Summary

Laser Doppler Perfusion Imaging i musen Hindlimb

Published: April 18, 2021
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll som visar tekniken och nödvändiga kontroller för Laser Doppler perfusion imaging för att mäta blodflödet i musen hindlimb.

Abstract

Blodflöde återhämtning är ett kritiskt utfallsmått efter experimentell hindlimb ischemi eller ischemi-reperfusion. Laser Doppler perfusion imaging (LDPI) är en vanlig, icke-invasiv, repeterbar metod för att bedöma blodflödet återhämtning. Tekniken beräknar det totala blodflödet i den provtagit vävnaden från Dopplerförskjutningen i frekvens som orsakas när en laser träffar rörliga röda blodkroppar. Mätningar uttrycks i godtyckliga perfusionsenheter, så den kontralaterala icke-ingrep på benet används vanligtvis för att hjälpa till att kontrollera mätningar. Mätdjupet ligger inom intervallet 0,3-1 mm; för hindlimb ischemi innebär detta att hudperfusion bedöms. Dermal perfusion är beroende av flera faktorer – viktigast av allt hudtemperatur och bedövningsmedel, som måste kontrolleras noggrant för att resultera i tillförlitliga avläsningar. Dessutom kan hår- och hudpigmentering förändra laserns förmåga att antingen nå eller tränga in i dermis. Denna artikel visar tekniken för LDPI i musen hindlimb.

Introduction

Hudsår med otillräcklig sårläkning är en ledande orsak till amputationer hos mänskliga patienter1. Adekvat sårläkning kräver högre nivåer av kranskärlens perfusion än vad som behövs för att bibehålla intakt hud, vilket äventyras hos patienter med perifer arteriellsjukdom 2,3,4. Flera andra reumatologiska tillstånd och diabetes kan också leda till störd och otillräcklig hudmikrocirkulation för att läka sår5,6. Många diabetiker patienter har samtidig perifera kranskärlens sjukdom, vilket placerar dem i särskilt hög risk för amputation. Laser Doppler perfusion imaging (LDPI) används i kliniska situationer för att utvärdera hudens mikrocirkulation, liksom i forskningssituationer för att utvärdera blodflöde och blodflöde återhämtning efter experimentell hindlimb ischemi, ischemi-reperfusion och mikrokirurgiska klaffar7.

LDPI-systemet projicerar en lågeffektlaserstråle som avleds av en skanningsspegel för att röra sig över en region av intresse. Detta skiljer sig från Laser Doppler flödesmetri, vilket ger en perfusionsmätning för det lilla området av vävnad i direkt kontakt med flödesproben8. När laserstrålen interagerar med rörligt blod i mikrovaskulaturen genomgår den en Doppler-frekvensförskjutning, som fotodetecteds av skannern och omvandlas till godtyckliga perfusionsenheter. Eftersom LDPI är en ljusbaserad teknik är den begränsad när det gäller penetrationsdjup till 0, 3-1 mm, vilket innebär att för det mesta bedöms dermal perfusion7. Dermalt flöde kan ändras av hudtemperaturen och det sympatiska nervsystemet, som kan påverkas av olika bedövningsmedel9. Mätningar från den optiska lasern påverkas också av omgivande ljusförhållanden, hudpigmentering och kan blockeras av överbådlig päls eller hår7.

LDPI är den vanligaste forskningstekniken för att övervaka perfusionsåterhämtning efter ischemi eftersom det är icke-invasivt, inte kräver kontrastadministration och har snabba skanningstider som möjliggör datainsamling på flera djur. Detta gör det idealiskt för att avgöra om behandlingar som syftar till terapeutisk arteriogenes eller angiogenes är effektiva i små djurmodeller. Återhämtning av blodflödet efter bakbens ischemi mätt med LDPI korrelerar väl med utvecklingen av säkerhetsartären när den bedöms på andra sätt såsom Mikrofilgjutning eller mikro-CT10,11. Målet med detta protokoll är att visa bedömningen av hindlimb perfusion med hjälp av LDPI.

Protocol

Djurförsök utfördes enligt ett protokoll som godkänts av University of Washington Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Förberedelse av skanner Justera skannerhöjden så att avståndet till det skannade motivet är ca 30 cm. Slå på bildaren och starta den tillhörande programvaran. Öppna mätprogrammet. Om programvaran kommunicerar korrekt med skannern visas den infraröda laservarningen. Kalibrera maskinen med tillve…

Representative Results

Framgångsrik LDPI bör resultera i konsekventa upprepade måttskanningar, med högst 100-150 perfusionsenhetsvariation (motsvarande cirka 10% av den vanliga genomsnittliga perfusionen för musfotplattan) mellan de tre skanningarna(figur 2). Som framgår av figur 2hjälper upprepade skanningar till att fastställa att musen har jämviktats på lämpligt sätt så att förhållandet mellan ischemisk/kontroll bäst återspeglar det underliggande blodflödet i mots…

Discussion

Konsekvent teknik är avgörande för att uppnå tillförlitliga resultat med LDPI. Samma bedövningsmedel, temperaturinställningar, musposition och intresseområde bör användas under hela tidskursen. Olika bedövningsmedel resulterar i högre eller lägre perfusionsvärden9. Isofluran anestesi är bekvämt på grund av dess snabba inledning och uppkomst samt övergripande säkerhet. En konsekvent procentandel av isofluran bör användas som anestesidjup med detta vasodilaterande medel kan för…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete utfördes med hjälp av faciliteter och resurser på VA Puget Sound Health Care Center. Verket är författarens och återspeglar inte nödvändigtvis veterandepartementets eller USA:s regerings ståndpunkt eller politik. Dr Tang finansieras för närvarande via VA (Merit 5 I01 BX004975-02).

Materials

Black nonreflective material Fabric store, black neoprene recommended by company
F/air cannister A.M. Bickford Inc 80120
Homeothermic blanket with rigid metal probe Harvard Apparatus Also comes with flexible probe, but this is less durable
Isoflurane Anesthesia machine Drager Multiple manufacturers
Isoflurane induction chamber VetEquip 941444 2 L chamber
Moor laser Doppler perfusion imager Moor Instruments MoorLDI2-IR Higher resolution imager (MoorLDI2-HIR)
Mouse Anesthesia nose cone Multiple manufacturers
Nair Nair
Oxygen tank Multiple manufacturers
Surgilube Multiple distributors

References

  1. Varma, P., Stineman, M. G., Dillingham, T. R. Epidemiology of limb loss. Physical Medicine and Rehabilitation Clinics of North America. 25 (1), 1-8 (2014).
  2. Farber, A. Chronic Limb-Threatening Ischemia. New England Journal of Medicine. 379 (2), 171-180 (2018).
  3. Abularrage, C. J., et al. Evaluation of the microcirculation in vascular disease. Journal of Vascular Surgery. 42 (3), 574-581 (2005).
  4. Houben, A., Martens, R. J. H., Stehouwer, C. D. A. Assessing Microvascular Function in Humans from a Chronic Disease Perspective. Journal of the American Society of Nephrology. 28 (12), 3461-3472 (2017).
  5. Mahe, G., Humeau-Heurtier, A., Durand, S., Leftheriotis, G., Abraham, P. Assessment of skin microvascular function and dysfunction with laser speckle contrast imaging. Circulation: Cardiovascular Imaging. 5 (1), 155-163 (2012).
  6. Murray, A. K., Herrick, A. L., King, T. A. Laser Doppler imaging: a developing technique for application in the rheumatic diseases. Rheumatology (Oxford). 43 (10), 1210-1218 (2004).
  7. Greco, A., et al. Repeatability, reproducibility and standardisation of a laser Doppler imaging technique for the evaluation of normal mouse hindlimb perfusion. Sensors (Basel). 13 (1), 500-515 (2012).
  8. Sonmez, T. T., et al. A novel laser-Doppler flowmetry assisted murine model of acute hindlimb ischemia-reperfusion for free flap research. PLoS One. 8 (6), 66498 (2013).
  9. Gargiulo, S., et al. Effects of some anesthetic agents on skin microcirculation evaluated by laser Doppler perfusion imaging in mice. BMC Veterinary Research. 9, 255 (2013).
  10. Ankri-Eliahoo, G., Weitz, K., Cox, T. C., Tang, G. L. p27(kip1) Knockout enhances collateralization in response to hindlimb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (5), 1351-1359 (2016).
  11. McEnaney, R. M., Shukla, A., Madigan, M. C., Sachdev, U., Tzeng, E. P2Y2 nucleotide receptor mediates arteriogenesis in a murine model of hind limb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (1), 216-225 (2016).
  12. Padgett, M. E., McCord, T. J., McClung, J. M., Kontos, C. D. Methods for Acute and Subacute Murine Hindlimb Ischemia. Journal of Visualized Experiments. (112), e54166 (2016).
  13. Niiyama, H., Huang, N. F., Rollins, M. D., Cooke, J. P. Murine model of hindlimb ischemia. Journal of Visualized Experiments. (23), e1035 (2009).
  14. Chalothorn, D., Faber, J. E. Strain-dependent variation in collateral circulatory function in mouse hindlimb. Physiological Genomics. 42 (3), 469-479 (2010).
  15. Helisch, A., et al. Impact of mouse strain differences in innate hindlimb collateral vasculature. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 26 (3), 520-526 (2006).
  16. Faber, J. E., et al. Aging causes collateral rarefaction and increased severity of ischemic injury in multiple tissues. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 31 (8), 1748-1756 (2011).
  17. Forrester, K. R., Stewart, C., Tulip, J., Leonard, C., Bray, R. C. Comparison of laser speckle and laser Doppler perfusion imaging: measurement in human skin and rabbit articular tissue. Medical & Biological Engineering & Computing. 40 (6), 687-697 (2002).
  18. Briers, J. D. Laser Doppler, speckle and related techniques for blood perfusion mapping and imaging. Physiological Measurement. 22 (4), 35-66 (2001).
  19. Heeman, W., Steenbergen, W., van Dam, G., Boerma, E. C. Clinical applications of laser speckle contrast imaging: a review. Journal of Biomedical Optics. 24 (8), 1-11 (2019).
  20. Nguyen, T., Davidson, B. P. Contrast Enhanced Ultrasound Perfusion Imaging in Skeletal Muscle. Journal of Cardiovascular Imaging. 27 (3), 163-177 (2019).
  21. Zaccagnini, G., et al. Magnetic Resonance Imaging Allows the Evaluation of Tissue Damage and Regeneration in a Mouse Model of Critical Limb Ischemia. PLoS One. 10 (11), 0142111 (2015).
  22. Penuelas, I., et al. PET as a measurement of hindlimb perfusion in a mouse model of peripheral artery occlusive disease. Journal of Nuclear Medicine. 48 (13), 1216-1223 (2007).
  23. Jia, Y., Qin, J., Zhi, Z., Wang, R. K. Ultrahigh sensitive optical microangiography reveals depth-resolved microcirculation and its longitudinal response to prolonged ischemic event within skeletal muscles in mice. Journal of Biomedical Optics. 16 (8), 086004 (2011).
  24. Turaihi, A. H., et al. Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion. Journal of Visualized Experiments. (121), e54912 (2017).
  25. Liu, C., et al. Enhanced autophagy alleviates injury during hindlimb ischemia/reperfusion in mice. Experimental and Therapeutic Medicine. 18 (3), 1669-1676 (2019).
  26. Liu, D. L., Svanberg, K., Wang, I., Andersson-Engels, S., Svanberg, S. Laser Doppler perfusion imaging: new technique for determination of perfusion and reperfusion of splanchnic organs and tumor tissue. Lasers in Surgery and Medicine. 20 (4), 473-479 (1997).
  27. Jing, Y., Bai, F., Chen, H., Dong, H. Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat. Journal of Visualized Experiments. (135), e56243 (2018).
  28. Zhang, D., Li, S., Wang, S., Ma, H. An evaluation of the effect of a gastric ischemia-reperfusion model with laser Doppler blood perfusion imaging. Lasers in Medical Science. 21 (4), 224-228 (2006).
  29. Fitzal, F., et al. Circulatory changes after prolonged ischemia in the epigastric flap. Journal of Reconstructive Microsurgery. 17 (7), 535-543 (2001).
check_url/62012?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tang, G. L., Kim, K. J. Laser Doppler Perfusion Imaging in the Mouse Hindlimb. J. Vis. Exp. (170), e62012, doi:10.3791/62012 (2021).

View Video