Summary

Простое обнаружение первичной силии с помощью иммунофлуоресценции

Published: May 15, 2020
doi:

Summary

Первичные реснички являются внеклеточными структурами, связанными с центриолом. Первичное обнаружение ресничок с помощью иммунофлуоресцентного окрашивания является относительно простой процедурой, которая приводит к чрезвычайно высококачественным изображениям. В этом протоколе фибробласты, выражаюющие первичные реснички, были зафиксированы, ослаблены иммунитетом и изображены в флуоресцентном или конфокальцаторном микроскопе.

Abstract

Первичные реснички динамически регулируются во время прогрессирования клеточного цикла, особенно во время фаз G0/G1 клеточного цикла, ресорбируются до митоза. Первичные реснички можно визуализировать с помощью очень сложных методов, включая электронную микроскопию передачи, 3D-изображение или программное обеспечение для автоматического обнаружения первичных ресничок. Тем не менее, иммунофлуоресцентное окрашивание первичных ресничок необходимо для выполнения этих методов. Эта публикация описывает протокол для легкого обнаружения первичных ресничок in vitro путем окрашивания ацетилированного альфа-тубулина (аксонема) и гамма-тубулина (базального тела). Этот иммунофлюоресцентный протокол окрашивания относительно прост и приводит к высококачественным изображениям. В настоящем протоколе описывается, как четыре клеточные линии (C2C12, MEF, NHLF и фибробласты кожи), выражают первичные реснички, были зафиксированы, ослаблены иммунитетом и изображены флуоресцентным или конфокальные микроскопы.

Introduction

Первичные реснички сенсорные, одиночные, мембранные, немотильные структуры, связанные с матери центриоля клетки. Первичные реснички находятся на большинстве позвоночных клеток, за исключением красных кровяных телец,адипоцитов 1, и гепатоцитов2. Первичные реснички образуются как удлиненный аксонем, состоящий из микротрубочек, основным компонентом которых является З-тубулин. Аксонем растет из базального тела, которое структурировано из З-тубулина. Длина первичных ресничок колеблется от 2 до 10 мкм; однако, его размеры могут меняться во время гликилирования, голодания, гипоксии, цитотоксического стресса, или после воздействия ионизирующего излучения3,,4,,5,,6,,7. Как правило, клетки имеют только один первичный цилий, который участвует в морфогенезе и клеточной сигнализации пути важны для пролиферацииклеток и дифференциации 8,9.

Первичные реснички динамически регулируются во время прогрессирования клеточного цикла, особенно во время фаз G0/G1, и ресорбируются перед входом в митоз в процессе, связанном с деацетилированием тубулина при посредничестве HDAC6 (гистон диацетилаза 6)10. Точный момент первичной ресорбции реций зависит от типа клетки и экспрессии генов, непосредственно участвующих в этом процессе, таких как Аврора A, Plk1, TcTex-111,12,13. В зависимости от типа клетки, первичные реснички выражают различные типы рецепторов, ионных каналов и активных сигнальных путей. К ним относятся наиболее важные сигнальные рецепторы, влияющие на пролиферацию и выживание, EGFR, PDGFR и FGFR. Также включены некоторые из сигнальных путей, которые могут повлиять на функцию одного или нескольких органов, в том числе Ежик, Нотч, и Wnt. Благодаря этим рецепторам и сигнальных путей, первичные реснички также выполнять химиосенсорную функцию. Эта функция позволяет первичным реснички обнаружить конкретные лиганды для Notch, гормоны, и биологически активных веществ, таких как серотонин или соматостатин. Другие специфические функции, выставленные первичными реснички разной длины включают реакцию на изменения температуры, гравитации и осмолальности14.

Первичные реснички могут быть визуализированы с помощью различных методов, таких как живая визуализация, электронная микроскопия передачи, 3D-изображение, или с помощью программногообеспечения для автоматического обнаружения первичных ресничок 5,15,16,17. Тем не менее, эти методы являются высокоспециализированными и текущих исследований потребностей основных, быстрых и простых методов для окрашивания первичных ресничок на каждом этапе исследований. Описанный является простым и полезным методом для обнаружения первичных ресничок в культурных клетках.

Protocol

1. Подготовка культурных средств массовой информации, решений и блюд Автоклав крышки (22 х 22 мм). Приготовьте 6 хорошо пластин. Оттепель плода бычьей сыворотки (FBS) и антибиотик пенициллин / стрептомицин и тепло культуры средней до комнатной температуры (RT). Использование трипсина-ЭДТА…

Representative Results

Иммунофлуоресцентное окрашивание первичных ресничок является относительно простой процедурой, которая приводит к высококачественным изображениям. В этих экспериментах фибробласты, выражаюющие первичные реснички, были зафиксированы, ослаблены иммунитетом и изображены в флуоресцен…

Discussion

Некоторые авторы описали различные методы обнаружения первичных ресничок, иногда также описывая различные методы фиксации, которые могут повлиять на их обнаружение6,,20,,21,22. Несмотря на это, трудно найти полный и прос…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Министерством обороны Чешской Республики – Долгосрочный план развития организации Медицинские аспекты оружия массового уничтожения факультета военных медицинских наук, Университет обороны; Министерство образования, молодежи и спорта Чешской Республики (Специальный исследовательский проект No: СВ/ ФВЗ201703) и ПРОГРЕС No40/06. Спасибо также Даниэлю Диасу за его добрую помощь в пересмотре английского языка.

Materials

6-well plate TPP 92406 Dimensions 128x86x22 mm
Alexa Fluor488 Jackson ImmunoResearch 111-546-047 AffiniPure F(ab')₂ Fragment Goat Anti-Rabbit IgG
Anti-Tubulin γ Sigma-Aldrich T5192 Polyclonal Rabbit anti-Mouse IgG2a
C2C12 ATCC CRL-1772 Myoblast (mouse)
Cy3 Sigma-Aldrich C2181 Anti-Mouse IgG (whole molecule) F(ab′)2 fragment–Cy3 antibody produced in sheep
Dapi (4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride) Sigma-Aldrich D9542
Dulbecco´s Modified Eagle´s medium Thermo Scientific 11960044 High glucose, No glutamine, Gibco
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich D8662 With MgCl2 and CaCl2, Sterile-filtered, Suitable for cell culture
Fetal Bovine Serum Thermo Scientific 16000044 Sterile-Filtered, Gibco
L-Glutamine Sigma-Aldrich G7513
MEF ATCC SCRC-1039 Mouse embryonic fibroblast
Monoclonal Anti-Acetylated Tubulin Sigma-Aldrich T7451 Monoclonal Anti-Acetylated Tubulin antibody produced in mouse
NHLF Lonza CC-2512 Primary lung fibroblasts (human)
Normal Goat Serum Jackson ImmunoResearch 005-000-121
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127-500G Powder
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P0781 10,000 units penicillin and 10 mg streptomycin per mL in 0.9% NaCl, Sterile-Filtered
ProLong Diamond Antifade Mountant Thermo Scientific P36961
Skin fibroblasts Kindly gifted from Charles University, Faculty of Medicine in Hradec Králové.
Square Cover Slips Thermo Scientific 22X22-1.5 Borosilicate glass, 22x22mm, Square
Triton X-100 Sigma-Aldrich 11332481001
Trypsin-EDTA (0.25%) Thermo Scientific 25200072 Sterile-Filtered, Gibco

Riferimenti

  1. Alieva, I. B., Vorobjev, I. A. Vertebrate primary cilia: a sensory part of centrosomal complex in tissue cells, but a “sleeping beauty” in cultured cells. Cell Biology International. 28 (2), 139-150 (2004).
  2. Sloboda, R. . Primary cilia. , (2009).
  3. Sharma, N., Kosan, Z. A., Stallworth, J. E., Berbari, N. F., Yoder, B. K. Soluble levels of cytosolic tubulin regulate ciliary length control. Molecular Biology of the Cell. 22 (6), 806-816 (2011).
  4. Filipová, A., et al. Ionizing radiation increases primary cilia incidence and induces multiciliation in C2C12 myoblasts. Cell Biology International. 39 (8), 943-953 (2015).
  5. Filipová, A., et al. The toxic effect of cytostatics on primary cilia frequency and multiciliation. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 23 (8), 5728-5736 (2019).
  6. Gadadhar, S., et al. Tubulin glycylation controls primary cilia length. The Journal of Cell Biology. 216 (9), 2701-2713 (2017).
  7. Shamloo, K., et al. Chronic Hypobaric Hypoxia Modulates Primary Cilia Differently in Adult and Fetal Ovine Kidneys. Frontiers in Physiology. 8, 677 (2017).
  8. Malone, A. M. D., et al. Primary cilia mediate mechanosensing in bone cells by a calcium-independent mechanism. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (33), 13325-13330 (2007).
  9. Luesma, M. J., et al. Enteric neurons show a primary cilium. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 17 (1), 147-153 (2013).
  10. Pugacheva, E. N., Jablonski, S. A., Hartman, T. R., Henske, E. P., Golemis, E. A. HEF1-dependent Aurora A activation induces disassembly of the primary cilium. Cell. 129 (7), 1351-1363 (2007).
  11. Li, A., et al. Ciliary transition zone activation of phosphorylated Tctex-1 controls ciliary resorption, S-phase entry and fate of neural progenitors. Nature Cell Biology. 13 (4), 402-411 (2011).
  12. Spalluto, C., Wilson, D. I., Hearn, T. Evidence for reciliation of RPE1 cells in late G1 phase, and ciliary localisation of cyclin B1. FEBS Open Bio. 3, 334-340 (2013).
  13. Malicki, J. J., Johnson, C. A. The Cilium: Cellular Antenna and Central Processing Unit. Trends in Cell Biology. 27 (2), 126-140 (2017).
  14. Morleo, M., Franco, B. The Autophagy-Cilia Axis: An Intricate Relationship. Cells. 8 (8), 905 (2019).
  15. Ott, C., Lippincott-Schwartz, J. Visualization of live primary cilia dynamics using fluorescence microscopy. Current Protocols in Cell Biology. , (2012).
  16. Sun, S., Fisher, R. L., Bowser, S. S., Pentecost, B. T., Sui, H. Three-dimensional architecture of epithelial primary cilia. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (19), 9370-9379 (2019).
  17. Lauring, M. C., et al. New software for automated cilia detection in cells (ACDC). Cilia. 8 (1), 1 (2019).
  18. Conroy, P. C., et al. C-NAP1 and rootletin restrain DNA damage-induced centriole splitting and facilitate ciliogenesis. Cell Cycle. 11 (20), 3769-3778 (2012).
  19. Kim, J. H., et al. Genome-wide screen identifies novel machineries required for both ciliogenesis and cell cycle arrest upon serum starvation. Biochimica et Biophysica Acta. 1863 (6), 1307-1318 (2016).
  20. Yuan, K., et al. Primary cilia are decreased in breast cancer: analysis of a collection of human breast cancer cell lines and tissues. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry: Official Journal of the Histochemistry Society. 58 (10), 857-870 (2010).
  21. Smith, Q., et al. Differential HDAC6 Activity Modulates Ciliogenesis and Subsequent Mechanosensing of Endothelial Cells Derived from Pluripotent Stem Cells. Cell Reports. 24 (4), 895-908 (2018).
  22. Mirvis, M., Siemers, K. A., Nelson, W. J., Stearns, T. P. Primary cilium loss in mammalian cells occurs predominantly by whole-cilium shedding. PLOS Biology. 17 (7), 3000381 (2019).
  23. Hua, K., Ferland, R. J. Fixation methods can differentially affect ciliary protein immunolabeling. Cilia. 6 (1), 5 (2017).
  24. Lim, Y. C., McGlashan, S. R., Cooling, M. T., Long, D. S. Culture and detection of primary cilia in endothelial cell models. Cilia. 4, 11 (2015).
  25. DiDonato, D., Brasaemle, D. L. Fixation methods for the study of lipid droplets by immunofluorescence microscopy. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry: Official Journal of the Histochemistry Society. 51 (6), 773-780 (2003).
check_url/it/61155?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Filipova, A., Diaz Garcia, D., Dvorak, J., Filip, S., Jelicova, M., Sinkorova, Z. Simple Detection of Primary Cilia by Immunofluorescence. J. Vis. Exp. (159), e61155, doi:10.3791/61155 (2020).

View Video