Summary

ショウジョウバエメラノガスターの新しい神経保護遺伝子を同定する生体内前方遺伝スクリーン

Published: July 11, 2019
doi:

Summary

我々は、ショウジョウバエメラノガスターで神経変性を示す変異体のスクリーニングに前方遺伝的アプローチを用いてプロトコルを提示する。登山アッセイ、血管解析、遺伝子マッピング、DNAシーケンシングを組み込み、最終的に神経保護のプロセスに関連する新しい遺伝子を同定します。

Abstract

神経変性疾患の発症と進行について理解する多くがあります, 責任を負う基礎となる遺伝子を含む.化学変異原を用いた前方遺伝子スクリーニングは、ヒトと保存された細胞経路を共有するショウジョウバエおよび他のモデル生物の間で変異型を遺伝子にマッピングするための有用な戦略である。目的の変異遺伝子がハエの発達初期の段階で致死的でない場合、クライミングアッセイは、低上昇率などの脳機能低下の表現型指標をスクリーニングするために行うことができる。続いて、脳組織の二次組織学的解析は、神経変性型をスコアリングすることにより遺伝子の神経保護機能を検証するために行うことができる。遺伝子マッピング戦略には、これらの同じアッセイに依存するメオティックおよび欠乏マッピングが含まれており、その後にDNAシーケンシングを行い、目的の遺伝子におけるヌクレオチドの変化の可能性を特定することができます。

Introduction

ニューロンは、ほとんどの部分は有人性のポスト・マイトティックのためのものであり、1、2を分割することができません。ほとんどの動物では、神経保護機構は、特にニューロンが損傷に最も脆弱である老年期に、生物の寿命を通じてこれらの細胞を維持するために存在する。これらのメカニズムの基礎となる遺伝子は、神経変性を示す変異体、前方遺伝プロトコルを使用して、神経保護の喪失のための目の前の指標で同定することができる。エチルメタンスルホン酸エチル(EMS)やN-エチル-N-ニトロスア(ENU)などの化学変異を用いた前方遺伝スクリーンは、それらが誘発するランダムな点突然変異のために特に有用であり、本質的に公平なアプローチをもたらし、光を当てた本質的に公平なアプローチをもたらす真核生物モデル生物3,4,5における多数の遺伝子機能(対照的に、X線変異はDNA切断を作成し、点突然変異6ではなく再配列を引き起こす可能性がある)。

一般的なフルーツフライショウジョウバエメラノガスターは、その高品質、よくアノテートゲノム配列、高度に発達した遺伝的ツールを持つモデル生物としての長い歴史、そして最も重要な、その共有のために、これらの画面のための理想的な被験者です人間との進化史7,8.このプロトコルの適用性の制限要因は、変異した遺伝子によって引き起こされる早期致死性であり、これは9歳での試験を妨げるだろう。しかし、非致死的変異の場合、負のジオタキシスを利用する登山アッセイは、単純であるが、広範であるが、運動機能障害を定量化する方法10である。十分な運動反応性を示すために、ハエは方向を決定し、その位置を感知し、動きを調整するために神経機能に依存する。したがって、刺激に応答してハエが十分に上昇することができないことは、神経学的欠陥11を示すことができる。特定の欠陥クライミング表現型が同定されると、脳組織の組織学的分析などの二次スクリーンを用いてさらなる試験を行い、クライミング欠陥ハエにおける神経変性を同定するために使用することができる。その後の遺伝子マッピングは、目的の欠陥のある神経保護遺伝子を運ぶ染色体上のゲノム領域を明らかにするために使用することができる。目的の染色体領域を絞り込むため、染色体上に既知の位置を有する支配的なマーカー遺伝子を運ぶ変異型フライラインを用いたマイオティックマッピングを行うことができる。マーカー遺伝子は、2つの遺伝子座間の組み換えの頻度が遺伝子のおおよその位置をマッピングするために使用できる測定可能な距離を提供するように、突然変異の基準点として機能します。最後に、目的の染色体領域にバランスのとれた欠陥を運ぶ線と変異線を交差させるには、その既知の表現型が発現された場合に目的の遺伝子を検証できる補体試験が作成される。同定された遺伝子における多形性ヌクレオチド配列は、おそらくアミノ酸配列の変化をもたらし、遺伝子をシーケンシングし、それをショウジョウバエのゲノム配列と比較することによって評価することができる。目的の遺伝子のその後の特徴付けは、追加の変異性ア列のテスト、突然変異救助実験および追加の文型の検査を含むことができる。

Protocol

1. ハエの準備と老化 遺伝的スクリーンに使用されるショウジョウバエ変異体のコレクションを6を取得または生成します。ここでは、第2染色体にマッピングされ、CyO上でバランスがとれたENU変異線が用いられる。 トウモロコシ糖蜜培地上で25°C、12時間の光/暗いサイクルに設定されたインキュベーターで実験遺伝子型ラインを増幅します。 <…

Representative Results

このエアチクルでは、成人ハエにおける神経完全性の維持(例えば、神経保護)の維持に役割を果たす遺伝子脳腫瘍(ブラット)を同定するために用いられるステップを提示する17;神経保護に関与する遺伝子を同定するために使用できる方法論。我々は、前方遺伝的アプローチ(図1Aに概説されている戦略)を用いて、ク?…

Discussion

ショウジョウバエにおける前方遺伝スクリーンは、加齢依存性神経保護5、23、24、および、異なる生物学的プロセスに関与する遺伝子を同定するための効果的なアプローチであった。25.この戦略を用いて、我々は新しい神経保護遺伝子17としてブラットを同定するこ…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

私たちは、遺伝的スクリーンが行われた研究室で、神経保護遺伝子としてのブラットの同定と特徴付けを可能にしたバリー・ガネツキー博士に特に感謝しています。私たちは、この記事で提示された遺伝的スクリーンで使用されるENU変異ハエのコレクションを親切に提供してくれたスティーブン・ロビナウ博士に感謝します。ガネツキー研究所のメンバー、グレース・ボーコフ・ファルク博士、デビッド・ワッサーマン博士に感謝申し上げます。ウィスコンシン大学、キム・ラッキー博士、アラバマ大学光学分析施設

Materials

Major equipment
Fume hood for histology
Light Microscope Nikon Eclipe E100 Preferred objective for imaging is X20
Imaging software Nikon
Microscope Camera Nikon
Thermal cycler Eppendorf
Fly pushing and climbing assay
VWR® Drosophila Vial, Narrow VWR 75813-160
VWR® General-Purpose Laboratory Labeling Tape VWR 89097-912
Standard mouse pad
Stereoscope Motic Model SMZ-168
CO2 anesthesia station (Blowgun, foot valve, Ultimate Flypad) Genesee Scientific 54-104, 59-121, 59-172 Doesn’t iinclude CO2 tank
Fine-Tip Brushes SOLO HORTON BRUSHES, INC.
Drosophila Incubator VWR 89510-750
Gene mapping
CantonS Bloomington Drosophila Stock Center 9517
w1118 Bloomington Drosophila Stock Center 5905
yw  Bloomington Drosophila Stock Center 6599
Drosophila line used for recombination mapping Bloomington Drosophila Stock Center 3227 Genotype: wg[Sp-1] J[1] L[2] Pin[1]/CyO, P{ry[+t7.2]=ftz/lacB}E3
CyO/sno[Sco]  Bloomington Drosophila Stock Center 2555 Drosophila balancer line used for recombination mapping
Deficiency Kit for chromosome 2L Bloomington Drosophila Stock Center DK2L Cook et al., 2012
Histology analysis
Ethanol, (100%) Thermo Fischer Scientific A4094
Chloroform Thermo Fischer Scientific C298-500
Glacial Acetic Acid Thermo Fischer Scientific A38-500
Fisherbrand™ Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Thermo Fischer Scientific 05-408-129
Histochoice clearing agent 1X VWR Life Sciences 97060-934
Harris Hematoxylin VWR 95057-858
Eosin VWR 95057-848
Thermo Scientific™ Richard-Allan Scientific™ Mounting Medium Thermo Scientific™ 4112 22-110-610 CyO/sna[Sco]
Unifrost Poly-L-Lysine microscope slides, 75x25x1mm, EverMark Select Plus Azer Scientific
Fisherbrand™ Cover Glasses: Rectangles Fisherbrand 12-545M Dimensions: 24×60 mm
Traceable timer VWR
Slide Warmer Barnstead International model no. 26025
Slide tray and racks DWK Life Sciences Rack to hold 20 slides
Fisherbrand™ General-Purpose Extra-Long Forceps Fisherbrand 10-316A
Kimwipes™ Kimberly-Clark™ Professional 
6 inch Puritan applicators Hardwood Products Company, Guilford, Maine 807-12
VWR® Razor Blades VWR 55411-050
Tupperware or glass containers for histology liquids 16 + 1 for running water
High Profile Coated Microtome Blades VWR 95057-834
Corning™ Round Ice Bucket with Lid, 4L Corning™
Beaker Or other container for ice water and cassettes
Tissue Bath Precision Scientific Company 66630
Microtome Leica Biosystems
Molecular analysis
Wizard® SV Gel and PCR Clean-Up System Promega A9282
Ex Taq DNA polymerase TaKaRa 5 U/μl
Invitrogen™ SYBR™ Safe™ DNA Gel Stain   Invitrogen™
UltraPure™ Agarose  Invitrogen™
1 Kb Plus DNA Ladder  Invitrogen™
ApE-A plasmid Editor software Available for free download
Statistical analysis
R software package
Further analysis
y[1] w[*]; wg[Sp-1]/CyO; Dr[1]/TM3, Sb[1] Bloomington Drosophila Stock Center 59967

Riferimenti

  1. Frade, J. M., Ovejero-Benito, M. C. Neuronal cell cycle: the neuron itself and its circumstances. Cell Cycle. 14 (5), 712-720 (2015).
  2. Aranda-Anzaldo, A. The post-mitotic state in neurons correlates with a stable nuclear higher-order structure. Communicative & Integrative Biology. 5 (2), 134-139 (2012).
  3. Haelterman, N. A., et al. Large-scale identification of chemically induced mutations in Drosophila melanogaster. Genome Res. 24 (10), 1707-1718 (2014).
  4. Moresco, E. M., Li, X., Beutler, B. Going forward with genetics: recent technological advances and forward genetics in mice. The American Journal of Pathology. 182 (5), 1462-1473 (2013).
  5. St Johnston, D. The art and design of genetic screens: Drosophila melanogaster. Nature Reviews Genetics. 3 (3), 176-188 (2002).
  6. Greenspan, R. J. . Fly pushing: The theory and practice of Drosophila genetics. , (2004).
  7. Reiter, L. T., Potocki, L., Chien, S., Gribskov, M., Bier, E. A systematic analysis of human disease-associated gene sequences in Drosophila melanogaster. Genome Research. 11 (6), 1114-1125 (2001).
  8. Rubin, G. M., et al. Comparative genomics of the eukaryotes. Science. 287 (5461), 2204-2215 (2000).
  9. Nichols, C. D., Becnel, J., Pandey, U. B. Methods to assay Drosophila behavior. Journal of Visualized Experiments. (61), (2012).
  10. Ali, Y. O., Escala, W., Ruan, K., Zhai, R. G. Assaying locomotor, learning, and memory deficits in Drosophila models of neurodegeneration. Journal of Visualized Experiments. (49), (2011).
  11. Karres, J. S., Hilgers, V., Carrera, I., Treisman, J., Cohen, S. M. The conserved microRNA miR-8 tunes atrophin levels to prevent neurodegeneration in Drosophila. Cell. 131 (1), 136-145 (2007).
  12. Helfrich, C., Engelmann, W. Circadian-Rhythm of the Locomotor-Activity in Drosophila-Melanogaster and Its Mutants Sine Oculis and Small Optic Lobes. Physiological Entomology. 8 (3), 257-272 (1983).
  13. R Development Core Team. . R: A language and environment for statistical computing. , (2008).
  14. Bokel, C. EMS screens : from mutagenesis to screening and mapping. Methods in Molecular Bioogyl. 420, 119-138 (2008).
  15. Lindsley, D. L., Zimm, G. G. . The Genome of Drosophila Melanogaster. , (1992).
  16. Cook, R. K., et al. The generation of chromosomal deletions to provide extensive coverage and subdivision of the Drosophila melanogaster genome. Genome Biology. 13 (3), R21 (2012).
  17. Loewen, C., Boekhoff-Falk, G., Ganetzky, B., Chtarbanova, S. A Novel Mutation in Brain Tumor Causes Both Neural Over-Proliferation and Neurodegeneration in Adult Drosophila. Genes Genomes Genetics G3 (Bethesda). 8 (10), 3331-3346 (2018).
  18. Gloor, G. B., et al. Type I repressors of P element mobility. Genetica. 135 (1), 81-95 (1993).
  19. Komori, H., Xiao, Q., McCartney, B. M., Lee, C. Y. Brain tumor specifies intermediate progenitor cell identity by attenuating beta-catenin/Armadillo activity. Development. 141 (1), 51-62 (2014).
  20. Kretzschmar, D., Hasan, G., Sharma, S., Heisenberg, M., Benzer, S. The swiss cheese mutant causes glial hyperwrapping and brain degeneration in Drosophila. The Journal of Neuroscience. 17 (19), 7425-7432 (1997).
  21. Kang, K. H., Reichert, H. Control of neural stem cell self-renewal and differentiation in Drosophila. Cell and Tissue Research. 359 (1), 33-45 (2015).
  22. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted Gene-Expression as a Means of Altering Cell Fates and Generating Dominant Phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  23. Loewen, C. A., Ganetzky, B. Mito-Nuclear Interactions Affecting Lifespan and Neurodegeneration in a Drosophila Model of Leigh Syndrome. Genetica. 208 (4), 1535-1552 (2018).
  24. Cao, Y., Chtarbanova, S., Petersen, A. J., Ganetzky, B. Dnr1 mutations cause neurodegeneration in Drosophila by activating the innate immune response in the brain. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (19), E1752-E1760 (2013).
  25. Lessing, D., Bonini, N. M. Maintaining the brain: insight into human neurodegeneration from Drosophila melanogaster mutants. Nature Reviews Genetics. 10 (6), 359-370 (2009).
  26. Peng, F., et al. Loss of Polo ameliorates APP-induced Alzheimer’s disease-like symptoms in Drosophila. Scientific Reports. 5, 16816 (2015).
  27. Venken, K. J., Bellen, H. J. Chemical mutagens, transposons, and transgenes to interrogate gene function in Drosophila melanogaster. Methods. 68 (1), 15-28 (2014).
  28. Gonzalez, M. A., et al. Whole Genome Sequencing and a New Bioinformatics Platform Allow for Rapid Gene Identification in D. melanogaster EMS Screens. Biology (Basel). 1 (3), 766-777 (2012).
  29. Palladino, M. J., Hadley, T. J., Ganetzky, B. Temperature-sensitive paralytic mutants are enriched for those causing neurodegeneration in drosophila. Genetica. 161 (3), 1197-1208 (2002).

Play Video

Citazione di questo articolo
Gevedon, O., Bolus, H., Lye, S. H., Schmitz, K., Fuentes-González, J., Hatchell, K., Bley, L., Pienaar, J., Loewen, C., Chtarbanova, S. In Vivo Forward Genetic Screen to Identify Novel Neuroprotective Genes in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (149), e59720, doi:10.3791/59720 (2019).

View Video