Summary

התפתחות ביוסנסור אלקטרוכימי דנ א כדי לזהות חיידק והקאה

Published: June 03, 2018
doi:

Summary

פרוטוקול לפיתוח ביוסנסור אלקטרוכימי DNA הכוללת של אלקטרודות פחמן חלקיקי-לאחרונה, המסך המודפס מיוצב חומצה, זהב polylactic לזהות ויבריו parahaemolyticus מוצג.

Abstract

ויבריו parahaemolyticus (V. parahaemolyticus) הוא. חיידק נפוץ והקאה אשר תורם חלק ניכר של בעיות בריאות הציבור ברחבי העולם, באופן משמעותי משפיע על הקצב של האדם תמותה ותחלואה קרדיווסקולרית. שיטות קונבנציונליות איתור נ’ parahaemolyticus כגון שיטות מבוססות-תרבות, מבחני אימונולוגי מולקולרי המבוסס על שיטות דורשים טיפול מסובך לדוגמה, זמן רב, מייגע, ויקרות. לאחרונה, ביולוגיים הוכיחו להיות שיטה לזיהוי מבטיח ומקיף עם היתרונות של זיהוי מהיר, משתלמת, ו המעשיות. מחקר זה מתמקד בפיתוח שיטה מהירה של גילוי נ’ parahaemolyticus סלקטיביות גבוהה ורגישות שימוש בעקרונות ה-DNA הכלאה. עבודה, אפיון polylactic מסונתז מיוצב חומצה חלקיקי זהב (PLA-AuNPs) הושג באמצעות קרני רנטגן (XRD), ספקטרוסקופיה הגלוי אולטרה סגול (UV-Vis), הילוכים מיקרוסקופ אלקטרונים (TEM), פליטת שדה מיקרוסקופ אלקטרונים סריקה (FESEM), וולטמטריה ציקלית (CV). אנחנו גם ביצעו בדיקה נוספת של יציבות, רגישות הפארמצבטית של ה-PLA-AuNPs. . מצאנו ה-PLA AuNPs נוצר מבנה הקול של חלקיקים מיוצב בתמיסה המימית. גם הבחנו כי שיפרה הרגישות כתוצאה ערך התנגדות (Rct) קטן יותר תשלום העברה, גידול של פעיל שטח (2ס מ 0.41). פיתוח ביוסנסור הדנ א שלנו מבוססת על שינוי של אלקטרודות פחמן המסך המודפס (SPCE) עם ה-PLA-AuNPs ושימוש מתילן כחול (MB) כאינדיקטור חמצון-חיזור. אנחנו לאומדן האירועים הנייח והכלאה הדופק דיפרנציאלי voltammetry (DPV). מצאנו כי משלימים, שאינם משלימים, oligonucleotides לא תואמת במיוחד היו מכובדים על ידי החיישן מפוברק. זה הראה גם זיהוי רגיש בצורה אמינה במחקרים אשיג נגד פתוגנים שונים שמקורם במזון, הזיהוי של נ’ parahaemolyticus בתוך הלב טריים.

Introduction

נושא מרכזי של הדיון הציבורי ומדעיים בשנים האחרונות, הרעלת מזון היא מזוהה בעיקר עם שלושה סוכנים: מיקרואורגניזמים1, כימיקלים2וטפילים3. מזון מזוהם עלול לגרום לתוצאות בריאות רציניות בבני אדם, במיוחד אצל קבוצת סיכון גבוה יותר של אלה עם מערכות החיסון חלשה, נשים בהריון, קשישים, תינוקות, ילדים צעירים4. עם יותר ממיליון מקרים של שלשול אקוטי המתרחשים מדי שנה אצל ילדים מתחת לגיל 5 שנים ב אפריקה, אסיה, אמריקה הלטינית, הרעלת מזון היא מחלה הגלובלית הגדולות5,6 , הקימה ארגון הבריאות העולמי מיקרואורגניזמים כמו התורם החשוב ביותר7. ויבריו parahaemolyticus בולטת בין זנים מידבק ביותר המוכר. בדרך כלל שנמצאו לאורך החוף, estuarine, ימית סביבות8, הוא חיידק גראם שליליים, אשר הופכת לפעילה בסביבות מלח גבוהה, והוא גורם להרעלתו אנושי רציני כאשר אוכלים מבושל כראוי, כושלת או raw ימית מוצרים9. בנוסף, קיימים מצבים רפואיים אצל אנשים מסוימים להפוך אותם נוטה פצע הזיהום זיהום, ספטיסמיה או האוזן הנובעים נ’ parahaemolyticus10. הגורמים התקפה אלימה של נ’ parahaemolyticus hemolysins נחלקים לשני סוגים אשר לתרום בפתוגנזה המחלה: thermostable המוליזין ישירה (TDH) מקודד על ידי הגנים tdh ולאחר הקשורות TDH המוליזין מקודד על ידי גנים trh11. הקריטריונים התקפה אלימה (גנים tdh ו- trh) של parahaemolyticus (פ’) נמצאים בעיקר דגימות קליניות, במקום דגימות סביבתיים.

(פ’) parahaemolyticus יש את היכולת לשרוד תחת מגוון רחב של תנאים, להגיב במהירות על שינויים סביבתיים12. מנגנון התפשטות שלה מסלים את פוטנציאל הסיכון שלו ככל שלה רעילות במקביל תא המוני13. חמור מכך, שינוי האקלים מספקת חיידקים אלה בתנאים בשפע כדי להאיץ את הצמיחה שלהם האוכלוסייה תא14. בשל תדירותו גבוהה, נ’ parahaemolyticus צריך להיות במעקב לאורך שרשרת אספקת המזון, במיוחד בתחום הסחר והייצור של פירות ים מאז מוצרים אלה הם שבו הם נמצאים בכמויות עצומות15,16 ברחבי העולם. כיום החיידקים מזוהות ואת וזמינותו מבודדים באמצעות מגוון של שיטות כולל בדיקות ביוכימיות, העשרה, מדיה סלקטיבי17, מקושרים-אנזים immunomagnetic sorbent (אליסה)18, הדופק-שדה בג’ל (PFGE) 19התלכדות לייטקס בדיקות, בדיקות פולימראז תגובת שרשרת (PCR)20. שיטות אלו דורשות בדרך כלל מוסמכים, מכשירים מתוחכמים וטכניקות מפרך אשר אינם מספקים מידע אודות זיהום באופן מיידי. זה קשות מגביל את הסבירות מיד גילוי זיהום מזיקים ויישומים באתר. כלי איתור מהיר עדיין מהווה אתגר יוצא מן הכלל.

Biosensing מתגלה כאופציה מבטיחה איתור והקאה פתוגנים משום שהיא מציעה לחיסכון בזמן, חסכונית, מעשית, בזמן אמת וניתוח בשיטת21,22,23,24 . עם זאת, אמנם היו תוצאות חיוביות רבות של analyte בזיהוי כל פתרון באמצעות ביולוגיים ודוגמאות מחודדים, יש עדיין חוסר מחקר חלה על דוגמאות אמיתיות או תערובות מימית או תמציות אורגניות25. לאחרונה, ביולוגיים אלקטרוכימי באמצעות זיהוי ישיר ו/או עקיף חומצה deoxyribonucleic (DNA) קיבלו תשומת לב מוגברת בקרב מדענים, עקב שלהם זיהוי ספציפי של המטרה משלימים באמצעות אירוע הכלאה26 , 27 , 28 , 29. גישות ייחודיות אלה יציבים יותר בהשוואה ביולוגיים מבוססי אנזים, ובכך מציע טכנולוגיה מבטיח המזעור, מסחור. המטרה של המחקר דיווח הנה כדי לבנות כלי מהיר יכול לזהות נ’ parahaemolyticus עם סלקטיביות גבוהה, רגישות, מעשיות, המבוססת על רצף ה-DNA יחודיות במהלך הכלאה. זיהוי אסטרטגיות כוללות השילוב של חומצה מיוצב חלקיקי זהב (PLA-AuNPs) polylactic30 ואלקטרודות פחמן המסך המודפס (SPCEs) בנוכחות מחוון הכלאה, מתילן כחול (MB). הפוטנציאל של הבונה הזיהוי מפותחת הוא חקר נוסף באמצעות חיידקים דגימות די אן איי פשוט נתעלף lysate ורענן.

Protocol

הערה: כל ריאגנטים כימי וביוכימי כדי לשמש צריך להיות של כיתה אנליטית, ללא טיהור נוסף. להכין את כל הפתרונות באמצעות מים יונים סטרילי. אוטוקלב כל כלי זכוכית לפני העיקור. התראה: אנא השתמש כל נוהלי בטיחות המתאים בעת ביצוע פעילויות מעבדה, כולל את השימוש הנדסה פקדים (fume הוד, הכפפות), ?…

Representative Results

היווצרות AuNPs התגלה באמצעות בשינוי הצבע של התמיסה המימית עם סודיום ציטרט הנוכחי. זה גרם את הצבע לשנות מן צהוב בהיר אדום רובי עמוק. הדור של ה-PLA-AuNPs אושרה של ספקטרום UV-vis (איור 1) שבו הצמיחה של הפסגה תהודה (SPR) משטח פלזמון נמצאה כ 540 nm. היווצרות ואת קיומו של ה-PLA-AuNPs ה…

Discussion

השלבים הקריטיים במסגרת להתפתחותן של סוג זה של ביוסנסור אלקטרוכימי הם מבחר אלמנטים המתאימים זיהוי ביולוגי המתמר (חומצת גרעין או DNA כאן); הגישה כימיים עבור בניית השכבה חישה של המתמר; התמרה חושית חומר; אופטימיזציה של ה-DNA הנייח, הכלאה; ואימות החיישן מפותחת באמצעות דוגמאות אמיתיות.

<p class="jove_cont…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים רוצה להכיר את התמיכה של מלזיה Universiti Putra.

Materials

Acetic acid Merck 100056
Chloroform Merck 102445
Diaminoethane tetraacetic acid Promega E5134
Dibasic sodium phosphate  Sigma-Aldrich S9763
Disodium hydrogen phosphate Sigma-Aldrich 255793
Ethanol  Sigma-Aldrich 16368
Gold (III) chloride trihydrate Sigma-Aldrich 520918
Hydrochloric acid Merck 100317
Methylene blue Sigma-Aldrich M44907
Monobasic sodium phosphate, monohydrate Sigma-Aldrich S3522
Phosphate-buffered saline Sigma-Aldrich P5119
Poly(lactic acid) resin, commercial grade 4042D NatureWorks 4042D
Potassium chloride R&M Chemicals 59435
Potassium dihydrogen phosphate Sigma-Aldrich P9791
Potassium hexacyanoferrate III R&M Chemicals 208019
Sodium acetate anhydrous salt Sigma-Aldrich S2889
Sodium chloride Sigma-Aldrich S9888
Trisodium citrate Sigma-Aldrich S1804
Tris(hydroxymethyl) aminomethane Fisher Scientific T395-100
Tris-Base Fisher Scientific BP152-500
2X PCR Master Mix with Dual-Dye Norgen Biotek 28240
Agarose gel Merck 101236
Bolton Agar Merck 100079
Bolton Broth Merck 100079
CHROMagar Vibrio CHROMagar VB910
dNTPs Promega U1511
Nuclease-free water Thermo Scientific R0581
Eosin methylene blue agar  Merck 101347
GelRed Biotium 41001
Glycerol Merck 104092
Go Taq Buffer Promega M7911
Loading dye 100 bp DNA ladder Promega G2101
Loading dye 1kb DNA ladder Promega G5711
Magnesium chloride Promega 91176
Mannitol egg yolk polymyxin agar Merck 105267
McConkey Agar Merck 105465
Nutrient Broth Merck 105443
Taq polymerase Merck 71003
Trypticase Soy Broth Merck 105459
Trypticase Soy Agar Merck 105458

Riferimenti

  1. Gould, L. H., Rosenblum, I., Nicholas, D., Phan, Q., Jones, T. F. Contributing factors in restaurant-associated foodborne disease outbreaks, FoodNet sites, 2006 and 2007. Journal of Food Protection. 76, 1824-1828 (2013).
  2. Arvanitoyannis, I. S., Kotsanopoulos, K. V., Papadopoulou, A. Rapid detection of chemical hazards (toxins, dioxins, and PCBs) in seafood. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 54, 1473-1528 (2014).
  3. Robertson, L. J., Sprong, H., Ortega, Y. R., van der Giessen, J. W. B., Fayer, R. Impacts of globalisation on foodborne parasites. Trends in Parasitology. 30, 37-52 (2014).
  4. Sandilands, E. A., Bateman, D. N. The epidemiology of poisoning. Medicina. 44, 76-79 (2016).
  5. Boschi-Pinto, C., Velebit, L., Shibuya, K. Estimating child mortality due to diarrhoea in developing countries. Bulletin of the World Health Organization. 86, 710-717 (2008).
  6. Farthing, M. J. G. Diarrhoea: A Significant Worldwide Problem. International Journal of Antimicrobial Agents. 14, 65-69 (2000).
  7. World Health Organization. . WHO estimates of the global burden of foodborne diseases: foodborne disease burden epidemiology reference group 2007-2015. , 1-255 (2015).
  8. Yeung, M., Boor, K. Epidemiology, pathogenesis, and prevention of foodborne Vibrio parahaemolyticus infections. Foodborne Pathogens and Disease. 1, 74-88 (2004).
  9. Sakazaki, R., Cliver, D. O., Riemann, H. P. . Foodborne Diseases. , 127-136 (2002).
  10. Grochowsky, J., Odom, S. R., Akuthota, P., Stead, W. Primary Septicemia and Abdominal Compartment Syndrome From Vibrio parahaemolyticus Infection in a 40-Year-Old Patient With No Known Immunocompromise. Infectious Disease in Clinical Practice. 22, (2013).
  11. Raghunath, P. Roles of thermostable direct hemolysin (TDH) and TDH-related hemolysin (TRH) in Vibrio parahaemolyticus. Frontiers in Microbiology. 5, 805 (2014).
  12. Kalburge, S. S., Whitaker, W. B., Boyd, E. F. High-Salt Preadaptation of Vibrio parahaemolyticus Enhances Survival in Response to Lethal Environmental Stresses. Journal of Food Protection. 77, 246-253 (2014).
  13. Esteves, K., Hervio-Heath, D., Mosser, T., Rodier, C., Tournoud, M. G., Jumas-Bilak, E., Colwell, R. R., Monfort, P. Rapid proliferation of Vibrio parahaemolyticus, Vibrio vulnificus, and Vibrio cholerae during freshwater flash floods in French Mediterranean Coastal lagoons. Applied and Environmental Microbiology. 81, 7600-7609 (2015).
  14. Khandeparker, L., Anil, A. C., Naik, S. D., Gaonkar, C. C. Daily variations in pathogenic bacterial populations in a monsoon influenced tropical environment. Marine Pollution Bulletin. 96, 337-343 (2015).
  15. Caburlotto, G., Suffredini, E., Toson, M., Fasolato, L., Antonetti, P., Zambon, M., Manfrin, A. Occurrence and molecular characterization of Vibrio parahaemolyticus in crustaceans commercialised in Venice area, Italy. International Journal of Food Microbiology. 220, 39-49 (2016).
  16. Wong, H. C., Chen, M. C., Liu, S. H., Liu, D. P. Incidence of highly genetically diversified Vibrio parahaemolyticus in seafood imported from Asian countries. International Journal of Food Microbiology. 52, 181-188 (1999).
  17. Rosec, J. P., Causse, V., Cruz, B., Rauzier, J., Carnat, L. The international standard ISO/TS 21872-1 to study the occurence of total and pathogenic Vibrio parahaemolyticus and Vibrio cholerae in seafood: ITS improvement by use of a chromogenic medium and PCR. International Journal of Food Microbiology. 157, 189-194 (2012).
  18. Maniyankode, R. A., Kingston, J. J., Murali, H. S., Batra, H. V. Specific identification of vibrio parahaemolyticus employing monoclonal antibody based immunoassay. International Journal of Pharmacy and Biological Sciences. 4 (2), B156-B164 (2013).
  19. Suffredini, E., Lopez-Joven, C., Maddalena, L., Croci, L., Roque, A. Pulsed-field gel electrophoresis and PCR characterization of environmental Vibrio parahaemolyticus strains of different origins. Applied and Environmental Microbiology. 77, 6301-6304 (2011).
  20. Bhattacharyya, N., Hou, A. A pentaplex PCR assay for detection and characterization of Vibrio vulnificus and Vibrio parahaemolyticus isolates. Letters in Applied Microbiology. 57, 233-240 (2013).
  21. da Silva, E. T. S. G., et al. Electrochemical Biosensors in Point-of-Care Devices: Recent Advances and Future Trends. ChemElectroChem. 4 (4), 778-794 (2017).
  22. Nordin, N., Yusof, N. A., Abdullah, J., Radu, S., Hushiarian, R. Sensitive detection of multiple pathogens using a single DNA probe. Biosensors and Bioelectronics. 86, 398-405 (2016).
  23. Nordin, N., Yusof, N. A., Abdullah, J., Radu, S., Hushiarian, R. A simple, portable, electrochemical biosensor to screen shellfish for Vibrio parahaemolyticus. AMB Express. 7 (1), 41 (2017).
  24. Zhang, J., Li, Z., Zhang, H., Wang, J., Liu, Y., Chen, G. Rapid detection of several foodborne pathogens by F0F1-ATPase molecular motor biosensor. Journal of Microbiological Methods. 93, 37-41 (2013).
  25. Barsan, M. M., Ghica, E. M., Brett, C. M. A., Nikolelis, D. P., Varzakas , T., Erdem, A., Nikoleli, G. P. . Portable biosensing of food toxicants and environmental pollutants. , 33-69 (2014).
  26. Kwun, J., Yun, S., Park, L., Lee, J. H. Development of 1,1′-oxalyldiimidazole chemiluminescent biosensor using the combination of graphene oxide and hairpin aptamer and its application. Talanta. 119, 262-267 (2014).
  27. Thavanathan, J., Huang, N. M., Thong, K. L. Colorimetric biosensing of targeted gene sequence using dual nanoparticle platforms. International Journal of Nanomedicine. 10, 2711-2722 (2015).
  28. Hushiarian, R., Yusof, N. A., Abdullah, A. H., Ahmad, S. A. A., Dutse, S. W. Facilitating the indirect detection of genomic DNA in an electrochemical DNA biosensor using magnetic nanoparticles and DNA ligase. Analytical Chemistry Research. 6, 17-25 (2015).
  29. Dutse, S. W., Yusof, N. A., Ahmad, H., Hussein, M. Z., Zainal, Z., Hushiarian, R., Hajian, R. An Electrochemical Biosensor for the Determination of Ganoderma boninense Pathogen Based on a Novel Modified Gold Nanocomposite Film Electrode. Analytical Letters. 47 (5), 819-832 (2014).
  30. Nordin, N., Yusof, N. A., Abdullah, J., Radu, S., Hajian, R. Characterization of Polylactide-Stabilized Gold Nanoparticles and Its Application in the Fabrication of Electrochemical DNA Biosensors. Journal of the Brazilian Chemical Society. 27 (9), 1679-1686 (2016).
  31. Vongkamjan, K., Wang, S., Moreno Switt, A. I. Rapid detection of foodborne bacterial pathogens in seafood. Handbook of Seafood: Quality and Safety Maintenance and Applications. , 247-257 (2016).
  32. Wang, F., Jiang, L., Yang, Q., Han, F., Chen, S., Pu, S., Vance, A., Ge, B. Prevalence and antimicrobial susceptibility of major foodborne pathogens in imported seafood. Journal of Food Protection. 74 (9), 1451-1461 (2011).
  33. Szermer-Olearnik, B., Sochocka, M., Zwolinska, K., Ciekot, J., Czarny, A., Szydzik, J., Kowalski, K., Boratynski, J. Comparison of microbiological and physicochemical methods for enumeration of microorganisms. Postepy Higieny i Medycyny Doswiadczalnej. 68, 1392-1396 (2014).
  34. Ivanov, I. G., Bachvarov, D. R. Determination of plasmid copy number by the "boiling" method. Analytical Biochemistry. 165 (1), 137-141 (1987).
  35. Gopireddy, V. R. Biochemical tests for the identification of bacteria. International Journal of Pharmacy and Technology. 3 (4), 1536-1555 (2011).
  36. Böhme, K., Fernández-No, I. C., Pazos, M., Gallardo, J. M., Barros-Velázquez, J., Cañas, B., Calo-Mata, P. Identification and classification of seafood-borne pathogenic and spoilage bacteria: 16S rRNA sequencing versus MALDI-TOF MS fingerprinting. Electrophoresis. 34 (6), 877-887 (2013).
  37. Seoudi, R., Fouda, A. A., Elmenshawy, D. A. Synthesis, characterization and vibrational spectroscopic studies of different particle size of gold nanoparticle capped with polyvinylpyrrolidone. Physica B: Condensed Matter. 405, 906-911 (2010).
  38. Mishra, A., Harper, S., Yun, S. I. Interaction of biosynthesized gold nanoparticles with genomic DNA isolated from E. coli and S. aureus. Nanotechnology (IEEE-NANO). , 1745-1750 (2011).
  39. Sugimoto, T. Formation of modoispersed nano- and micro-particles controlled in size, shape, and internal structure. Chemical Engineering and Technology. 26, 313-321 (2003).
  40. Rath, C., Sahu, K. K., Kulkarni, S. D., Anand, S., Date, S. K., Das, R. P., Mishra, N. C. Microstructure-dependent coercivity in monodispersed hematite particles. Applied Physics Letters. 75, 4171-4173 (1999).
  41. Abbas, M., Wu, Z. Y., Zhong, J., Ibrahim, K., Fiori, A., Orlanducci, S., Sessa, V., Terranova, M. L., Davoli, I. X-ray absorption and photoelectron spectroscopy studies on graphite and single-walled carbon nanotubes: Oxygen effect. Applied Physics Letters. 87 (5), 051923 (2005).
  42. Lim, S. C., Choi, Y. C., Jeong, H. J., Shin, Y. M., An, K. H., Bae, D. J., Lee, Y. H., Lee, N. S., Kim, J. M. Effect of gas exposure on field emission properties of carbon nanotubes arrays. Advanced Materials. 13, 1563-1567 (2001).
  43. Kim, B. H., Kim, B. R., Seo, Y. G. A study on adsorption equilibrium for oxygen and nitrogen into carbon nanotubes. Adsorption. 11, 207-212 (2005).
  44. Bard, A. J., Faulkner, L. R. . Electrochemical methods: Fundamentals and applications. , (2000).
  45. Tan, Q., Wang, L., Ma, L., Yu, H., Ding, J., Liu, Q., Xiao, A., Ren, G. Study on anion electrochemical recognition based on a novel ferrocenyl compound with multiple binding sites. Journal of Physical Chemistry B. 112, 11171-11176 (2008).
  46. Manivannan, S., Ramaraj, R. Polymer-embedded gold and gold/silver nanoparticle-modified electrodes and their applications in catalysis and sensors. Pure and Applied Chemistry. 83, 2041-2053 (2011).
  47. Benali, O., Larabi, L., Traisnel, M., Gengembre, L., Hareka, Y. Electrochemical, theoretical and XPS studies of 2-mercapto-1-methylimidazole adsorption on carbon steel in 1 M HClO4. Applied Surface Science. 253, 6130-6139 (2007).
  48. Shi, Y., Wen, L., Li, F., Cheng, H. M. Nanosized Li4Ti5O12/graphene hybrid materials with low polarization for high rate lithium ion batteries. Journal of Power Sources. 196, 8610-8617 (2011).
  49. Bentiss, F., Traisnel, M., Lagrenee, M. The substituted 1,3,4-oxadiazoles: a new class of corrosion inhibitors of mild steel in acidic media. Corrosion Science. 42, 127-146 (2000).
  50. Wang, M., Gong, W., Meng, Q., Zhang, Y. Electrochemical DNA impedance biosensor for the detection of DNA hybridization with polymeric film, single walled carbon nanotubes modified glassy carbon electrode. Russian Journal of Electrochemistry. 47, 1368-1373 (2011).
  51. Herdt, A. R., Drawz, S. M., Kang, Y., Taton, T. A. DNA dissociation and degradation at gold nanoparticle surfaces. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 51 (2), 130-139 (2006).
  52. Bhatt, N., Huang, P. J. J., Dave, N., Liu, J. Dissociation and degradation of thiol-modified DNA on gold nanoparticles in aqueous and organic solvents. Langmuir. 27, 6132-6137 (2011).
  53. Liu, X., Jang, C. H., Zheng, F., Jürgensen, A., Denlinger, J. D., Dickson, K. A., Raines, R. T., Abbott, N. L., Himpsel, F. J. Characterization of protein immobilisation at silver surfaces by near edge X-ray absorption fine structure spectroscopy. Langmuir. 22, 7719-7725 (2006).
  54. Willey, T. M., Andrew, L., Vance, T., Buuren, V., Bostedt, C., Terminello, L. J., Fadley, C. S. Rapid degradation of alkanethiol-based self-assembled monolayers on gold in ambient laboratory conditions. Surface Science. 576 (1), 188-196 (2005).
  55. Farjami, E., Clima, L., Gothelf, K., Ferapontova, E. E. DNA interactions with a Methylene Blue redox indicator depend on the DNA length and are sequence specific. Analyst. 135, 1443-1448 (2010).
  56. Lin, X., Ni, Y., Kokot, S. An electrochemical DNA-sensor developed with the use of methylene blue as a redox indicator for the detection of DNA damage induced by endocrine-disrupting compounds. Analytica Chimica Acta. 867, 29-37 (2015).
  57. Zhang, F. T., Nie, J., Zhang, D. W., Chen, J. T., Zhou, Y. L., Zhang, X. X. Methylene Blue as a G-Quadruplex Binding Probe for Label-Free Homogeneous Electrochemical Biosensing. Analytical Chemistry. 86, 9489-9495 (2014).
  58. Ning, L., Li, X., Yang, D., Miao, P., Ye, Z., Li, G. Measurement of Intracellular pH Changes Based on DNA-Templated Capsid Protein Nanotubes. Analytical Chemistry. 86, 8042-8047 (2014).
  59. Sani, N. D. M., Heng, L. Y., Surif, S., Lazim, A. M., Murad, A. . AIP Conference Proceedings. 1571, 636-640 (2013).
  60. Xu, P., Wang, J., Xu, Y., Chu, H., Shen, H., Zhang, D., Zhao, M., Liu, J., Li, G. Binding modes and interaction mechanism between different base pairs and methylene blue trihydrate: a quantum mechanics study. Advances in Experimental Medicine and Biology. 827, 187-203 (2015).
  61. Guo, Y., Chen, J., Chen, G. A label-free electrochemical biosensor for detection of HIV related gene based on interaction between DNA and protein. Sensors & Actuators, B: Chemical. 184, 113-117 (2013).
  62. Huang, K. J., Liu, Y. J., Wang, H. B., Wang, Y. Y., Liu, Y. M. Sub-femtomolar DNA detection based on layered molybdenum disulfide/multi-walled carbon nanotube composites, au nanoparticle and enzyme multiple signal amplification. Biosensors and Bioelectronics. 55, 195-202 (2014).
  63. Kong, R. M., Song, Z. L., Meng, H. M., Zhang, X. B., Shen, G. L., Yu, R. Q. A label-free electrochemical biosensor for highly sensitive and selective detection of DNA via a dual-amplified strategy. Biosensors and Bioelectronics. 54, 442-447 (2014).
  64. Rashid, J. I. A., Yusof, N. A., Abdullah, J., Hashim, U., Hajian, R. Novel Disposable Biosensor Based on SiNWs/AuNPs Modified-Screen Printed Electrode for Dengue Virus DNA Oligomer Detection. IEEE Sensors Journal. 15, 4420-4421 (2015).
  65. Yingkajorn, M., Sermwitayawong, N., Palittapongarnpimp, P., Nishibuchi, M., Robins, W. P., Mekalanos, J. J., Vuddhakul, V. Vibrio parahaemolyticus and its specific bacteriophages as an indicator in cockles (Anadara granosa) for the risk of V. parahaemolyticus infection in Southern Thailand. Microbial Ecology. 67, 849-856 (2014).
  66. Ahmad Ganaie, H., Ali, M. N. Short term protocol for the isolation and purification of DNA for molecular analysis. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research. 24, 266-270 (2014).
  67. Nakano, K., Kimura, T., Kitamura, Y., Ihara, T., Ishimatsu, R., Imato, T. Potentiometric DNA sensing platform using redox-active DNA probe pair for sandwich-type dual hybridization at indicator electrode surface. Journal of Electroanalytical Chemistry. 720-721, 71-75 (2014).
  68. Yang, J., Jim Yang, L., Heng-Phon, T., Gan-Moog, C. Inhibition of DNA hybridization by small metal nanoparticles. Biophysical Chemistry. 120, 87-95 (2006).
  69. Niu, L. M., Liu, F., Wang, W., Lian, K. Q., Ma, L., Shi, H. M., Kang, W. J. Electrochemical Behavior of Paraquat on a Highly Ordered Biosensor Based on an Unmodified DNA-3D Gold Nanoparticle Composite and Its Application. Electrochimica Acta. 153, 190-199 (2015).
  70. Li, Z., Miao, X., Xing, K., Zhu, A., Ling, L. Enhanced electrochemical recognition of double-stranded DNA by using hybridization chain reaction and positively charged gold nanoparticles. Biosensors and Bioelectronics. 74, 687-690 (2015).
  71. Niu, S., Sun, J., Nan, C., Lin, J. Sensitive DNA biosensor improved by 1,10-phenanthroline cobalt complex as indicator based on the electrode modified by gold nanoparticles and graphene. Sensors and Actuators B: Chemical. 176, 58-63 (2013).
  72. Yi, H., Xu, W., Yuan, Y., Bai, L., Wu, Y., Chai, Y., Yuan, R. A pseudo triple-enzyme cascade amplified aptasensor for thrombin detection based on hemin/G-quadruplex as signal label. Biosensors and Bioelectronics. 54, 415-420 (2014).
  73. Das, R., Sharma, M. K., Rao, V. K., Bhattacharya, B. K., Garg, I., Venkatesh, V., Upadhyay, S. An electrochemical genosensor for Salmonella typhi on gold nanoparticles-mercaptosilane modified screen printed electrode. Journal of Biotechnology. 188, 9-16 (2014).
  74. Han, X., Fang, X., Shi, A., Wang, J., Zhang, Y. An electrochemical DNA biosensor based on gold nanorods decorated graphene oxide sheets for sensing platform. Analytical Biochemistry. 443 (2), 117-123 (2013).
  75. Huang, K. J., Liu, Y. J., Zhang, J. Z., Cao, J. T., Liu, Y. M. Aptamer/Au nanoparticles/cobalt sulfide nanosheets biosensor for 17β-estradiol detection using a guanine-rich complementary DNA sequence for signal amplification. Biosensors and Bioelectronics. 67, 184-191 (2015).
check_url/it/56585?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Nordin, N., Yusof, N. A., Radu, S., Hushiarian, R. Development of an Electrochemical DNA Biosensor to Detect a Foodborne Pathogen. J. Vis. Exp. (136), e56585, doi:10.3791/56585 (2018).

View Video