Summary

تلطيخ السيتوبلازمية Ca2+ مع فلوو-4/AM في لب التفاح

Published: November 06, 2021
doi:

Summary

تم تحميل البروتوبلاستات المعزولة لخلايا لب التفاح بكاشف فلوري للكالسيوم للكشف عن تركيز Ca2+ السيتوبلازمي.

Abstract

Cytosolic Ca2 + يلعب دورا رئيسيا في تطوير النبات. تصوير الكالسيوم هو الأسلوب الأكثر تنوعا للكشف عن التغيرات الديناميكية في Ca2 + في السيتوبلازم. في هذه الدراسة، حصلنا على بروتوبلاستس قابلة للحياة من خلايا اللب عن طريق التحلل المائي الأنزيمي. تم احتضان البروتوبلاست المعزول مع كاشف الفلورسنت صغير الجزيء (Fluo-4/AM) لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية. المسابير الفلورية ملطخة بنجاح cytosolic Ca2 + ولكن لم تتراكم في vacuoles. La3+، مانع قناة Ca2 + ، انخفض كثافة الفلورية السيتوبلازمية. تشير هذه النتائج إلى أنه يمكن استخدام Fluo-4/AM للكشف عن التغيرات في السيتوسوليك Ca2+ في لحم الفاكهة. باختصار، نقدم طريقة لعزل البروتوبلاست بشكل فعال من خلايا اللحم في الفاكهة والكشف عن Ca2+ عن طريق تحميل كاشف فلوري الكالسيوم صغير الجزيء في السيتوبلازم لخلايا اللب.

Introduction

Ca2 + يلعب دورا هاما في نقل إشارة النبات والتمثيل الغذائي1،2. علاوة على ذلك ، فإنه ينظم سمات جودة الفاكهة3،4، بما في ذلك صلابة ، محتوى السكر ، والتعرض للاضطرابات الفسيولوجية أثناء التخزين5،6. السيتوبلازمية Ca2 + يلعب دورا هاما في نقل الإشارات وينظم نمو النبات والتنمية7. اضطراب التوازن الكالسيوم الخلوي يمكن أن تحفز حفرة مريرة في التفاح8، مرض بقعة بنية اللون في الكمثرى9، وتعفن السرة في الطماطم10، مما يؤثر على جودة الفاكهة ويسبب خسائر اقتصادية شديدة3،11. التصوير بالكالسيوم لديه ما يكفي من الدقة المكانية والزمنية وهو وسيلة هامةلمراقبة ديناميات Ca 2 + في الخلايا الحية12،13.

في الوقت الحاضر ، هناك طريقتان رئيسيتان لتصوير الكالسيوم داخل الخلايا في الخلايا الحية: واحدة تستخدم مسابير فلورية كيميائية صغيرة جزيئية14، والأخرى هي مستشعر ترميز الجينات (GECI)15،16. نظرا لصعوبة إنشاء نظام معدل وراثيا مستقر في أشجار الفاكهة وتطوير الفاكهة لفترة أطول ، فإن GECIS غير مناسب لتصوير الفاكهة Ca2 + fluorescence.

مسابير الفلورسنت جزيء صغير مثل فلوو-4/AM لها ميزة خاصة: شكلها إستر AM (الخلية نفاذية أستوكسي ميثيل استر مشتق) يمكن بسهولة الجزء الأكبر تحميلها في الخلايا الحية دون الحاجة إلى الترافيكتيون، مما يجعلها مرنة وسريعة وغير سامة للخلايا17. فلوو-4/AM يمكن تحميلها بنجاح في أنبوب حبوب اللقاح من Pyrus pyrifolia18 وبيتونيا،19 وكذلك في خلايا الحراسة20 والشعر الجذر من Arabidopsis21.

في الوقت الحاضر، وهناك تقارير قليلة عن تلطيخ مضان الكالسيوم من خلايا اللب22. كعنصر معدني مهم، يلعب الكالسيوم دورا رئيسيا في نمو ومراقبة جودة ثمار الأشجار مثل التفاح. ومن المسلم به عالميا أشجار التفاح كنوع اقتصادي مهم، والتفاح تعتبر الغذاء الصحي23. في هذه الدراسة، حصلنا على protoplasts قابلة للحياة من لب فاكهة التفاح من خلال التحلل المائي الأنزيمي ومن ثم تحميل الكواشف الفلورية جزيء صغير في السيتوبلازم للكشف عن Ca2 +.

Protocol

1. استخراج بروتوبلاست إعداد الحل الأساسي: 20 م م كل2، 5 م 2 -(N-morpholino) حمض الإيثانسولفونيك، و 0.4 M D-sorbitol.ملاحظة: تم ضبط درجة الحموضة للمحلول الأساسي إلى 5.8 مع 0.1 متر تريس العازلة، وتصفيتها من خلال 0.22 ميكرومتر مرشحات للذوبان في الماء، وتخزينها في 4 درجة مئوية. إعداد الحل ا…

Representative Results

بعد البروتوكول المذكور أعلاه ، استخدمنا الأسلوب الأنزيمي للحصول على بروتوبلاست قابلة للحياة من اللب(الشكل 1). وكان بعض protoplasts vacuoles ، في حين أن البعض الآخر لا. في حين أن protoplasts أظهرت أي مضان عندما لم يتم تحميل مؤشر Ca2 + الفلورسنت فيها. عندما تم تحميل Fluo-4/AM في protoplasts ، أصبح ا…

Discussion

في هذه الدراسة ، تم الحصول على protoplasts قابلة للحياة عن طريق التحلل المائي الأنزيمي. لاحظ أن هذا الأسلوب يتطلب التفاح الطازج. ويسمح هذا البروتوكول بالعزل السريع لعدد كبير من المواد الأولية عن لب الفاكهة لاستخدامها في الدراسات البحثية. ولا يقتصر تطبيق هذه الطريقة على ‘فوجي’؛ بل إن المسألة هي أ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من خلال مشروع تحسين التنوع الزراعي في مقاطعة شاندونغ (2019LZGC007) وفريق ابتكار شجرة الفاكهة التابع لنظام شاندونغ الحديث لتكنولوجيا الصناعة الزراعية (SDAIT-06-05).

Materials

10× phosphate-buffered saline Solarbio P1022 PBS (phosphate buffered solution) is a phosphate buffer solution, which can provide a relatively stable ionic environment and pH buffering capacity. It is a buffer salt solution often used in biology for molecular cloning and cell culture. The pH is 7.4. 
2-(N-morpholino)ethanesulfonic acid Solarbio M8010 Biological buffer
CaCl2·2H2O Solarbio C8370 Calcium chloride dihydrate is a white or gray chemical, mostly in granular form.
Cellulase R-10 Yakult Honsha MX7352 Degrade plant cell walls.
D-sorbitol Solarbio S8090 It has good moisturizing properties, prevents drying, and prevents sugar, salt, etc. from crystallizing.
F-127 Thermo Fisher Scientific P6867 Pluronic F-127 is a non-ionic, surfactant polyol (molecular weight of approximately 12500 Daltons), which has been found to be beneficial to promote the dissolution of water-insoluble dyes and other materials in physiological media. 
FDA Thermo Fisher Scientific F1303 FDA is a cell-permeant esterase substrate that can serve as a viability probe that measures both enzymatic activity, which is require to activate its fluorescence, and cell-membrane integrity, which is required for intracellular retention of their fluorescent product. 
Fluo-4/AM Thermo Fisher Scientific F14201 The green fluorescent calcium indicator Fluo-4/AM is an improved version of the calcium indicator Fluo-3/AM. The Fluo-4/AM loads faster and is brighter at the same concentration. It can be well excited with a 488 nm argon ion laser.
Fluorescence microscope Thermo Fisher EVOS Auto 2 Observe the fluorescence image.
Macerozyme R-10 Yakult Honsha MX7351 Degrade plant tissue to separate single cells.
Tris Solarbio T8060 It is widely used in the preparation of buffers in biochemistry and molecular biology experiments.

References

  1. Hocking, B., Tyerman, S. D., Burton, R. A., Gilliham, M. Fruit calcium: Transport and physiology. Frontiers in Plant Science. 7, 569 (2016).
  2. Li, J., Yang, H. -. q., Yan, T. -. l., Shu, H. -. r. Effect of indole butyric acid on the transportation of stored calcium in Malus hupehensis rhed. Seedling. Agricultural Sciences in China. 5 (11), 834-838 (2006).
  3. Gao, Q., Xiong, T., Li, X., Chen, W., Zhu, X. Calcium and calcium sensors in fruit development and ripening. Scientia Horticulturae. 253, 412-421 (2019).
  4. Barrett, D. M., Beaulieu, J. C., Shewfelt, R. L. Color, flavor, texture, and nutritional quality of fresh-cut fruits and vegetables: desirable levels, instrumental and sensory measurement, and the effects of processing. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 50 (5), 369-389 (2010).
  5. Deell, J. R., Khanizadeh, S., Saad, F., Ferree, D. C. Factors affecting apple fruit firmness–a review. Journal- American Pomological Society. 55 (1), 8-27 (2001).
  6. Johnston, J., Hewett, E., Hertog, M. A. T. M. Postharvest softening of apple (Malus domestica) fruit: A review. New Zealand Journal of Experimental Agriculture. 30 (3), 145-160 (2002).
  7. Demidchik, V., Shabala, S., Isayenkov, S., Cuin, T. A., Pottosin, I. Calcium transport across plant membranes: mechanisms and functions. New Phytologist. 220 (1), 49-69 (2018).
  8. Miqueloto, A., et al. Mechanisms regulating fruit calcium content and susceptibility to bitter pit in cultivars of apple. Acta horticulturae. 1194 (1194), 469-474 (2018).
  9. Kou, X., et al. Effects of CaCl2 dipping and pullulan coating on the development of brown spot on ‘Huangguan’ pears during cold storage. Postharvest Biology and Technology. 99, 63-72 (2015).
  10. Vinh, T. D., et al. Comparative analysis on blossom-end rot incidence in two tomato cultivars in relation to calcium nutrition and fruit growth. The Horticulture Journal. 87 (1), 97-105 (2018).
  11. Yamane, T. Foliar calcium applications for controlling fruit disorders and storage life in deciduous fruit trees. Japan Agricultural Research Quarterly. 48 (1), 29-33 (2014).
  12. Grienberger, C., Konnerth, A. Imaging calcium in neurons. Neuron. 73 (5), 862-885 (2012).
  13. Bootman, M. D., Rietdorf, K., Collins, T. J., Walker, S., Sanderson, M. J. Ca2+-sensitive fluorescent dyes and intracellular Ca2+ imaging. CSH Protocols. 2013 (2), 83 (2013).
  14. Hirabayashi, K., et al. Development of practical red fluorescent probe for cytoplasmic calcium ions with greatly improved cell-membrane permeability. Cell Calcium. 60 (4), 256-265 (2016).
  15. Krebs, M., et al. FRET-based genetically encoded sensors allow high-resolution live cell imaging of Ca(2)(+) dynamics. Plant Journal. 69 (1), 181-192 (2012).
  16. Zhao, Y., et al. An expanded palette of genetically encoded Ca(2)(+) indicators. Science. 333 (2), 1888-1891 (2011).
  17. Gee, K. R., et al. Chemical and physiological characterization of fluo-4 Ca2+-indicator dyes. Cell Calcium. 27 (2), 97-106 (2000).
  18. Qu, H., Xing, W., Wu, F., Wang, Y. Rapid and inexpensive method of loading fluorescent dye into pollen tubes and root hairs. PLoS One. 11, 0152320 (2016).
  19. Suwińska, A., Wasąg, P., Zakrzewski, P., Lenartowska, M., Lenartowski, R. Calreticulin is required for calcium homeostasis and proper pollen tube tip growth in Petunia. Planta. 245 (5), 909-926 (2017).
  20. Sun, L., et al. NADK2 positively modulates abscisic acid-induced stomatal closure by affecting accumulation of H2O2, Ca2+ and nitric oxide in Arabidopsis guard cells. Plant Science. 262, 81-90 (2017).
  21. Niu, Y. F., et al. Magnesium availability regulates the development of root hairs in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Plant Cell and Environment. 37 (12), 2795-2813 (2014).
  22. Qiu, L., Wang, Y., Qu, H. Loading calcium fluorescent probes into protoplasts to detect calcium in the flesh tissue cells of Malus domestica. Horticulture Research. 7, 91 (2020).
  23. Boyer, J., Liu, R. H. Apple phytochemicals and their health benefits. Nutrition Journal. 3 (1), 5 (2004).
  24. Takahashi, A., Camacho, P., Lechleiter, J. D., Herman, B. Measurement of intracellular calcium. Physiological Reviews. 79 (4), 1089-1125 (1999).
  25. Qu, H., Shang, Z., Zhang, S., Liu, L., Wu, J. Identification of hyperpolarization-activated calcium channels in apical pollen tubes of Pyrus pyrifolia. New Phytologist. 174 (3), 524-536 (2007).
  26. Hadjantonakis, A. K., Pisano, E., Papaioannou, V. E. Tbx6 regulates left/right patterning in mouse embryos through effects on nodal cilia and perinodal signaling. PLoS One. 3 (6), 2511 (2008).
  27. DeSimone, J. A., et al. Changes in taste receptor cell [Ca2+]i modulate chorda tympani responses to salty and sour taste stimuli. Journal of Neurophysiology. 108 (12), 3206-3220 (2012).
  28. Kao, J. P., Harootunian, A. T., Tsien, R. Y. Photochemically generated cytosolic calcium pulses and their detection by fluo-3. Journal of Biological Chemistry. 264 (14), 8179-8184 (1989).
  29. Merritt, J. E., Mccarthy, S. A., Davies, M., Moores, K. E. Use of fluo-3 to measure cytosolic Ca2+ in platelets and neutrophils. Loading cells with the dye, calibration of traces, measurements in the presence of plasma, and buffering of cytosolic Ca2. Biochemical Journal. 269 (2), 513-519 (1990).
  30. Li, W., et al. A comparative study on Ca content and distribution in two Gesneriaceae species reveals distinctive mechanisms to cope with high rhizospheric soluble calcium. Frontiers in Plant Science. 5 (5), 647 (2014).
  31. Zhang, W., Rengel, Z., Kuo, J. Determination of intracellular Ca2+ in cells of intact wheat roots: loading of acetoxymethyl ester of Fluo-3 under low temperature. Plant Journal. 15 (1), 147-151 (1998).
  32. Qu, H., Jiang, X., Shi, Z., Liu, L., Zhang, S. Fast loading ester fluorescent Ca2+ and pH indicators into pollen of Pyrus pyrifolia. Journal of Plant Research. 125 (1), 185-195 (2012).
  33. Wang, Y., et al. Disruption of actin filaments induces mitochondrial Ca2+ release to the cytoplasm and [Ca2+]c changes in Arabidopsis. root hairs. BMC Plant Biology. 10, 53 (2010).
  34. Fujimori, T., Jencks, W. P. Lanthanum inhibits steady-state turnover of the sarcoplasmic reticulum calcium ATPase by replacing magnesium as the catalytic ion. Journal of Biological Chemistry. 265 (27), 16262-16270 (1990).
check_url/62526?article_type=t&slug=staining-the-cytoplasmic-ca2-with-fluo-4am-in-apple-pulp

Play Video

Cite This Article
Qiu, L., Huang, D., Wang, Y., Qu, H. Staining the Cytoplasmic Ca2+ with Fluo-4/AM in Apple Pulp. J. Vis. Exp. (177), e62526, doi:10.3791/62526 (2021).

View Video