Summary

新生児マウスにおける静脈注射

Published: November 11, 2014
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Summary

小児疾患の動物モデルは、早期発症と積極的な疾患の進行を体験することができます。臨床的に若いマウスモデルに関連する治療送達は技術的に困難であることができる。このプロトコルは、人生の最初の2日以内に出生後の新生児マウスのための非侵襲的静脈内注入法を説明しています。

Abstract

静脈内注射は、治療薬を提供するために臨床応用可能な方法である。大人の齧歯類および大型動物の場合は、静脈内注射は技術的に可能と日常的なものである。しかし、いくつかのマウスモデルは、潜在的な治療薬の投与が困難に急速進行性疾患の早期発症を持つことができる。時間的(または顔面)静脈がちょうどマウスにおいて、耳の芽の前方および解剖顕微鏡を用いて、頭部の両側に、出生後、明らかに最初の2日間は表示されている。このウィンドウ中に、一時的な静脈を50μlまでの容量で注射することができる。注射は安全で忍容子犬やダムの両方によって許容される。典型的な注射手順は子犬をホームケージに戻された後、1〜2分以内に完了する。第生後によって静脈視覚化が困難であり、注入手順は、技術的に信頼できないとなる。この技術は、アデノ随伴ウイルス(AAV)のvectの送達のために使用されている順番に選択されたウイルスの血清型に応じて、動物の生活のため、ほぼ身体全体で、安定的な導入遺伝子発現を提供することができます論理和をとり、。

Introduction

小児疾患のマウスモデルにおいて、中枢神経系(CNS)への治療薬の送達は課題である。モデル新生児疾患状態が過小と発生的に未熟であるため、直接CNS内の適切な構造体に注入することが困難であることをマウス。治療薬の血管内注入がCNS 1-5および3,5-9網膜を含む全身への細胞、薬物、またはウイルスベクターを送達するための非侵襲性、忍容性が良好な方法である。以前の刊行物は、解剖顕微鏡11,12なしで、イルミ10,11を使用して、一時的な顔の静脈注射、または記述10を注入する二人の個人を必要とする。一個人が子犬を注入することができ、光源が時間的静脈子犬に触れていない表示する、サージカルテープの必要性や、固定表面への子犬の付着を排除するため、このプロトコルに記載注入技術が有利であるイルミ11など。マウスでのアデノ随伴ウイルスベクター血清型9(AAV9)の送達は、脳や脊髄( 図1)を通じて、ニューロンおよびアストロサイトでの強い発現を生成します。浅側頭動脈顔面静脈へのウイルスベクターの血管内送達は、確実に、小児神経筋疾患脊髄性筋萎縮症(SMA)2,4,13,14を治療するための新生仔マウスの様々な研究で使用され、最終的に処理されたマウスの寿命を増加している。

新生児マウスの血管内注入も効果的に末梢神経系および末梢器官( 図2)標的とする。 AAVの注入後、後根神経節、肝臓、心臓、骨格筋、肺、および腸の筋層間神経叢の形質導入は、1,3,6,7,15観察されいる。 CNSおよび末梢の広範な伝達は、グローバルな表現を必要とする疾患の注入のこの方法は最適ですそのようなゴーシェ病16および他のリソソーム蓄積症17,18、バッテン病と関連する神経細胞セロイドlipofuscinoses、19およびバルデ·ビードル症候群、幼児20で発生する症状の発症との遺伝的多臓器障害などのトランスジーン、。新生仔マウスへの血管内注入はまた、モデリングシステム全体の小児疾患の新規な方法と考えるべきである。この手法は、より大きな動物モデル5,21に翻訳され、血管内注射は、すでに治療薬を送達することが臨床的に許容される方法として存在する。

現在のプロトコルは、生後2日目注射より遅くとも浅側頭顔静脈から新生児マウスに薬剤を送達しない、シンプルで効率的な方法を記述する単一完成させることができる、個々の練習、よく子犬やダムの両方によって許容されている。子犬は、最小限の苦痛を経験し、迅速に回復。 ImportanTLY、成功した注射が投与された薬剤のグローバルなデリバリーになります。このプロトコルは、ウイルスベクター、新生マウスに薬剤または細胞の送達に適している。

Protocol

プロトコールに記載されているすべての手順は、オハイオ州立大学の動物使用とケア委員会(IACUC)研究所承認されている。 ワークスペースの調製ごみ、解剖顕微鏡、90℃で注入(光源の使用に対してある角度で配置することができ、光源からのダムを分離するために、空のケージの仔マウスを麻酔湿式氷を集める 注射部位に角度静脈を不明瞭)、注?…

Representative Results

適切な注入中に、静脈が瞬​​間的にクリア、または湯通し有効にしてください。染料注入した場合、全子犬が数秒以内に青色に変わるはずです。不適切な注入が発生した場合、頭部または頸部および注入物質中の濃縮皮下ボーラス注射部位から漏出してもよいことが多い。不適切な注射はまた、喉の周りにあざが出現する可能性があります。皮下注射を受けるの仔( すなわち 、注?…

Discussion

CNSまたは全身の薬剤の血管内送達は、疾患の新生児マウスモデルでは困難である。記載されているプロトコルは、静脈内に、最小限の設備要件を新生児マウスにソリューションを管理するための迅速、比較的非侵襲的な方法です。時間的な顔の静脈が肉眼で見ることができるが、注射は、特に経験の乏しいインジェクタ、顕微鏡および光ファイバ光源を用いて、より高い精度を有することが…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者は、財政支援のためのNINDS、FightSMA、とSMAの家族を認識したい。セグルはNINDS訓練助成金#5T32NS077984-02によってサポートされています。

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Thinpro Insulin Syringe Terumo SS30M3009 3/10cc, 3/8" needle, 30G, 1 per mouse
Evans Blue Dye Sigma-Aldrich E2129 Dilute to 1% with 1X Phosphate Buffered Saline 
Cotton Tipped Applicators Fisher Scientific  23-400-101
Fiber Optic Light Source  Fisher Scientific  12-562-36
Dissecting Microscope

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Citazione di questo articolo
Gombash Lampe, S. E., Kaspar, B. K., Foust, K. D. Intravenous Injections in Neonatal Mice. J. Vis. Exp. (93), e52037, doi:10.3791/52037 (2014).

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