Summary

Nucleofection e In Vivo Propagação de Parasitas de Eimeria de Frango

Published: February 14, 2020
doi:

Summary

Aqui, fornecemos um método para alcançar a transfecção estável de parasitas de frango Eimeria por nucleofecting esporozoitas ou merozoitas de segunda geração. Parasitas eimerianos geneticamente modificados expressando genes antigênicos heterologous poderiam ser usados como veículos de entrega de vacinas.

Abstract

Transfecção é um processo técnico através do qual material genético, como DNA e RNA de dupla cadeia, são entregues em células para modificar o gene de interesse. Atualmente, a tecnologia transgênica está se tornando uma ferramenta indispensável para o estudo da Eimeria, os agentes causadores da coccidiose em aves e pecuária. Este protocolo fornece uma descrição detalhada da transfecção estável em parasitas eimerianos: purificação e nucleofeção de esporozoitas ou merozoitas de segunda geração, e propagação in vivo de parasitas transfeccionados. Usando este protocolo, conseguimos transfecção em várias espécies de Eimeria. Juntas, a nucleofection é uma ferramenta útil para facilitar a manipulação genética em parasitas eimerianos.

Introduction

Eimeria spp. causa coccidiose, o que leva a perdas econômicas substanciais na pecuária e na indústria avícola. Embora os medicamentos anticoccidial, e até certo ponto, atenuados vacinas anticoccidial, tenham sido amplamente utilizados para o controle da coccidiose, ainda há deficiências em relação à sua resistência a medicamentos, resíduos de drogas e a potencial difusão de cepas de vacinas que recuperam a virulência1. Com o desenvolvimento da biologia molecular, a transfecção tornou-se uma ferramenta vital para estudar funções genéticas, desenvolver novas vacinas e triagem de novos alvos medicamentosos para Eimeria.

Nas últimas décadas, a transfecção foi aplicada com sucesso para parasitas apicomplexos como Plasmodium e Toxoplasma gondii2,3,4,5,6. Um estudo usando β-gal como repórter para a transfecção em E. tenella pilotou tal trabalho na Eimeria7. A transfecção de E. tenella8,9, E. mitis10, e E. acervulina (Zhang et al., dados inéditos) foi bem sucedida em galinhas. Recentemente, conseguimos transfecção usando merozoitas de E. necatrix através da nucleofection11.

Estudos mostraram que a Eimeria expressando um antígeno heterologous tem potencial para ser desenvolvida como uma vacina recombinante, como as expressas que expressam o antígeno Campylobacter jejuni A (CjaA) ou interleucina de frango 2 (chIL-2)12,13. Portanto, este protocolo descreve um estudo de nucleofection de Eimeria spp. em galinhas. O procedimento descreve a purificação de esporozoitas ou merozoitas, nucleofection com DNA plasmídeo, inoculação cloacal/injeção intravenosa e propagação in vivo para ajudar pesquisadores a iniciar estudos sobre parasitas transgênicos da Eimeria.

Protocol

As galinhas para todos os experimentos em animais foram alojadas e mantidas de acordo com as diretrizes do Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Universidade Agrícola da China e seguiram os Princípios Orientadores Internacionais para pesquisas biomédicas envolvendo animais. Os experimentos foram aprovados pelo Comitê de Animais de Laboratório da Administração de Pequim. 1. Extração e purificação de esporozoitas de Eimeria spp. (por exemplo, E. tenella…

Representative Results

Este protocolo foi usado para transfect parasitas eimerianos. Neste estudo, os meronts e merozoitas de2ª geração da E. necatrix foram mostrados na Figura 2A e Figura 2B,enquanto a Figura 2C e a Figura 2D mostraram os esporócitos e esporozoitas de E. tenella depois de usar…

Discussion

Na década de 1990, foi desenvolvido um sistema de transfecção para parasitas apicomplexos, e foi usado para estudos em parasitas eimerianos. Recentemente, a transfecção estável foi realizada em E. tenella8,9 e E. nieschulzi15. Alcançamos a transfecção estável de E. necatrix transfecting merozoites de segunda geração11. A inoculação de esporozoitas transfeccionadas de E. a…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pelo Programa Nacional de Pesquisa e Desenvolvimento da China (2017YFD0501200) e pela Fundação Nacional de Ciência Natural da China (31572507, 31772728 e 31873007).

Materials

ATP-disodium Sigma A26209
Cellulose DE-52 Solarbio C8350
Constant Flow Pump SHANGHAI JINGKE INDUSTRIAL CO., LTD. HL-2B
DMEM MACGENE CM15019
Glass beads Sigma Z250473-1PAK
Glucose Sigma No. V900116
Glycine Biotopped G6200
HBSS MACGENE CC016
KH2PO4 Sigma No. V900041
Low Speed Centrifuge BEIJING ERA BEILI CENTRIFUGE CO., LTD. DT5-2
Magnetic Mixer SCILOGEX MS-H280-Pro
MgCl2 Sigma 449164
MoFlo cell sorter BeckMan Coulter, US 201309995
NaHCO3 Sigma 144-55-8
Nucleofection device LONZA/amaxa 90900012 (Nucleofector II)
PBS Solarbio P1010
Percoll (DG gradient stock solution) GE Healthcare 17-0891-09
Sodium taurodeoxycholate hydrate Sigma T0875
Sorvall Legend Micro 17 Microcentrifuge ThermoFisher Scientific 75002430
The composition of DMEM: 4.5 g/L glucose with sodium pyruvate, L-glutamine, and 25 mM HEPES.
Trypsin Solarbio T8150
Vortex Mixer Beijing North TZ-Biotech Develop.co. HQ-60-II
Water Bath Thermostat Grant Instruments (Cambridge), Ltd. GD120,GM0815010

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Duan, C., Tang, X., Hu, D., Zhang, S., Liu, J., Bi, F., Hao, Z., Suo, J., Yu, Y., Wang, M., Sun, P., Du, L., Suo, X., Liu, X. Nucleofection and In Vivo Propagation of Chicken Eimeria Parasites. J. Vis. Exp. (156), e60552, doi:10.3791/60552 (2020).

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