Summary

Transplante de islotes en el cojín de grasa epididimal de ratones diabéticos

Published: July 23, 2017
doi:

Summary

Este protocolo demuestra el aislamiento de los islotes murinos y la siembra en un andamio decelularizado. Los islotes soportados por el andamio fueron trasplantados en la almohadilla de grasa epididimal de ratones diabéticos inducidos por estreptozotocina (STZ). Los islotes sobrevivieron en el sitio del trasplante e invirtieron la condición hiperglucémica.

Abstract

El trasplante de islotes ha demostrado clínicamente ser eficaz en el tratamiento de la diabetes tipo 1. Sin embargo, la actual estrategia de trasplante intrahepático puede incurrir en reacciones agudas de sangre entera y resultar en inseminación de islotes pobres. En este trabajo se presenta un protocolo robusto para el trasplante de islotes en el sitio de trasplante extrahepático -la almohadilla de grasa epididimal (EFP) – en un modelo de ratón diabético. Se describe un protocolo para aislar y purificar islotes con altos rendimientos de ratones C57BL / 6J, así como un método de trasplante realizado mediante la siembra de islotes sobre un andamio decelularizado (DCS) y su implantación en el sitio EFP en ratones C57BL / 6J singénicos rendidos diabéticos Por la estreptozotocina. El injerto DCS que contenía 500 islotes invirtió la condición hiperglucémica en 10 días, mientras que los islotes libres sin DCS requirieron al menos 30 días. La normoglucemia se mantuvo hasta 3 meses hasta que se explantó el injerto. En conclusión, DCS mejoró el injerto de islotes en tEl sitio extrahepático de la EFP, que podría ser fácilmente recuperado y podría proporcionar una plataforma reproducible y útil para investigar los materiales del andamio, así como otros parámetros de trasplante requeridos para un inseminación exitosa de islotes.

Introduction

La diabetes mellitus tipo 1 (T1D) es un trastorno endocrino autoinmune en el que las células de los islotes son ablacionadas por el sistema inmunitario, haciendo que los pacientes dependan de la inyección de insulina exógena durante toda su vida. El protocolo de Edmonton representa un hito en los estudios clínicos del trasplante de islotes; Los islotes fueron infundidos a través de la vena porta y trasplantados en el sitio intrahepático [ 1] . Sin embargo, dos obstáculos principales-fuentes inadecuadas de islotes donantes y insectos de islotes pobres-impiden el gran éxito del trasplante de islotes 2 . Por lo general, los islotes necesitan ser recogidos de tres donantes cadáveres para revertir la condición hiperglucémica de un paciente; Esto se debe al bajo rendimiento de los procedimientos de aislamiento de islotes ya la pérdida de islotes tras el trasplante. En particular, aunque los islotes posteriores al trasplante se bañaban en sangre rica en oxígeno, el contacto directo con la sangre evocaba a menudo la inflamación mediada por la sangre instantánea(IBMIR), que podría causar la pérdida aguda de los islotes. A largo plazo, se piensa que la pérdida gradual de islotes en los pacientes explicó la caída de las tasas de reversión de la diabetes en los grupos clínicos, que podría llegar al 90% en el primer año y disminuir a 30% y 10% a 2 y 5 Años después del trasplante, respectivamente 3 .

El trasplante de islote en los sitios extrahepáticos ha sido una estrategia atractiva para reducir el contacto directo de los islotes con la sangre mientras se confina los trasplantes a lugares más definibles en comparación con la infusión intrahepática. Se han realizado estudios en la cápsula renal, ojos, músculos, almohadillas de grasa y espacios subcutáneos en los últimos años, mostrando que los islotes en estos sitios son capaces de sobrevivir y funcionan para restaurar la normoglucemia 4 . Además, los islotes en estos sitios son recuperables, lo que hace posible la biopsia o incluso para procedimientos de reemplazo adicionales. ExtrahepáticoItes por lo tanto, muestran un gran potencial para el trasplante clínico [ 5] .

Los andamios basados ​​en biomateriales han sido intensamente investigados para el trasplante de células y la ingeniería de tejidos. Los andamios tridimensionales (3D) generalmente contienen estructuras porosas y pueden servir como plantillas celulares para generar estructura espacial / organización de células o como reservorios para proporcionar la liberación controlada de señales bioactivas. Los andamios también se han fabricado a partir de materiales poliméricos, tales como poli (glicolida-L-lactida) 6 , poli (dimetilsiloxano) 7 y poli (uretano) termoplástico 8 , para transplantar islotes en la EFP. En comparación con el trasplante directo de islotes, se encontró que el uso de andamios reduce la pérdida de islotes al prevenir la fuga de islotes en la cavidad intraperitoneal 9 , 10 , proporcionando protección mecánica y moduLa reacción inflamatoria local. Los andamios pueden así desarrollarse para promover el injerto de islotes en los sitios de trasplante 7 .

En este estudio, pretendemos demostrar un paradigma de trasplante de islotes en la EFP, llevado a cabo en modelos de ratones utilizando un DCS. Los andamios derivados de matrices extracelulares han atraído gran interés en los últimos años debido a la biocompatibilidad superior ya estructuras naturales porosas más comparadas con productos sintéticos. Aquí, describimos un robusto protocolo de aislamiento para obtener los islotes pancreáticos con altos rendimientos de ratones C57BL / 6J. Los DCSs procesados ​​a partir del pericardio bovino fueron entonces sembrados con islotes, y los injertos fueron trasplantados a la EFP en modelos diabéticos singénicos. La normoglucemia en ratones se logró en 10 días y se mantuvo hasta 100 días, hasta la eliminación de los injertos.

Protocol

Todos los experimentos fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Pekín (IACUC, IACUC no COE-LuoY-1). 1. Aislamiento de islotes Preparación de reactivos y equipos. Reconstituir colagenasa P en polvo (2 U / mg) en HBSS para hacer una solución de 5 mg / mL y filtrar a través de un filtro de 0,22 μm para eliminar las bacterias. Preparar soluciones alícuotas de 0,6 ml de colagenasa P en tubos cónicos…

Representative Results

Nuestro método de sujeción, realizado con una pinza hemostática microscópica, es sencillo y ahorra tiempo en comparación con la técnica de ligadura de sutura. Se tomó aproximadamente 4 h para aislar y purificar alrededor de 1.200 islotes de 6 ratones. Los islotes recién aislados tenían típicamente una periferia rugosa bajo un microscopio óptico ( Figura 3A ). Una vez que los islotes se recuperaron del proceso de aislamiento, parecían brillantes y…

Discussion

La perfusión del páncreas y el tiempo de digestión son dos parámetros clave que afectan el rendimiento y la calidad de los islotes. Moskalewski informó por primera vez el uso de una mezcla de colagenasa cruda para digerir el páncreas de conejillo de indias picada [ 11] . Lacy et al. Informó la inyección de enzimas en el sistema de conductos para perfundir el páncreas, lo que aumentó considerablemente el rendimiento de islotes [ 12]</sup…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores desean agradecer a Wei Zhang de Guanhao Biotech por proporcionar los andamios decelularizados. Damos las gracias a Xiao-hong Peng por las discusiones útiles. Esta investigación fue apoyada financieramente por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (Proyecto No.31322021).

Materials

Dissecting scissor Ningbo Medical
Forceps Ningbo Medical
0.5 mm diameter wire mesh Ningbo Medical
70 μm cell strainer Falcon 352350
Artery hemostatic clamp Ningbo Medical
Microscopic hemostatic clamp Ningbo Medical
Hemostatic forceps Ningbo Medical
Absorbable 6-0 PGLA sutures  JINHUAN With needle
Wound clip Ningbo Medical
Cotton swab Ningbo Medical
Gauze Ningbo Medical
Sterile drapes Ningbo Medical
10mL syringe JINGHUAN
1 mL syringe JINGHUAN
27G intravenous needle JINGHUAN 0.45×15 RWSB
1.5 mL Eppendorf tube Axygen
15mL conical tube Corning 430791
50mL conical tube Corning 430829
35mm Non-treated  Peri-dishes Corning 430588
Transwell Corning 3422
0.22 μm filter Pall PN4612
10 mL serological pipet Corning 4488
Pipet filler S1 Thermo Scientific 9501
Pipette (2-20μL) Axygen AP-20 AXYPETTM
Dissecting microscope Olympus SZ61
Centrifuge Eppendorf 5810R
Hank’s balanced salt solution  Gibco C14175500CP
Collagenase P Roche COLLP-RO
Histopaque 1077 Sigma 10771
RPMI 1640 Gibco 11879-20
FBS Gibco 16000-044
D-glucose Gibco A24940-01
Glucose meter Roche ACCU-CHEK
Penicillin-streptomycin Gibco 15140-122
Streptozotocin Sigma V900890 VetecTM
Chloral hydrate J&K C0073
Sodium citrate Sigma 71497
Citric acid Sigma C2404
Iodophors Ningbo Medical
C57BL/6J, 10-12 weeks old VitalRiver Beijing, China
Decellularized scaffold Guanhao Biotec 131102 Guangzhou, China

Riferimenti

  1. Shapiro, A. M., et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 343, 230-238 (2000).
  2. Shapiro, A. M. J., et al. International Trial of the Edmonton Protocol for Islet Transplantation. N Engl J Med. 355, 1318-1330 (2006).
  3. Ryan, E. A., et al. Five-year follow-up after clinical islet transplantation. Diabetes. 54, 2060-2069 (2005).
  4. Merani, S., Toso, C., Emamaullee, J., Shapiro, A. M. Optimal implantation site for pancreatic islet transplantation. Br J Surg. 95, 1449-1461 (2008).
  5. Schmidt, C. Pancreatic islets find a new transplant home in the omentum. Nat Biotechnol. 35 (1), (2017).
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Citazione di questo articolo
Wang, K., Wang, X., Han, C., Chen, L., Luo, Y. Scaffold-supported Transplantation of Islets in the Epididymal Fat Pad of Diabetic Mice. J. Vis. Exp. (125), e54995, doi:10.3791/54995 (2017).

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