Summary

Laser Doppler perfusjon bildebehandling i musen hindlimb

Published: April 18, 2021
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll som demonstrerer teknikken og nødvendige kontroller for Laser Doppler perfusjonsavbildning for å måle blodstrømmen i musens bakben.

Abstract

Blodstrømsgjenoppretting er et kritisk resultatmål etter eksperimentell bakbens iskemi eller iskemirefusjon. Laser Doppler perfusjonsavbildning (LDPI) er en vanlig, ikke-invasiv, repeterbar metode for å vurdere blodstrømsgjenoppretting. Teknikken beregner den totale blodstrømmen i prøvevevet fra Doppler-frekvensskiftet forårsaket når en laser treffer bevegelige røde blodlegemer. Målinger uttrykkes i vilkårlige perfusjonsenheter, slik at de kontralaterale ikke-intervenerte på benet vanligvis brukes til å kontrollere målinger. Måledybden er i området 0,3-1 mm; For hindlimb iskemi betyr dette at dermal perfusjon vurderes. Dermal perfusjon er avhengig av flere faktorer – viktigst av alt hudtemperatur og bedøvelsesmiddel, som må kontrolleres nøye for å resultere i pålitelige avlesninger. Videre kan hår- og hudpigmentering endre laserens evne til enten å nå eller trenge inn i dermis. Denne artikkelen demonstrerer teknikken til LDPI i musen hindlimb.

Introduction

Sårdannelse i huden med utilstrekkelig sårheling er en ledende årsak til amputasjoner hos mennesker1. Tilstrekkelig sårheling krever høyere nivåer av arteriell perfusjon enn det som trengs for å opprettholde intakt hud, som er kompromittert hos pasienter med perifer arteriell sykdom2,3,4. Flere andre revmatologiske tilstander og diabetes kan også føre til forstyrret og utilstrekkelig hudmikrosirkulasjon for å helbrede sår5,6. Mange diabetespasienter har samtidig perifer arteriell sykdom, noe som gir dem spesielt høy risiko for amputasjon. Laser Doppler perfusjonsavbildning (LDPI) brukes i kliniske situasjoner for å evaluere hudens mikrosirkulasjon, samt i forskningssituasjoner for å evaluere blodstrøm og blodstrømsgjenoppretting etter eksperimentell bakbens iskemi, iskemi-reperfusjon og mikrokirurgiske klaffer7.

LDPI-systemet projiserer en laserstråle med lavt strømforbruk som avbøyes av et skannespeil for å bevege seg over en interesseregion. Dette adskiller seg fra Laser Doppler flowmetry, som gir en perfusjonsmåling for det lille vevsområdet i direkte kontakt med flowmetry sonde8. Når laserstrålen samhandler med å bevege blod i mikrovaskulaturen, gjennomgår den et Doppler-frekvensskift, som er foto oppdaget av skanneren og konvertert til vilkårlige perfusjonsenheter. Fordi LDPI er en lysbasert teknikk, er den begrenset når det gjelder penetrasjonsdybde til 0,3-1 mm, noe som betyr at dermal perfusjon for det meste vurderes7. Dermal strømning kan endres av hudtemperatur og det sympatiske nervesystemet, som kan påvirkes av ulike bedøvelsesmidler9. Målinger fra den optiske laseren påvirkes også av omgivelseslysforhold, hudpigmentering, og kan blokkeres av overlysende pels eller hår7.

LDPI er den mest brukte forskningsteknikken for å overvåke perfusjonsgjenoppretting etter iskemi fordi den ikke er invasiv, krever ikke kontrastadministrasjon, og har raske skannetider som tillater datainnsamling på flere dyr. Dette gjør det ideelt å bidra til å avgjøre om behandlinger rettet mot terapeutisk arteriogenese eller angiogenese er effektive i små dyremodeller. Blodstrømsgjenvinning etter bakbens iskemi målt ved LDPI korrelerer godt med sikkerhetsarterieutvikling når den vurderes på andre måter, for eksempel Mikrofilstøping eller mikro-CT10,11. Målet med denne protokollen er å demonstrere vurderingen av bakbensperfusjon ved hjelp av LDPI.

Protocol

Dyreforsøk ble utført i henhold til en protokoll godkjent av University of Washington Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Klargjøring av skanner Juster skannerhøyden slik at avstanden til det skannede motivet er ca. 30 cm. Slå på imageren og start den tilknyttede programvaren. Åpne måleprogrammet. Hvis programvaren kommuniserer riktig med skanneren, vises advarselen om at den infrarøde laseren slås på. Kalibrer ma…

Representative Results

Vellykket LDPI bør resultere i konsekvente gjentatte målskanninger, med ikke mer enn 100-150 perfusjonsenhetsvariasjon (tilsvarende omtrent 10% av den vanlige gjennomsnittlige perfusjonen for musens fotpute) mellom de tre skanningene (figur 2). Som vist i figur 2, hjelper gjentatte skanninger med å fastslå at musen er riktig likevektet slik at iskemisk / kontrollforholdet best gjenspeiler den underliggende blodstrømmen i motsetning til variasjon i dermal pe…

Discussion

Konsistent teknikk er avgjørende for å oppnå pålitelige resultater med LDPI. De samme bedøvelses- og temperaturinnstillingene, museposisjonen og interesseområdet bør brukes gjennom hele tidsforløpet. Ulike bedøvelsesmidler vil resultere i høyere eller lavere perfusjonsverdier9. Isofluran anestesi er praktisk på grunn av sin raske utbrudd og fremvekst samt generell sikkerhet. En konsekvent prosentandel av isofluran bør brukes som dybde av anestesi med dette vasodilatoriske middelet kan …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble utført med bruk av fasiliteter og ressurser ved VA Puget Sound Health Care Center. Arbeidet er forfatterens og gjenspeiler ikke nødvendigvis stillingen eller politikken til departementet for veteransaker eller usAs regjering. Dr Tang er for tiden finansiert via VA (Merit 5 I01 BX004975-02).

Materials

Black nonreflective material Fabric store, black neoprene recommended by company
F/air cannister A.M. Bickford Inc 80120
Homeothermic blanket with rigid metal probe Harvard Apparatus Also comes with flexible probe, but this is less durable
Isoflurane Anesthesia machine Drager Multiple manufacturers
Isoflurane induction chamber VetEquip 941444 2 L chamber
Moor laser Doppler perfusion imager Moor Instruments MoorLDI2-IR Higher resolution imager (MoorLDI2-HIR)
Mouse Anesthesia nose cone Multiple manufacturers
Nair Nair
Oxygen tank Multiple manufacturers
Surgilube Multiple distributors

References

  1. Varma, P., Stineman, M. G., Dillingham, T. R. Epidemiology of limb loss. Physical Medicine and Rehabilitation Clinics of North America. 25 (1), 1-8 (2014).
  2. Farber, A. Chronic Limb-Threatening Ischemia. New England Journal of Medicine. 379 (2), 171-180 (2018).
  3. Abularrage, C. J., et al. Evaluation of the microcirculation in vascular disease. Journal of Vascular Surgery. 42 (3), 574-581 (2005).
  4. Houben, A., Martens, R. J. H., Stehouwer, C. D. A. Assessing Microvascular Function in Humans from a Chronic Disease Perspective. Journal of the American Society of Nephrology. 28 (12), 3461-3472 (2017).
  5. Mahe, G., Humeau-Heurtier, A., Durand, S., Leftheriotis, G., Abraham, P. Assessment of skin microvascular function and dysfunction with laser speckle contrast imaging. Circulation: Cardiovascular Imaging. 5 (1), 155-163 (2012).
  6. Murray, A. K., Herrick, A. L., King, T. A. Laser Doppler imaging: a developing technique for application in the rheumatic diseases. Rheumatology (Oxford). 43 (10), 1210-1218 (2004).
  7. Greco, A., et al. Repeatability, reproducibility and standardisation of a laser Doppler imaging technique for the evaluation of normal mouse hindlimb perfusion. Sensors (Basel). 13 (1), 500-515 (2012).
  8. Sonmez, T. T., et al. A novel laser-Doppler flowmetry assisted murine model of acute hindlimb ischemia-reperfusion for free flap research. PLoS One. 8 (6), 66498 (2013).
  9. Gargiulo, S., et al. Effects of some anesthetic agents on skin microcirculation evaluated by laser Doppler perfusion imaging in mice. BMC Veterinary Research. 9, 255 (2013).
  10. Ankri-Eliahoo, G., Weitz, K., Cox, T. C., Tang, G. L. p27(kip1) Knockout enhances collateralization in response to hindlimb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (5), 1351-1359 (2016).
  11. McEnaney, R. M., Shukla, A., Madigan, M. C., Sachdev, U., Tzeng, E. P2Y2 nucleotide receptor mediates arteriogenesis in a murine model of hind limb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (1), 216-225 (2016).
  12. Padgett, M. E., McCord, T. J., McClung, J. M., Kontos, C. D. Methods for Acute and Subacute Murine Hindlimb Ischemia. Journal of Visualized Experiments. (112), e54166 (2016).
  13. Niiyama, H., Huang, N. F., Rollins, M. D., Cooke, J. P. Murine model of hindlimb ischemia. Journal of Visualized Experiments. (23), e1035 (2009).
  14. Chalothorn, D., Faber, J. E. Strain-dependent variation in collateral circulatory function in mouse hindlimb. Physiological Genomics. 42 (3), 469-479 (2010).
  15. Helisch, A., et al. Impact of mouse strain differences in innate hindlimb collateral vasculature. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 26 (3), 520-526 (2006).
  16. Faber, J. E., et al. Aging causes collateral rarefaction and increased severity of ischemic injury in multiple tissues. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 31 (8), 1748-1756 (2011).
  17. Forrester, K. R., Stewart, C., Tulip, J., Leonard, C., Bray, R. C. Comparison of laser speckle and laser Doppler perfusion imaging: measurement in human skin and rabbit articular tissue. Medical & Biological Engineering & Computing. 40 (6), 687-697 (2002).
  18. Briers, J. D. Laser Doppler, speckle and related techniques for blood perfusion mapping and imaging. Physiological Measurement. 22 (4), 35-66 (2001).
  19. Heeman, W., Steenbergen, W., van Dam, G., Boerma, E. C. Clinical applications of laser speckle contrast imaging: a review. Journal of Biomedical Optics. 24 (8), 1-11 (2019).
  20. Nguyen, T., Davidson, B. P. Contrast Enhanced Ultrasound Perfusion Imaging in Skeletal Muscle. Journal of Cardiovascular Imaging. 27 (3), 163-177 (2019).
  21. Zaccagnini, G., et al. Magnetic Resonance Imaging Allows the Evaluation of Tissue Damage and Regeneration in a Mouse Model of Critical Limb Ischemia. PLoS One. 10 (11), 0142111 (2015).
  22. Penuelas, I., et al. PET as a measurement of hindlimb perfusion in a mouse model of peripheral artery occlusive disease. Journal of Nuclear Medicine. 48 (13), 1216-1223 (2007).
  23. Jia, Y., Qin, J., Zhi, Z., Wang, R. K. Ultrahigh sensitive optical microangiography reveals depth-resolved microcirculation and its longitudinal response to prolonged ischemic event within skeletal muscles in mice. Journal of Biomedical Optics. 16 (8), 086004 (2011).
  24. Turaihi, A. H., et al. Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion. Journal of Visualized Experiments. (121), e54912 (2017).
  25. Liu, C., et al. Enhanced autophagy alleviates injury during hindlimb ischemia/reperfusion in mice. Experimental and Therapeutic Medicine. 18 (3), 1669-1676 (2019).
  26. Liu, D. L., Svanberg, K., Wang, I., Andersson-Engels, S., Svanberg, S. Laser Doppler perfusion imaging: new technique for determination of perfusion and reperfusion of splanchnic organs and tumor tissue. Lasers in Surgery and Medicine. 20 (4), 473-479 (1997).
  27. Jing, Y., Bai, F., Chen, H., Dong, H. Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat. Journal of Visualized Experiments. (135), e56243 (2018).
  28. Zhang, D., Li, S., Wang, S., Ma, H. An evaluation of the effect of a gastric ischemia-reperfusion model with laser Doppler blood perfusion imaging. Lasers in Medical Science. 21 (4), 224-228 (2006).
  29. Fitzal, F., et al. Circulatory changes after prolonged ischemia in the epigastric flap. Journal of Reconstructive Microsurgery. 17 (7), 535-543 (2001).
check_url/62012?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tang, G. L., Kim, K. J. Laser Doppler Perfusion Imaging in the Mouse Hindlimb. J. Vis. Exp. (170), e62012, doi:10.3791/62012 (2021).

View Video