Summary

Isolering av exosome-beriket ekstracellulære vesikler som bærer granulocytt-makrofag kolonistimulerende faktor fra embryonale stamceller

Published: November 11, 2021
doi:

Summary

Denne studien beskriver en metode for å isolere eksosomberikede ekstracellulære vesikler som bærer immunstimulatorisk granulocytt makrofagkolonistimulerende faktorer fra embryonale stamceller.

Abstract

Embryonale stamceller (ESC) er pluripotente stamceller som er i stand til selvfornyelse og differensiering i alle typer embryonale celler. Som mange andre celletyper frigjør ESC-er små membran vesicles, for eksempel eksosomer, til det ekstracellulære miljøet. Eksosomer tjener som essensielle formidlere av intercellulær kommunikasjon og spiller en grunnleggende rolle i mange (pato)fysiologiske prosesser. Granulocytt-makrofag kolonistimulerende faktor (GM-CSF) fungerer som en cytokin for å modulere immunresponsen. Tilstedeværelsen av GM-CSF i eksosomer har potensial til å øke immunforsvaret. Her ble GM-CSF stabilt overekspressert i murine ESC-cellelinjen ES-D3. En protokoll ble utviklet for å isolere eksosole-berikede ekstracellulære vesikler av høy kvalitet (EVer) fra ES-D3-celler som overekspresserer GM-CSF. Isolerte eksosomberikede elbiler var preget av en rekke eksperimentelle tilnærminger. Det er viktig at betydelige mengder GM-CSF finnes i eksosomberikede elbiler. Totalt sett kan GM-CSF-bærende exosome-berikede EVer fra ESC-er fungere som cellefrie vesicles for å utøve sine immunregulerende aktiviteter.

Introduction

ESC er avledet fra blastocyststadiet av et preimplantasjonsembryo1. Som pluripotente stamceller har ESC evnen til å fornye seg selv og differensiere seg i alle typer embryonale celler. På grunn av deres bemerkelsesverdige utviklingspotensial og langsiktige proliferative kapasitet, er ESC-er ekstremt verdifulle for biomedisinsk forskning1. Nåværende forskningsinnsats har i stor grad fokusert på det terapeutiske potensialet til ESC for en rekke store patologiske lidelser, inkludert diabetes, hjertesykdom og nevrodegenerative sykdommer2,3,4.

Pattedyrceller, inkludert ESCer, er kjent for å frigjøre vesikler med variable størrelser til det ekstracellulære miljøet, og disse EVene har mange fysiologiske og patologiske funksjoner på grunn av deres rolle i intercellulær kommunikasjon5. Blant forskjellige undertyper av elbiler er eksosomer små membran vesicles frigjort fra ulike celletyper i det ekstracellulære rommet ved sammensmelting av mellomliggende endokytiske rom, multivesikulære legemer (MVB), med plasmamembranen6. Eksosomer har blitt rapportert å megle intercellulær kommunikasjon og er kritisk involvert i mange (pato)fysiologiske prosesser7,8. Eksosomer arver noen biologiske funksjoner fra sine egne foreldreceller, fordi eksosomer inneholder biologiske materialer anskaffet fra cytosolen, inkludert proteiner og nukleinsyrer. Dermed er de tilknyttede antigener eller faktorer som stimulerer immunresponsen som er spesifikk for en gitt sykdom, innkapslet i eksosomene fra bestemte typer celler9. Dette banet vei for kliniske studier som utforsket tumor-avledede eksosomer som en anti-kreftvaksine10.

GM-CSF er en cytokin utskilt av forskjellige typer immunceller11. Nye bevis viser at GM-CSF aktiverer og regulerer immunforsvaret og spiller en viktig rolle i antigen-presentasjonsprosessen12. For eksempel antyder en klinisk rapport at GM-CSF stimulerer immunresponsen på svulster som en vaksine adjuvant13. Flere GM-CSF-baserte kreftimmunoterapistrategier for å utnytte den potente immunstimulatoriske aktiviteten til GM-CSF har blitt undersøkt i kliniske studier14. Blant disse har en kreftvaksine sammensatt av bestrålede GM-CSF-utskillende tumorceller vist noe løfte hos avanserte melanompasienter ved å indusere cellulære og humorale antitumorresponser og påfølgende nekrose i metastaserte svulster15.

Fordi eksosomene avledet fra ESCs har lignende biologiske aktiviteter som de opprinnelige ESCene, kan kanskje GM-CSF-bærende eksosomer fra ESC-er fungere som cellefrie vesicles for å regulere immunresponsen. I dette dokumentet beskrives en detaljert metode for å produsere eksosomberikede elbiler av høy kvalitet fra ESC-er som uttrykker GM-CSF. Disse eksosomberikede ELBIL-ene har potensial til å fungere som immunregulerende vesikler for å modulere immunresponsen.

Protocol

1. Culturing ES-D3 celler For å generere exosome-fri foster bovint serum (FBS), last FBS inn i en ultracentrifuge og sentrifuge ved 100,000 x g i 16 timer ved 4 °C. Etter sentrifugering samler du serum supernatant som exosome-free FBS for å dyrke murine ESC celle linje ES-D3 og anskaffe exosome-beriket ELBILER. Før du plating ES-D3 celler, frakk 15 cm vev kultur retter ved hjelp av gelatin (0,1%) ved romtemperatur i 30 min. Etter en tidligere beskrevet protokoll<sup class="xref…

Representative Results

GM-CSF er overekspressert i murine ESCs.For å stabilt overekspressere GM-CSF i ES-D3-celler ble murine GM-CSF cDNA klonet til en transfeksjonsvektor for å generere uttrykksvektoren pEF1α-mGM-CSF-IRES-hrGFP (Figur 1A). GM-CSF ble overekspressert i ES-D3-celler ved transfeksjon, og omtrent 20% av forbigående transfekterte ES-D3-celler var GFP-positive. Cellekloner stabilt overekspresserende GM-CSF eller tom vektorkontro…

Discussion

Denne studien viser en svært effektiv metode for å produsere eksosomberikede elbiler som bærer immunstimulatorisk protein GM-CSF, som kan brukes til å studere immunmodulatoriske effekter av exosome-beriket EVs. Flere studier tyder på at eksosomer viser immunregulerende og anti-tumor funksjoner22. Dermed kan eksosomer fra ESC som uttrykker GM-CSF også ha biologiske aktiviteter som regulerer immunresponsen. I denne protokollen ble eksogen murin GM-CSF stabilt overekspressert i murine ES-D3-cel…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige til Mr. Arkadiusz Slusarczyk og Kentucky Biomedical Research Infrastructure Network (KBRIN, P20GM103436) for å skaffe overføringselektronmikroskopbilder. Dette arbeidet ble delvis støttet av tilskudd fra NIH AA018016-01 (J.W.E.), Commonwealth of Kentucky Research Challenge Trust Fund (J.W.E.), NIH CA106599 og CA175003 (C.L.), NIH CA198249 (K.Y.) og Free to Breathe Research Grant (K.Y.).

Materials

Alkaline phosphate, Calf Intestinal New England Biolabs M0290S Dephosphorylating DNA plasmid
anti-Annexin V mAb Santa Cruz Biotechnology clone H-3, sc-74438 Western blot, RRID:AB_1118989
anti-CD81 mAb Santa Cruz Biotechnology clone B-11, sc-166029 Western blot, RRID:AB_2275892
anti-cytochrome c mAb Santa Cruz Biotechnology clone A-8, sc-13156 Western blot, RRID:AB_627385
anti-Flotillin-1 mAb Santa Cruz Biotechnology clone C-2; sc-74566 Western blot, RRID:AB_2106563
anti-GAPDH pAb Rockland 600-401-A33S Western blot, RRID:AB_11182910
anti-mouse IgG, goat, peroxidase-conjugated Thermo Fisher 31430 Western blot, RRID:AB_228307
anti-Oxphos COX IV-subunit IV mAb Thermo Fisher clone 20E8C12 A21348 Western blot, RRID:AB_221509
anti-protein disulfide isomerase (PDI) pAb Enzo ADI-SPA-890 Western blot, RRID:AB_10616242
anti-rabbit IgG, goat, peroxidase-conjugated Thermo Fisher 31460 Western blot, RRID:AB_228341
BCA (bicinchoninic acid) assay Thermo Fisher 23223 Determining protein concentrations
Bis-Tris PAGE Gel, ExpressPlus, 4-20% Genscript M42015 Western blot
Carbenicillin, Disodium Salt Thermo Fisher 10177012 Selecting E. coli colonies
Centrifuge, Avanti J-26 XPI Beckman Coulter Low speed centrifugation
Centrifuge rotor, JA-10 Beckman Coulter 09U1597 Low speed centrifugation
Centrifuge bottle, Nalgene PPCO Thermo Fisher 3120-0500PK Low speed centrifugation
Cu grids with carbon support film Electron Microscopy Sciences FF200-Cu Acquiring electron microscopy images
EcoRI New England Biolabs R0101 Digesting DNA plasmid
Enhanced chemiluminescence detection system Thermo Fisher 32106 Western blot
FACScalibur flow cytometer Becton Dickinson Examining GFP levels of ES-D3 cells
Fetal bovine serum ATCC SCRR-30-2020 Medium for ES-D3 cells
Fisherbrand Sterile Cell Strainers; Mesh Size: 40μm Thermo Fisher 22-363-547 Filtering ES-D3 cells for FACS sorting
Gelatin (0.1%) Thermo Fisher ES006B Culturing ES-D3 cells
GM-CSF ELISA kit Thermo Fisher 88733422 Determining GM-CSF concentrations
KnockOut Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium Thermo Fisher 10-829-018 Medium for ES-D3 cells
Leukemia Inhibitory Factor Thermo Fisher ESG1106 Medium for ES-D3 cells
L-glutamine VWR VWRL0131-0100 Medium for ES-D3 cells
Lipofectamine 2000 transfection reagent Thermo Fisher 11668019 Transfecting ES-D3 cells
Microplate reader, PowerWave XS BioTek Determining GM-CSF concentrations
MoFlo XDP high-speed cell sorter Beckman Coulter Isolating single ES-D3 cell clones
NEB 5-alpha Competent E. coli New England Biolabs C2988J Generating GM-CSF expression plasmid
Neomycin Thermo Fisher 10-131-035 Selecting ES-D3 clones
Non-essential amino acids Thermo Fisher SH3023801 Medium for ES-D3 cells
Non-fat dry milk Thermo Fisher NC9022655 Western blot
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher 31985062 Transfecting ES-D3 cells
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Acquiring electron microscopy images
Penicillin/streptomycin VWR sc45000-652 Medium for ES-D3 cells
Plasmid pEF1a-FD3ER-IRES-hrGFP Addgene 37270 Generating GM-CSF expression plasmid
PVDF membranes Millipore EMD IPVH00010 Western blot
QIAprep Spin Miniprep Kit (250) QIAGEN 27106 Generating GM-CSF expression plasmid
QIAquick Gel Extraction Kit (50) QIAGEN 28704 Generating GM-CSF expression plasmid
Quick Ligation Kit New England Biolabs M2200S Generating GM-CSF expression plasmid
Transmission electron microscope Hitachi HT7700 Acquiring electron microscopy images
Trypsin VWR 45000-660 Culturing ES-D3 cells
Ultracentrifuge, OptimaTM L-100 XP Beckman Coulter High speed centrifugation
Ultracentrifuge rotor, 45Ti Beckman Coulter 09U4454 High speed centrifugation
Ultracentrifuge polycarbonate bottle Beckman Coulter 355622 High speed centrifugation
UranyLess staining solution Electron Microscopy Sciences 22409 Acquiring electron microscopy images

References

  1. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  2. Sakthiswary, R., Raymond, A. A. Stem cell therapy in neurodegenerative diseases: From principles to practice. Neural Regeneration Research. 7 (23), 1822-1831 (2012).
  3. Liu, Y. W., et al. Human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes restore function in infarcted hearts of non-human primates. Nature Biotechnology. 36 (7), 597-605 (2018).
  4. Aguayo-Mazzucato, C., Bonner-Weir, S. Stem cell therapy for type 1 diabetes mellitus. Nature Reviews: Endocrinology. 6 (3), 139-148 (2010).
  5. Thery, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracell Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  6. Raposo, G., Stoorvogel, W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends. Journal of Cell Biology. 200 (4), 373-383 (2013).
  7. Meldolesi, J. Exosomes and Ectosomes in Intercellular Communication. Current Biology. 28 (8), R435-R444 (2018).
  8. Stremersch, S., De Smedt, S. C., Raemdonck, K. Therapeutic and diagnostic applications of extracellular vesicles. Journal of Control Release. 244 (Pt B), 167-183 (2016).
  9. Lindenbergh, M. F. S., Stoorvogel, W. Antigen Presentation by Extracellular Vesicles from Professional Antigen-Presenting Cells. Annual Review of Immunology. 36, 435-459 (2018).
  10. Kunigelis, K. E., Graner, M. W. The Dichotomy of Tumor Exosomes (TEX) in Cancer Immunity: Is It All in the ConTEXt?. Vaccines (Basel). 3 (4), 1019-1051 (2015).
  11. Becher, B., Tugues, S., Greter, M. GM-CSF: From Growth Factor to Central Mediator of Tissue Inflammation. Immunity. 45 (5), 963-973 (2016).
  12. Conti, L., Gessani, S. GM-CSF in the generation of dendritic cells from human blood monocyte precursors: recent advances. Immunobiology. 213 (9-10), 859-870 (2008).
  13. Higano, C. S., et al. Integrated data from 2 randomized, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trials of active cellular immunotherapy with sipuleucel-T in advanced prostate cancer. Cancer. 115 (16), 3670-3679 (2009).
  14. Yan, W. L., Shen, K. Y., Tien, C. Y., Chen, Y. A., Liu, S. J. Recent progress in GM-CSF-based cancer immunotherapy. Immunotherapy. 9 (4), 347-360 (2017).
  15. Dranoff, G., et al. Vaccination with irradiated tumor cells engineered to secrete murine granulocyte-macrophage colony-stimulating factor stimulates potent, specific, and long-lasting anti-tumor immunity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (8), 3539-3543 (1993).
  16. Tremml, G., Singer, M., Malavarca, R. Chapter 1, Unit 1C 4, Culture of mouse embryonic stem cells. Current Protocols in Stem Cell Biology. , (2008).
  17. Kirsch, P., Hafner, M., Zentgraf, H., Schilling, L. Time course of fluorescence intensity and protein expression in HeLa cells stably transfected with hrGFP. Molecules and Cells. 15 (3), 341-348 (2003).
  18. Zeng, X., et al. Stable expression of hrGFP by mouse embryonic stem cells: promoter activity in the undifferentiated state and during dopaminergic neural differentiation. Stem Cells. 21 (6), 647-653 (2003).
  19. Yaddanapudi, K., et al. Vaccination with embryonic stem cells protects against lung cancer: is a broad-spectrum prophylactic vaccine against cancer possible?. PLoS One. 7 (7), e42289 (2012).
  20. Dalby, B., et al. Advanced transfection with Lipofectamine 2000 reagent: primary neurons, siRNA, and high-throughput applications. Methods. 33 (2), 95-103 (2004).
  21. Thery, C., Amigorena, S., Raposo, G., Clayton, A. Chapter 3, Unit 3 22, Isolation and characterization of exosomes from cell culture supernatants and biological fluids. Current Protocols in Cell Biology. , (2006).
  22. Zhang, X., et al. Exosomes for Immunoregulation and Therapeutic Intervention in Cancer. Journal of Cancer. 7 (9), 1081-1087 (2016).
  23. Bunggulawa, E. J., et al. Recent advancements in the use of exosomes as drug delivery systems. Journal of Nanobiotechnology. 16 (1), 81 (2018).
  24. Schlesinger, S., Lee, A. H., Wang, G. Z., Green, L., Goff, S. P. Proviral silencing in embryonic cells is regulated by Yin Yang 1. Cell Reports. 4 (1), 50-58 (2013).
  25. Dranoff, G. GM-CSF-based cancer vaccines. Immunological Reviews. 188, 147-154 (2002).
  26. Park, Y. G., et al. Effects of Feeder Cell Types on Culture of Mouse Embryonic Stem Cell In Vitro. Development and Reproduction. 19 (3), 119-126 (2015).
  27. Lin, S., Talbot, P. Methods for culturing mouse and human embryonic stem cells. Methods in Molecular Biology. 690, 31-56 (2011).
  28. Yaddanapudi, K., et al. Exosomes from GM-CSF expressing embryonic stem cells are an effective prophylactic vaccine for cancer prevention. OncoImmunology. 8 (3), 1561119 (2019).
check_url/60170?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Meng, S., Whitt, A. G., Tu, A., Eaton, J. W., Li, C., Yaddanapudi, K. Isolation of Exosome-Enriched Extracellular Vesicles Carrying Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor from Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (177), e60170, doi:10.3791/60170 (2021).

View Video