Summary

Un método simplificado para generar organoides renales a partir de células madre pluripotentes humanas

Published: April 13, 2021
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Summary

Aquí describimos un protocolo para generar organoides renales a partir de células madre pluripotentes humanas (hPSCs). Este protocolo genera organoides renales en dos semanas. Los organoides renales resultantes se pueden cultivar en matraces giratorios a gran escala o placas de agitación magnética de múltiples pozos para enfoques paralelos de prueba de drogas.

Abstract

Los organoides renales generados a partir de hPSC han proporcionado una fuente ilimitada de tejido renal. Los organoides renales humanos son una herramienta invaluable para estudiar la enfermedad y las lesiones renales, desarrollar terapias basadas en células y probar nuevas terapias. Para tales aplicaciones, se necesita un gran número de organoides uniformes y ensayos altamente reproducibles. Nos hemos basado en nuestro protocolo de organoides renales publicado anteriormente para mejorar la salud general de los organoides. Este protocolo 3D simple y robusto implica la formación de cuerpos embrionarios uniformes en un medio de componente mínimo que contiene lípidos, suplemento de insulina-transferrina-selenio-etanolamina y alcohol polivinílico con inhibidor de GSK3 (CHIR99021) durante 3 días, seguido de cultivo en medio que contiene reemplazo sérico knock-out (KOSR). Además, los ensayos de agitación permiten reducir la aglomeración de los cuerpos embrionarios y mantener un tamaño uniforme, lo cual es importante para reducir la variabilidad entre los organoides. En general, el protocolo proporciona un método rápido, eficiente y rentable para generar grandes cantidades de organoides renales.

Introduction

En los últimos años, se han desarrollado una serie de protocolos para diferenciar las células madre pluripotentes humanas en organoides renales 1,2,3,4,5. Los organoides renales han proporcionado una herramienta importante para ayudar a la investigación en nuevos enfoques de medicina regenerativa, modelar enfermedades relacionadas con los riñones, realizar estudios de toxicidad y desarrollo de fármacos terapéuticos. A pesar de su amplia aplicabilidad, los organoides renales tienen limitaciones como la falta de maduración, la capacidad limitada de cultivo a largo plazo in vitro y la escasez de varios tipos de células que se encuentran en el riñón humano 6,7,8. Trabajos recientes se han centrado en mejorar el nivel de maduración organoide, alargar los periodos de cultivo y ampliar la complejidad de las poblaciones de células renalesmodificando los protocolos existentes 9,10,11,12. En esta iteración actual de nuestro protocolo establecido 5,13, hemos modificado los componentes del medio en la primera etapa del protocolo a un medio base libre de suero suplementado con insulina-transferrina-selenio-etanolamina (ITSE), lípidos, alcohol polivinílico (E5-ILP) y CHIR99021 (Figura 1). Estos cambios proporcionan un medio totalmente definido, libre de suero, bajo en proteínas, con menos componentes que nuestra composición media anterior 5,13 y sin factores de crecimiento adicionales. Como resultado, el medio de la primera etapa requiere menos mano de obra para preparar que nuestra versión publicada anteriormente, y puede reducir la variabilidad de lote a lote5. Estudios previos han demostrado que tanto la insulina como la transferrina son importantes en el cultivo sin suero14,15, sin embargo, los altos niveles de insulina pueden ser inhibitorios a la diferenciación del mesodermo16. Hemos mantenido los niveles bajos de insulina según lo dispuesto en el protocolo original, y hemos reducido aún más los niveles de KOSR (que contiene insulina) en la segunda etapa del ensayo. En línea con otros protocolos para la formación de organoides renales, los niveles más bajos de KOSR son beneficiosos para mantener un equilibrio entre la proliferación y la diferenciación del tejido renal17. Además, hemos bajado la concentración de glucosa en nuestro medio Estadio II13.

Nuestro método describe una configuración para el ensayo de suspensión de organoides renales, produciendo hasta ~ 1,000 organoides de una placa de cultivo inicial de ~ 60% confluente hPSC 100 mm como se describe en la publicación original 5,13. Este protocolo se puede escalar fácilmente hasta comenzar con múltiples placas de 100 mm o 150 mm para aumentar aún más el número de organoides.

Protocol

Todos los experimentos con hPSC se realizaron de conformidad con las directrices institucionales y se llevaron a cabo en una campana de bioseguridad de Clase II con el equipo de protección personal adecuado. Todos los reactivos son de grado de cultivo celular a menos que se indique lo contrario. Todos los cultivos se incuban a 37 °C, 5% CO2 atmósfera aireada. En todas las etapas del ensayo, se pueden recolectar cuerpos embrioides u organoides renales, y fijarlos o prepararlos para su análisis. Las líneas …

Representative Results

En esta versión más reciente de nuestro protocolo, la diferenciación organoide renal se inicia en un medio definido y bajo en proteínas. Los ensayos se realizan completamente en suspensión y se basan en la capacidad innata de la diferenciación y organización de hPSCs para el inicio de la tubulogénesis. Un solo ensayo que se origina a partir de una placa de cultivo hPSC confluente de 100 mm ~ 60% produce rutinariamente 500-1,000 organoides renales, como se muestra en nuestra publicación anterior…

Discussion

Estudios previos han demostrado que los pasos iniciales del protocolo son críticos para la diferenciación del mesodermo intermedio 5,19,20 y, por lo tanto, es esencial implementar una composición media estricta en esta etapa. La eliminación de componentes indefinidos como suero, albúmina, híbrido libre de proteínas medio II de la primera etapa del protocolo puede ayudar a mejorar la eficiencia de diferenciación consisten…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta investigación fue financiada por los Institutos Nacionales de Salud R01 DK069403, UC2 DK126122 y P30-DK079307 y ASN Foundation for Kidney Research Ben J. Lipps Research Fellowship Program to AP.

Materials

2-Mercaptoethanol Thermo Fisher 21-985-023
Anti-adherence rinsing solution STEMCELL Technologies 7010
CHIR99021 STEMCELL Technologies 72054 10 mM stock in DMSO
Corning disposable spinner flasks Fisher Scientific 07-201-152
Corning Ultra-Low Attachment 6-well plates Fisher Scientific 07-200-601
Corning Slow-Speed Stirrers Fisher Scientific 11-495-03 Multi plate magnetic stirrer for spinner flask culture
Dispase STEMCELL Technologies 7923 Aliquot and freeze
DMEM, low glucose, pyruvate, no glutamine, no phenol red Thermo Fisher 11054020
DPBS 1x, no calcium, no magnesium Thermo Fisher 14-190-250
Egg / Oval Stirring Bars 2mag PI20106
Excelta General-Purpose Tweezers Fisher Scientific 17-456-103 Keep sterile in the cell culture hood
EZBio Single Use Media Bottle, 250mL Foxx Life Sciences 138-3211-FLS Used to make PVA 10%
Falcon Standard Tissue Culture Dishes (100 mm) Thermo Fisher 08-772E
Fisherbrand Sterile Aspirating Pipet 2mL Fisher Scientific 14-955-135
Fisherbrand  Cell Lifters – Cell lifter Fisher Scientific 08-100-240
Fisherbrand Multi Function 3D Rotators Fisher Scientific 88-861-047 Orbital shaker
Geltrex LDEV-Free Reduced Growth Factor Basement Membrane Matrix Thermo Fisher A1413302 BME. Aliquot on ice and freeze. Another suitable matrix alternative is Matrigel or Cultrex.
Gentle Cell Dissociation Reagent STEMCELL Technologies 7174 GCDR
GlutaMAX Supplement Thermo Fisher 35-050-061 L-glutamine supplement.
HEPES (1M) Thermo Fisher 15-630-080
Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine Thermo Fisher 51-500-056 ITSE
KnockOut  Serum Replacement – Multi-Species Thermo Fisher A3181502 KOSR. Aliquot and freeze
Lipid Mixture 1, Chemically Defined Millipore-Sigma L0288-100ML
MEM Non-Essential Amino Acids Solution Thermo Fisher 11140-050
MilliporeSigma Stericup Quick Release-GP Sterile Vacuum Filtration System 500mL Fisher Scientific S2GPU05RE
MilliporeSigma  Stericup Quick Release-GP Sterile Vacuum Filtration System 250mL Fisher Scientific S2GPU02RE
MIXcontrol MTP / Variomag TELEcontrol MTP Control Unit 2mag VMF 90250 U
MIXdrive 6 MTP / Variomag TELEdrive 6 MTP Microplate Stirring Drive 2mag VMF 40600 6MSP
MP Biomedicals  7X Cleaning Solution Fisher Scientific MP0976670A4 Tissue culture suitable detergent. Make a 5% solution in water
mTeSR1 STEMCELL Technologies 85850 hPSC medium.TeSR-E8, NutriStem XF, and mTeSR Plus medium have also been tested and are suitable alternatives. 
Nunc 50 mL Conical, Sterile Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-270
Nunc 15mL Conical Sterile Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-268
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher 15-140-122 Aliquot and freeze
Plasmocin Invivogen ant-mpt Anti-mycoplasma reagent. Aliquot and freeze
pluriStrainer® 200 µm Fisher Scientific NC0776417 Cell strainer
pluriStrainer® 500 µm Fisher Scientific NC0822591 Cell strainer
Poly(vinyl alcohol) 87-90% hydrolyzed  (PVA) Millipore-Sigma P8136-250G 10% in DPBS stirring at 98 degrees C until disolves, make in 138-3211-FLS
ROCK inhibitor Y-27632 (ROCKi) STEMCELL Technologies 72304 10 mM stock in DPBS
Sterile Disposable Serological Pipets  – 10mL Fisher Scientific 13-678-11E
Sterile Disposable Serological Pipets – 25mL Fisher Scientific 13-678-11
Sterile Disposable Serological pipette – 5 mL Fisher Scientific 13-678-12D
TeSR-E5 STEMCELL Technologies 5916 Serum-free, low protein base medium for E5-ILP
Variomag distriBOX 2 Distributor 2mag VMF 90512 If you use more than one MIXdrive

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Przepiorski, A., Crunk, A. E., Holm, T. M., Sander, V., Davidson, A. J., Hukriede, N. A. A Simplified Method for Generating Kidney Organoids from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (170), e62452, doi:10.3791/62452 (2021).

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