Summary

Métodos in vitro para comparar la unión de diana y la inducción de CDC entre anticuerpos terapéuticos: Aplicaciones en análisis de biosimilitud

Published: May 04, 2017
doi:

Summary

Este protocolo describe la comparación in vitro de dos características funcionales clave del rituximab: la unión al diana y la inducción de la citotoxicidad dependiente del complemento (CDC). Los métodos se emplearon para una comparación lado a lado entre el rituximab de referencia y un biosimilar de rituximab. Estos ensayos se pueden emplear durante el desarrollo biosimilar o como un control de calidad en su producción.

Abstract

anticuerpos monoclonales terapéuticos (mAbs) son relevantes para el tratamiento de diferentes patologías, incluyendo los cánceres. El desarrollo de anticuerpos monoclonales biosimilares por las compañías farmacéuticas es una oportunidad de mercado, pero también es una estrategia para aumentar la accesibilidad de drogas y reducir los costes asociados a la terapia. Los protocolos detallados aquí describen la evaluación de unión a la diana y la inducción CDC por rituximab en células Daudi. Estas dos funciones requieren diferentes regiones estructurales del anticuerpo y son relevantes para el efecto clínico inducida por rituximab. Los protocolos permiten la comparación de lado a lado de un rituximab referencia y un biosimilar rituximab comercializado. Los productos evaluados mostraron diferencias tanto en unión a la diana y la inducción CDC, lo que sugiere que hay diferencias fisicoquímicas subyacentes y poner de relieve la necesidad de analizar el impacto de esas diferencias en el entorno clínico. Los métodos aquí presentados constituyen simple y barato in vitro </ Em> para la evaluación de la actividad de rituximab biosimilares. Por lo tanto, pueden ser útiles durante el desarrollo biosimilar, así como para el control de calidad en la producción biosimilar. Además, los métodos presentados pueden extrapolarse a otros mAbs terapéuticos.

Introduction

Los anticuerpos terapéuticos son anticuerpos monoclonales recombinantes (mAbs) desarrollados para el tratamiento de diferentes patologías, incluyendo cánceres, enfermedades autoinmunes y crónicas, trastornos neurológicos y otros 1 . Actualmente, la FDA ha concedido la aprobación a más de 40 mAb terapéuticos, y se espera que lleguen más al mercado en los años siguientes.

Rituximab es un anticuerpo IgG1 monoclonal quimérico de alta afinidad aprobado para el tratamiento del linfoma no Hodgkin de células B CD20 + , LNH folicular CD20 + , leucemia linfocítica crónica y artritis reumatoide 2 , 3 . El reconocimiento de CD20, que está sobreexpresado en células B, por rituximab induce apoptosis; activación del complemento; Y citotoxicidad mediada por células dependientes de anticuerpos (ADCC) 3 . Las patentes de este fármaco expiraron en Europa y en los EE.UU. en 2013 y 2016, Respectivamente. Así, las compañías farmacéuticas en todo el mundo están desarrollando biosimilares de rituximab. Como en cualquier otro medicamento para consumo humano, los biosimilares requieren la aprobación de las agencias reguladoras. Directrices internacionales indican que para los mAbs, la biosimilaridad debe demostrarse mediante la comparación de las características físico-químicas, farmacocinéticas, la eficacia y la seguridad de los productos nuevos y de referencia [ 4] .

Por consiguiente, las metodologías utilizadas en tales comparaciones deben evaluar las características estructurales y funcionales de los mAb, especialmente aquellos con relevancia clínica. Para ello, los ensayos di vitro muestran varias ventajas sobre los experimentos in vivo (revisados ​​en Chapman et al. ) 5 : i) los estudios in vitro son más sensibles a las diferencias entre el biosimilar propuesto y el producto de referencia; Ii) deben realizarse estudios in vivo en especies relevantes, que para muchos mAbs sonPrimates no humanos; Y iii) ya que el mecanismo de acción, la toxicología preclínica y los efectos clínicos del producto de referencia son bien conocidos, los estudios in vivo con biosimilares pueden no proporcionar información útil adicional. En consecuencia, la Orientación de la Unión Europea para biosimilares permite a los candidatos a entrar en ensayos clínicos basados ​​en sólidos datos in vitro sólo [ 6] .

Presentamos dos ensayos rápidos, económicos y sencillos que evalúan la actividad biológica de rituximab utilizando células cultivadas con CD20 + . Estos ensayos pueden incluirse como parte del ejercicio de comparabilidad para los candidatos biosimilares de rituximab.

Protocol

1. Evaluación de la unión de diana por citometría de flujo Preparación de materiales biológicos y reactivos Hacer 500 mL de medio de cultivo RPMI suplementado con 10% de suero fetal bovino inactivado por calor (H-IFBS). Cultivo de linfoma Daudi Burkitt (Daudi) y células Daudi GFP + usando RPMI y frascos de cultivo de 75 cm2. Mantener los cultivos a 37 ° C en una atmósfera humidificada al 5% de CO2 hasta que alcancen 6 – 9 x 105 células / ml. Ha…

Representative Results

Usando los protocolos descritos anteriormente, se comparó la unión de diana y la inducción de CDC de rituximab de referencia en paralelo con las de un rituximab biosimilar producido y comercialmente disponible en Asia. En las células de Daudi, ambos mAbs se unieron a CD20 de una manera dependiente de la concentración ( Figura 1D ). Las regresiones no lineales de datos de unión mostró un r 2 d…

Discussion

La expiración de la patente de un mAb terapéutico está promoviendo el desarrollo de los biosimilares. Por lo tanto, existe una necesidad de métodos simples que pueden identificar diferencias en las actividades de relevancia clínica de estos productos. Se emplearon células CD20 + cultivadas para la evaluación de dos características funcionales clave de rituximab: unión a la diana y la inducción CDC. La actividad anterior requiere el reconocimiento de CD20 por la región Fab del mAb, mientras que el ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores no tienen reconocimientos.

Materials

RPMI-1640 medium ATCC 30-2001 Modify the culture depending on the cell line
Trypan Blue solution Sigma T8154 0.4%, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture
Daudi Burkitt's Lymphoma Cells ATCC CCL-213 You can modify the cell line depending on the antibody of interest
Fetal bovine serum(FBS) GIBCO 16000-044 You can modify the source of serum depending of requirements of the cell line
Normal Human Serum Complement Quidel A113 It is therefore appropriate for use in biocompatibility experiments including drug development, biomaterials testing and other applications
7AA-D BDPharmigen 559925 You can use broad range of color options, compatible with most instrument configurations for to analyze viability.
PECy5 Mouse Anti-human IgG BDPharmigen 551497 Change fluorochrome depending on the filter and laser of your flow cytometer.
Human IgG Isotype Control ThermoFisher Scientific 07-7102 Change depending to mAb
BDCytofix BDPharmigen 554655 Flow Cytometry Fixation Buffer (1-4% formaldehyde or paraformaldehyde )
PBS pH 7.4 10X (Phosphate buffer saline) GIBCO 70011-044 Phosphatebuffer without Ca2+/Mg2+ [137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 8 mM Na2HPO4, 1.46 mM KH2PO4] and endotoxin free.
Cell culture plates 96 well, V-bottom Corning 29442-068 12 x 75 mm round bottom test tubes or 96-well V- or U- bottom microtiter plates
MabThera (Rituximab) Roche Reference product
Rituximab Indian Biosimilar product
15- or 50-mL conical centrifuge tubes Corning 430290 or 430052
Pipette Tips Eppendorf Multiple volume configurations are necessary
Pipettes Eppendorf Adjustable-volume pipettes are necessary
Centrifuge 5430/ 5430R model Eppendorf Refrigerated variable-speed centrifuge (4 to 25 ° C) with speeds ranging from 10 to 30,130 × g
Flow cytometer BD Dickinson BD FACSAria III or other flow cytometer
Olympus optical and light microscope Olympus To quantify and evaluate cell growth
Incubator SANYO Incubatorfor temperature andCO2 control to culture cells
Biological Safety Cabinet CHC BIOLUS Biological safety cabinet that is used to protect the researcher, product and environment.

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Salinas-Jazmín, N., González-González, E., Vásquez-Bochm, L. X., Pérez-Tapia, S. M., Velasco-Velázquez, M. A. In Vitro Methods for Comparing Target Binding and CDC Induction Between Therapeutic Antibodies: Applications in Biosimilarity Analysis. J. Vis. Exp. (123), e55542, doi:10.3791/55542 (2017).

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