takahashi, N. Regulation of osteoclast function. J Bone Miner Res. 12, 869-879 (1997).
  17. Asagiri, M., Takayanagi, H. The molecular understanding of osteoclast differentiation. Bone. 40, 251-264 (2007).
  18. Matsuzaki, K., et al. Osteoclast differentiation factor (ODF) induces osteoclast-like cell formation in human peripheral blood mononuclear cell cultures. Biochemical and biophysical research communications. 246, 199-204 (1998).
  19. Adamopoulos, I. E., et al. Synovial fluid macrophages are capable of osteoclast formation and resorption. The Journal of pathology. 208, 35-43 (2006).
  20. Adamopoulos, I. E., et al. Interleukin-17A upregulates receptor activator of NF-kappaB on osteoclast precursors. Arthritis researc., & therapy. 12, (2010).
  21. Jones, D., Glimcher, L. H., Aliprantis, A. O. Osteoimmunology at the nexus of arthritis, osteoporosis, cancer, and infection. J Clin Invest. 121, 2534-2542 (2011).
  22. Sato, K., Takayanagi, H. Osteoclasts, rheumatoid arthritis, and osteoimmunology. Curr Opin Rheumatol. 18, 419-426 (2006).
  23. Das, S., Crockett, J. C. Osteoporosis – a current view of pharmacological prevention and treatment. Drug design, development and therapy. 7, 435-448 (2013).
  24. Chen, Z. Y., He, C. Y., Ehrhardt, A., Kay, M. A. Minicircle DNA vectors devoid of bacterial DNA result in persistent and high-level transgene expression in vivo. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 8, 495-500 (2003).
  25. Kay, M. A., He, C. Y., Chen, Z. Y. A robust system for production of minicircle DNA vectors. Nature biotechnology. 28, 1287-1289 (2010).
  26. Chen, Z. Y., He, C. Y., Kay, M. A. Improved production and purification of minicircle DNA vector free of plasmid bacterial sequences and capable of persistent transgene expression in vivo. Human gene therapy. 16, 126-131 (2005).
  27. Halleen, J. M., et al. Tartrate-resistant acid phosphatase 5b: a novel serum marker of bone resorption. Journal of bone and mineral research : the official journal of the American Society for Bone and Mineral Research. 15, 1337-1345 (2000).
  28. Adamopoulos, I. E., et al. IL-23 is critical for induction of arthritis, osteoclast formation, and maintenance of bone mass. J Immunol. 187, 951-959 (2011).
  29. Suda, T., Takahashi, N., Martin, T. J. Modulation of osteoclast differentiation. Endocrine reviews. 13, 66-80 (1992).
  30. Takahashi, N., et al. Osteoblastic cells are involved in osteoclast formation. Endocrinology. 123, 2600-2602 (1988).
  31. Bradley, E. W., Oursler, M. J. Osteoclast culture and resorption assays. Methods Mol Biol. 455, 19-35 (2008).
  32. Arai, F., et al. Commitment and differentiation of osteoclast precursor cells by the sequential expression of c-Fms and receptor activator of nuclear factor kappaB (RANK) receptors. The Journal of experimental medicine. 190, 1741-1754 (1999).
  33. Fuller, K., et al. Macrophage colony-stimulating factor stimulates survival and chemotactic behavior in isolated osteoclasts. The Journal of experimental medicin. 178, 1733-1744 (1993).
  34. Edwards, J. R., Mundy, G. R. Advances in osteoclast biology: old findings and new insights from mouse models. Nature reviews. Rheumatology. 7, 235-243 (2011).
  35. Weinstein, R. S., et al. Promotion of osteoclast survival and antagonism of bisphosphonate-induced osteoclast apoptosis by glucocorticoids. The Journal of clinical investigation. 109, 1041-1048 (2002).
check_url/it/51810?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wu, D. J., Dixit, N., Suzuki, E., Nguyen, T., Shin, H. S., Davis, J., Maverakis, E., Adamopoulos, I. E. A Novel in vivo Gene Transfer Technique and in vitro Cell Based Assays for the Study of Bone Loss in Musculoskeletal Disorders. J. Vis. Exp. (88), e51810, doi:10.3791/51810 (2014).

View Video