Summary

Точная и фенола свободной ДНК Sexing дня 30 свиней эмбрионов с помощью ПЦР

Published: February 14, 2016
doi:

Summary

This protocol describes an accurate, inexpensive, rapid and non-toxic method to determine the sex of Day 30 porcine embryo using PCR method after grinding an embryo into powder without phenol chloroform extraction and DNA column purification.

Abstract

Исследование пренатального программирования в свинье показало, что пол развивающегося эмбриона или плода могут влиять на процесс развития. Таким образом, способность определять пол эмбриона является необходимым во многих экспериментах, особенно в отношении раннего развития. Настоящий Протокол демонстрирует недорогой, быстрый и нетоксичный препарат геномной ДНК свиньи для использования с PCR. День 30 эмбрионов должны быть гуманно собраны в соответствии с руководящими принципами, установленными институциональной политики животных и комитетов благосостояния для настоящего протокола. Получение всей эмбриона для этого основанного ПЦР методики Sexing просто включает измельчения замороженного эмбриона до тонкого порошка с использованием предварительно охлажденного ступку и пестик. ПЦР-качество ДНК высвобождается из небольшого количества эмбрионов порошка путем подачи горячей инкубацию в щелочным реагентом для лизиса. Далее, ДНК-раствор смешивают с нейтрализации буфера и использовали непосредственно для ПЦР. Два пары праймеров генерируются в DETECт удельная секс определении области хромосомы Y- (SRY) и ZFX области хромосомы X- с высокой точностью и специфичностью. Же протокол может быть применен к другим удлиненных эмбрионов (день 10 до 14-й день) раньше, чем День 30. Также, этот протокол может быть осуществлена ​​с 96-разгораются пластин при скрининге большого количества зародышей, что делает его возможным для автоматизации и высокой пропускная секс печатать.

Introduction

Домашняя свинья стала фундаментальной предметом исследования в развитии, генетики и питания в обоих человека и животноводческих отраслей. Потенциал свиней в качестве биомедицинских моделей для человеческого исследования можно отнести к их физиологических сходств. В животноводстве, манипулирование соотношение полов может повысить эффективность отбора и генетического улучшения программ 1. Sexing отдельные эмбрионов является фундаментальным инструментом, используемым во многих экспериментальных исследований, включая, но не ограничиваясь генотипа, эпигенетике и X инактивации половой диморфизм во время раннего развития эмбриона 2.

Исследования на мышах показывают, что материнская диета и другие факторы могут привести к половым дисбалансом 3. У свиней, причины соотношение полов дисбаланс включают отцовской породы 4, емкость матки 5, и метаболический состояние свиноматки 6. Поскольку различия, наблюдаемые у эмбрионов и пометов могут влиять SEальными диморфизм, исследователи должны быть осведомлены о эмбриона пола и соотношения полов, прежде чем делать выводы относительно их исследований. Развитие эффективных инструментов и протоколов для определения пола эмбрионов свиньи на 30 день развития будут обсуждаться здесь.

Различные методы полового печатать были разработаны для генетических исследований в модельных организмов и скота. В частности, в скота, выявлении мужского и женского ранних эмбрионов является очень распространенной практикой для повышения генетического отбора для селекционных программах. Ранние эмбрионы кариотипирование в свинью использованием Гимза 7 или интенсивную флуоресценцию 8,9 методы были использованы для секса печатать. Тем не менее, эти методы являются трудоемким и не подходит для скрининга большого числа зародышей быстро и точно.

Наиболее эффективный метод пола набрав амплификации ДНК с использованием термостабильной ДНК-полимеразы и пары праймеров. определение пола ДНК методом ПЦР является более конкретным, быстрый и чувствительный, оолько требующих незначительное количество клеточных материалов. Первой ПЦР на основе эмбриона определение пола была выполнена на людях 10, а позже у мышей 11, крупного рогатого скота 12, буйволы 13 и овец 14 предимплантационной эмбрионов. В свиньи, самый ранний ДНК секс метод набрав был создан для преимплантационных эмбрионов с помощью одной пары Y-хромосомы праймеров, специфичных ДНК 15. Тем не менее, наиболее распространенные ПЦР-праймеры для определения пола были отобраны из Y-хромосомы у мужчин специфического гена SRY 16 и без секса дискриминационного области гена цинка пальца, расположенного по адресу Х и Y хромосомы 17. Впоследствии эти праймеры были применены к определить пол День 30 эмбрионов в этом исследовании с улучшенной специфичностью праймеров для обнаружения только X- хромосому гена цинк-пальцем.

Геномную ДНК из свиных эмбрионов предимплантационной могут быть извлечены путем воздействия интактной бластоцисты в буфер с proteinas^ К 16 либо путем биопсии нескольких клеток от индивидуального начале расщепления эмбрионов 15 и использовать их для прямого ПЦР. Тем не менее, выпуск ДНК из свиной крови, волос, тканей или большой зародыш в течение нескольких сантиметров в размере не эффективно осуществляется с помощью протеиназы метод K. Методы экстракции ДНК для этих материалов были созданы с использованием либо трудоемких фенол / хлороформ протоколы 6 или основанные дорого колонка комплекты 18. Во избежание использования потенциально токсичных химических веществ, наблюдается тенденция развивать недорогой, простой и фенолов в методы выделения ДНК. Этот тип протокола для выделения ПЦР-качества геномной ДНК из мышей 19 и данио 20 тканей была создана с использованием горячего гидроксида натрия и трис (HotShot). Это исследование обеспечивает протокол для получения ДНК с модифицированными HotShot и переработан пары праймеров дуплекс для ПЦР пола набрав непосредственно из клеточных лизатов Дня 30 свиных эмбрионов свысокая точность.

Protocol

В соответствии с Канадским советом по принципов ухода за животными и с одобрения политики факультета животноводства и Комитета благосостояния – поголовье Университета Альберты, беременных свиноматок были умерщвлены по подготовленных штабами приблизительно 30 день беременности и эмбрионов были…

Representative Results

Представитель результат определения пола из 345 ДНК скрининга лизатов ПЦР показано на рисунке 7 и в таблице 1. Как можно видеть на фигуре 7, температура отжига праймеров при 65 ° С является оптимальной условием ?…

Discussion

Большинство существующих протоколов, связанных с свиного эмбрионы ДНК секс набрав пригодны только для ранней стадии предимплантационной стадии 15,16. Мы успешно разработали протокол, подходящий для свиней скрининга эмбрионов в конце беременности. Основываясь на исследованиях с ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы отметить сотрудничество и финансовые взносы следующей исследовательской финансирующей организации: Alberta животноводства и мясопереработки Agency Ltd., свинина CRC, Alberta свинина, Hypor A Hendrix Genetics Company и NSERC CRSNG.

Materials

KAPA HiFi HotStart Ready Mix PCR kit  KAPABiosystems KR0370 other Hot Start Taq polymerase can be used after optimization
SYBR Safe DNA Gel Stain Life Technologies S33102 Ethidium bromide can be substituted for SYBR Safe
Pig female and male genomic DNA Zyagen GP-160-F1 & GP-160-M5 Postive controls from the tissues of known sex DNA can be used.
Typhoon FLA 9500 laser scanner GE Healthcare Life Sciences 28-9969-43 other imaging system can be used
Free Soft Nitrile Examination Gloves WWR 89038-270 any other examination glove can be used
Sodium hydroxide, solid  Fisher BP 359 -212 Molecular Biology Grade
Eppendorff DNA LoBind Tubes, 1.5 ml, PCR clean Eppendorff 0030 108.051 heat resistant
ThermoStat plus Eppendorff 22670204 Use as a incubator for 95C, don't need to use the heater
Toothpick Bunzl Plc 75200815 Any round wooden toothpicks can be used – quality wood
Microcentrifuge 5417R/5417C Eppendorff 22621807 This model was discontinued. But another newer model can be used
Microspatula Fisher SDI28540115 Autoclaved before use each time.

Riferimenti

  1. Seidel, G. E. Economics of selecting for sex: the most important genetic trait. Theriogenology. 59, 585-598 (2003).
  2. Gutiérrez-Adán, A., et al. Development consequences of sexual dimorphism during pre-implantation embryonic development. Reprod. Domest. Anim. 41, 54-62 (2006).
  3. Rosenfeld, C. S., Roberts, R. M. Maternal diet and other factors affecting offspring sex ratio: a review. Biol Reprod. 71, 1063-1070 (2004).
  4. Gorecki, M. T. Sex ratio in litters of domestic pigs (Sus scrofa f. domestica Linnaeus, 1758). Biol. Lett. 40, 111-118 (2003).
  5. Chen, Z. Y., Dziuk, P. J. Influence of initial length of uterus per embryo and gestation stage on prenatal survival, development, and sex ratio in the pig. J. Anim. Sci. 71, 1895-1901 (1993).
  6. Vinsky, M. D., Novak, S., Dixon, W. T., Dyck, M. K., Foxcroft, G. R. Nutritional restriction in lactating primiparous sows selectively affects female embryo survival and overall litter. Reprod. Fertil. Dev. 18, 347-355 (2006).
  7. Cassar, G., King, W. A., King, G. J. Influence of sex on early growth of pig conceptuses. J. Reprod. Fertil. 101, 317-320 (1994).
  8. Zudova, D., Rezacova, O., Kubickova, S., Rubes, J. Aneuploidy detection in porcine embryos using fluorescence in situ hybridization. Cytogenet Genome Res. 102, 179-183 (2003).
  9. Hornak, M., Oracova, E., Hulinska, P., Urbankova, L., Rubes, J. Aneuploidy detection in pigs using comparative genomic hybridization: from the oocytes to blastocysts. PLoS One. 7, (2012).
  10. Handyside, A. H., Pattinson, J. K., Penketh, R. J., Delhanty, J. D., Winston, R. M., Tuddenham, E. G. Biopsy of human preimplantation embryos and sexing by DNA amplification. Lancet. 1, 347-349 (1989).
  11. Wilton, L. J., Shaw, J. M., Trounson, A. O. Successful single-cell biopsy and cryopreservation of preimplantation mouse embryos. Feri. Steril. 51, 513-517 (1989).
  12. Peura, J. M., Turunen, M., Janne, J. A reliable sex determination assay for bovine preimplantation embryos using the polymerase chain reaction. Theriogenology. 35, 547-555 (1991).
  13. Rao, K. B., Pawshe, C. H., Totey, S. M. Sex determination of in vitro developed buffalo (Buhalus buhalis.) embryos by DNA amplification. Mol. Reprod. Dev. 36, 291-296 (1993).
  14. Herr, C. M., Matthaei, K. I., Petrzak, U., Reed, K. C. A rapid Y-chromosome-detecting ovine embryo sexing assay. Theriogenology. 33, 245 (1990).
  15. Fajfar-Whetstone, C. J., LaneRayburn, A., Schook, L. B., Wheeler, M. B. Sex determination of porcine during preimplantation embryos via y-chromosome specific DNA sequences. Animal Biotechnology. 4, 183-193 (1993).
  16. Pomp, D., Good, B. A., Geisert, R. D., Corbin, C. J., Conley, A. J. Sex identification in mammals with polymerase chain reaction and its use to examine sex effects on diameter of day-10 or -11 pig embryos. J. Anim. Sci. 73, 1408-1415 (1995).
  17. Aasen, E., Medrano, J. F. Amplification of the ZFY and ZFX genes for sex identification in humans, cattle, sheep and goats. Biotechnology (N Y). 8, 1279-1281 (1990).
  18. Oliver, G., et al. Restricted feed intake in lactating primiparous sows. II. Effects on subsequent litter sex ratio and embryonic gene expression. Reprod Fertil. Dev. 23, 899-911 (2011).
  19. Truett, G. E., Heeger, P., Mynatt, R. L., Truett, A. A., Walker, J. A., Warman, M. L. Preparation of PCR-quality mouse genomic DNA with hot sodium hydroxide and tris (HotSHOT). Biotechniques. 29, 52-54 (2000).
  20. Meeker, N. D., Hutchinson, S. A., Ho, L., Trede, N. S. Method for isolation of PCR-ready genomic DNA from zebrafish embryos. Biotechniques. 43, 610-614 (2007).
  21. Almeida, F. C. R. L., Machado, G. S., Borges, A. L. C. C., Rosa, B. O., Fontes, D. O. Consequences of different dietary energy sources during folliculardevelopment on subsequent fertility of cyclic gilts. Animal. 8, 293-299 (2014).
  22. Foxcroft, G. R., Dixon, W. T., Dyck, M. K., Novak, S., Harding, J. C. S., Almeida, F. C. R. L., Rodriguez-Martinez, Prenatal programming of postnatal development in the pig. Control of Pig Reproduction VIII. , 212-213 (2009).
check_url/it/53301?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Blanes, M. S., Tsoi, S. C., Dyck, M. K. Accurate and Phenol Free DNA Sexing of Day 30 Porcine Embryos by PCR. J. Vis. Exp. (108), e53301, doi:10.3791/53301 (2016).

View Video