Summary

יישומים טכניים של מערך מיקרו-אלקטרודות והקלטות מהדקי טלאים על קרדיומיוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על-ידי בני אדם

Published: August 04, 2022
doi:

Summary

קרדיומיוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם (hiPSC-CMs) התגלו כמודל מבטיח במבחנה לבדיקת קרדיוטוקסיות הנגרמת על ידי תרופות ומידול מחלות. כאן אנו מפרטים פרוטוקול למדידת התכווצות ואלקטרופיזיולוגיה של hiPSC-CMs.

Abstract

קרדיוטוקסיות הנגרמת על ידי תרופות היא הגורם המוביל להתשה של תרופות ולגמילה מהשוק. לכן, שימוש במודלים מתאימים להערכת בטיחות הלב הפרה-קלינית הוא צעד קריטי במהלך פיתוח תרופות. נכון לעכשיו, הערכת בטיחות הלב עדיין תלויה מאוד במחקרים בבעלי חיים. עם זאת, מודלים של בעלי חיים סובלים מספציפיות ירודה של בני אדם בשל הבדלים ספציפיים למינים, במיוחד במונחים של מאפיינים אלקטרופיזיולוגיים לבביים. לפיכך, יש צורך דחוף לפתח מודל אמין, יעיל ומבוסס אדם להערכת בטיחות לב פרה-קלינית. קרדיומיוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על-ידי בני אדם (hiPSC-CMs) התגלו כמודל חוץ-גופי שלא יסולא בפז לבדיקת קרדיוטוקסיות הנגרמת על-ידי תרופות ולמידול מחלות. ניתן לקבל hiPSC-CMs מאנשים עם רקע גנטי מגוון ומצבים חולים שונים, מה שהופך אותם לפונדקאית אידיאלית להערכת קרדיוטוקסיות הנגרמת על ידי תרופות בנפרד. לכן, מתודולוגיות כדי לחקור באופן מקיף את המאפיינים הפונקציונליים של hiPSC-CMs צריך להיות מבוסס. בפרוטוקול זה אנו מפרטים מבחנים פונקציונליים שונים שניתן להעריך ב- hiPSC-CMs, כולל מדידת התכווצות, פוטנציאל שדה, פוטנציאל פעולה וטיפול בסידן. באופן כללי, לשילוב של hiPSC-CMs בהערכת בטיחות לב פרה-קלינית יש פוטנציאל לחולל מהפכה בפיתוח תרופות.

Introduction

פיתוח תרופות הוא תהליך ארוך ויקר. מחקר של תרופות טיפוליות חדשות שאושרו על ידי מנהל המזון והתרופות האמריקאי (FDA) בין השנים 2009 ל-2018 דיווח כי העלות החציונית המשוערת של מחקרים וניסויים קליניים מהוונים הייתה 985 מיליון דולר למוצר1. קרדיוטוקסיות הנגרמת על ידי תרופות היא הגורם המוביל להתשה של תרופות ולגמילה מהשוק2. יש לציין כי קרדיוטוקסיות מדווחת בקרב סוגים רבים של תרופות טיפוליות3. לכן, הערכת בטיחות הלב היא מרכיב מכריע בתהליך פיתוח התרופה. הפרדיגמה הנוכחית להערכת בטיחות הלב עדיין תלויה מאוד במודלים של בעלי חיים. עם זאת, הבדלים בין מינים מהשימוש במודלים של בעלי חיים מוכרים יותר ויותר כגורם עיקרי לתחזיות לא מדויקות עבור קרדיוטוקסיות הנגרמות על ידי תרופות בחולים אנושיים4. לדוגמה, המורפולוגיה של פוטנציאל הפעולה הלבבית שונה באופן מהותי בין בני אדם לעכברים בשל התרומות של זרמי רפולריזציה שונים5. בנוסף, איזופורמים דיפרנציאליים של מיוזין לב ורנ”א מעגלי שיכולים להשפיע על הפיזיולוגיה של הלב תועדו היטב בקרב מינים 6,7. כדי לגשר על פערים אלה, חובה לבסס מודל אמין, יעיל ומבוסס אדם להערכת בטיחות לב פרה-קלינית.

ההמצאה פורצת הדרך של טכנולוגיית תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים (iPSC) יצרה פלטפורמות חסרות תקדים לבדיקת תרופות ומידול מחלות. במהלך העשור האחרון, שיטות ליצירת קרדיומיוציטים פלוריפוטנטיים הנגרמים על ידי האדם (hiPSC-CMs) הפכו מבוססות היטב 8,9. hiPSC-CMs משכו עניין רב ביישומים הפוטנציאליים שלהם במידול מחלות, בדיקת קרדיוטוקסיות הנגרמת על ידי תרופות ורפואה מדויקת. לדוגמה, hiPSC-CMs שימשו למודל הפנוטיפים הפתולוגיים של מחלות לב הנגרמות על ידי ירושה גנטית, כגון תסמונת QT ארוכה10, קרדיומיופתיה היפרטרופית 11,12, וקרדיומיופתיה מורחבת13,14,15. כתוצאה מכך, זוהו מסלולי איתות מרכזיים המעורבים בפתוגנזה של מחלות לב, מה שיכול לשפוך אור על אסטרטגיות טיפוליות פוטנציאליות לטיפול יעיל. יתר על כן, hiPSC-CMs שימשו לבדיקת קרדיוטוקסיות הנגרמת על ידי תרופות הקשורות לסוכנים אנטי סרטניים, כולל דוקסורוביצין, טרסטוזומאב ומעכבי טירוזין קינאז16,17,18; אסטרטגיות להפחתת קרדיוטוקסיות כתוצאה מכך נמצאות בחקירה. לבסוף, המידע הגנטי שנשמר ב- hiPSC-CMs מאפשר סריקה וחיזוי של קרדיוטוקסיות הנגרמות על ידי תרופות הן ברמת הפרט והן ברמת האוכלוסייה19,20. באופן קולקטיבי, hiPSC-CMs הוכיחו את עצמם ככלי רב ערך לחיזוי בטיחות לב מותאם אישית.

המטרה הכוללת של פרוטוקול זה היא לבסס מתודולוגיות כדי לחקור באופן מקיף ויעיל את המאפיינים הפונקציונליים של hiPSC-CMs, שהם בעלי חשיבות רבה ביישום hiPSC-CMs לקראת מודלים של מחלות, בדיקת קרדיוטוקסיות הנגרמת על ידי תרופות ורפואה מדויקת. כאן אנו מפרטים מערך של מבחנים פונקציונליים כדי להעריך את התכונות הפונקציונליות של hiPSC-CMs, כולל מדידת התכווצות, פוטנציאל שדה, פוטנציאל פעולה וטיפול בסידן (Ca2+) (איור 1).

Protocol

1. הכנת מדיה ופתרונות הכן מדיום תחזוקה hiPSC-CM על ידי ערבוב בקבוק 10 מ”ל של תוסף 50x B27 ו 500 מ”ל של RPMI 1640 בינוני. יש לאחסן את המדיום בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס ולהשתמש בו תוך חודש. יש לאזן את הטמפרטורה הבינונית עד לטמפרטורת החדר (RT) לפני השימוש. הכן מדיום זריעה hiPSC-CM על ידי ערבוב 20 מ”…

Representative Results

פרוטוקול זה מתאר כיצד למדוד את תנועת הכיווץ, פוטנציאל השדה, פוטנציאל הפעולה ו-Ca2+ חולף של hiPSC-CMs. דיאגרמה סכמטית הכוללת עיכול אנזימטי, זריעת תאים, תחזוקה והולכת בדיקה תפקודית מוצגת באיור 1. היווצרות החד-שכבתית hiPSC-CM נחוצה למדידת תנועת ההתכווצות (איור 2B). ע?…

Discussion

טכנולוגיית iPSC אנושית התפתחה כפלטפורמה רבת עוצמה למידול מחלות ובדיקת תרופות. כאן נתאר פרוטוקול מפורט למדידת התכווצות hiPSC-CM, פוטנציאל שדה, פוטנציאל פעולה ו-Ca2+ חולף. פרוטוקול זה מספק אפיון מקיף של התכווצות hiPSC-CM ואלקטרופיזיולוגיה. מבחנים פונקציונליים אלה יושמו בפרסומים מרובים מהקבוצה ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לבלייק וו על הגהת כתב היד. עבודה זו נתמכה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות (NIH) R01 HL113006, R01 HL141371, R01 HL163680, R01 HL141851, U01FD005978, ונאס”א NNX16A069A (JCW), ו 872244 מלגת פוסט-דוקטורט של AHA (GMP).

Materials

35 mm glass bottom dish with 20 mm micro-well #1.5 cover glass Cellvis D35-20-1.5-N Patch clamp
50x B27 supplements Life Technologies 17504-044 hiPSC-CM culture medium
6-well culture plate E & K Scientific EK-27160 hiPSC-CM culture
96-well flat clear bottom black polystyrene TC-treated microplates Corning 3603 Contraction motion measurement
Accutase Sigma-Aldrich A6964 Enzymatic dissociation
Axion's Integrated Studio (AxIS) Axion Biosystems navigator software
Borosilicate glass capillaries Harvard Apparatus BF 100-50-10, Patch clamp
CaCl2 1 M in H2O Sigma-Aldrich 21115 Tyrode’s solution
Cell counting chamber slides ThermoFisher Scientific C10228 Cell counting
CytoView 48-well MEA plates Axion Biosystems M768-tMEA-48B MEA
DMEM/F12 Gibco/Life Technologies 12634028 Extracellular matrix medium
DPBS, no calcium, no magnesium Fisher Scientific 14-190-250
EGTA Sigma-Aldrich E3889 Intracellular pipette solution
EPC 10 USB patch clamp amplifier Warner Instruments 89-5000 Patch clamp
Fura-2, AM, cell permeant ThermoFisher Scientific F1221 Ca2+ transient measurement
Glucose Sigma-Aldrich G8270 Tyrode’s solution
HEPES Sigma-Aldrich H3375 Tyrode’s solution
hiPSCs Stanford Cardiovascular Institute iPSC Biobank
KCl Sigma-Aldrich 529552 Tyrode’s solution
KnockOut Serum Replacement ThermoFisher Scientific 10828-028 hiPSC-CM seeding medium
KOH 8 M Sigma-Aldrich P4494 Intracellular pipette solution
Lambda DG 4 Sutter Instrument Company Ca2+ transient measurement; ultra-high-speed wavelength switching light source
Luna-FL automated fluorescence cell counter WISBIOMED LB-L20001 Cell counting
Maestro Pro MEA system Axion Biosystems MEA
Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix Corning 356231 Extracellular matrix medium
MgATP Sigma-Aldrich A9187 Intracellular pipette solution
MgCl2 Sigma-Aldrich M8266 Tyrode’s solution
NaCl Sigma-Aldrich S9888 Tyrode’s solution
NaOH 10 M Sigma-Aldrich 72068 Tyrode’s solution
NIS Elements AR
Pluronic F-127 (20% Solution in DMSO) ThermoFisher Scientific P3000MP Ca2+ transient measurement
RPMI 1640 medium Life Technologies 11875-119 hiPSC-CM culture medium
Sony SI8000 Cell Motion Imaging System Sony Biotechnology Contraction motion measurement
Sutter Micropipette puller Sutter Instruments P-97 Patch clamp
Trypan blue stain Life Technologies T10282 Cell counting

Riferimenti

  1. Wouters, O. J., McKee, M., Luyten, J. Estimated research and development investment needed to bring a new medicine to market, 2009-2018. Journal of the American Medical Association. 323 (9), 844-853 (2020).
  2. Pang, L., et al. Workshop report: FDA workshop on improving cardiotoxicity assessment with human-relevant platforms. Circulation Research. 125 (9), 855-867 (2019).
  3. Mamoshina, P., Rodriguez, B., Bueno-Orovio, A. Toward a broader view of mechanisms of drug cardiotoxicity. Cell Reports Medicine. 2 (3), 100216 (2021).
  4. Paik, D. T., Chandy, M., Wu, J. C. Patient and disease-specific induced pluripotent stem cells for discovery of personalized cardiovascular drugs and therapeutics. Pharmacological Reviews. 72 (1), 320-342 (2020).
  5. Kaese, S., Verheule, S. Cardiac electrophysiology in mice: a matter of size. Frontiers in Physiology. 3, 345 (2012).
  6. Clark, W. A., Chizzonite, R. A., Everett, A. W., Rabinowitz, M., Zak, R. Species correlations between cardiac isomyosins. A comparison of electrophoretic and immunological properties. Journal of Biological Chemistry. 257 (10), 5449-5454 (1982).
  7. Werfel, S., et al. Characterization of circular RNAs in human, mouse, and rat hearts. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 98, 103-107 (2016).
  8. Burridge, P. W., et al. Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature Methods. 11 (8), 855-860 (2014).
  9. Sharma, A., et al. Derivation of highly purified cardiomyocytes from human induced pluripotent stem cells using small molecule-modulated differentiation and subsequent glucose starvation. Journal of Visualized Experiments. (97), e52628 (2015).
  10. Itzhaki, I., et al. Modelling the long QT syndrome with induced pluripotent stem cells. Nature. 471 (7337), 225-229 (2011).
  11. Lan, F., et al. Abnormal calcium handling properties underlie familial hypertrophic cardiomyopathy pathology in patient-specific induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 12 (1), 101-113 (2013).
  12. Wu, H., et al. Modelling diastolic dysfunction in induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes from hypertrophic cardiomyopathy patients. European Heart Journal. 40 (45), 3685-3695 (2019).
  13. Lee, J., et al. Activation of PDGF pathway links LMNA mutation to dilated cardiomyopathy. Nature. 572 (7769), 335-340 (2019).
  14. Sun, N., et al. Patient-specific induced pluripotent stem cells as a model for familial dilated cardiomyopathy. Science Translational Medicine. 4 (130), (2012).
  15. Chen, S. N., et al. Activation of PDGFRA signaling contributes to filamin C-related arrhythmogenic cardiomyopathy. Science Advances. 8 (8), (2022).
  16. Sharma, A., et al. High-throughput screening of tyrosine kinase inhibitor cardiotoxicity with human induced pluripotent stem cells. Science Translational Medicine. 9 (377), (2017).
  17. Burridge, P. W., et al. Human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes recapitulate the predilection of breast cancer patients to doxorubicin-induced cardiotoxicity. Nature Medicine. 22 (5), 547-556 (2016).
  18. Kitani, T., et al. Human-induced pluripotent stem cell model of trastuzumab-induced cardiac dysfunction in patients with breast cancer. Circulation. 139 (21), 2451-2465 (2019).
  19. Matsa, E., et al. Transcriptome profiling of patient-specific human iPSC-cardiomyocytes predicts individual drug safety and efficacy responses in vitro. Cell Stem Cell. 19 (3), 311-325 (2016).
  20. Stillitano, F., et al. Modeling susceptibility to drug-induced long QT with a panel of subject-specific induced pluripotent stem cells. Elife. 6, (2017).
  21. Zhang, J. Z., et al. Protocol to measure contraction, calcium, and action potential in human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. STAR Protocols. 2 (4), 100859 (2021).
  22. Blinova, K., et al. International multisite study of human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes for drug proarrhythmic potential assessment. Cell Reports. 24 (13), 3582-3592 (2018).
  23. Greensmith, D. J. Ca analysis: an Excel based program for the analysis of intracellular calcium transients including multiple, simultaneous regression analysis. Computer Methods and Programs in Biomedicine. 113 (1), 241-250 (2014).
  24. Ma, N., et al. Determining the pathogenicity of a genomic variant of uncertain significance using CRISPR/Cas9 and human-induced pluripotent stem cells. Circulation. 138 (23), 2666-2681 (2018).
  25. Lam, C. K., et al. Identifying the transcriptome signatures of calcium channel blockers in human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Circulation Research. 125 (2), 212-222 (2019).
  26. Seeger, T., et al. A premature termination codon mutation in MYBPC3 causes hypertrophic cardiomyopathy via chronic activation of nonsense-mediated decay. Circulation. 139 (6), 799-811 (2019).
  27. Zhang, J. Z., et al. Effects of cryopreservation on human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes for assessing drug safety response profiles. Stem Cell Reports. 16 (1), 168-181 (2021).
  28. Yu, B., Zhao, S. R., Yan, C. D., Zhang, M., Wu, J. C. Deconvoluting the cells of the human heart with iPSC technology: cell types, protocols, and uses. Current Cardiology Reports. 24 (5), 487-496 (2022).
  29. Thomas, D., Cunningham, N. J., Shenoy, S., Wu, J. C. Human-induced pluripotent stem cells in cardiovascular research: current approaches in cardiac differentiation, maturation strategies, and scalable production. Cardiovascular Research. 118 (1), 20-36 (2022).
  30. Zhu, R., et al. Physical developmental cues for the maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Stem Cell Research & Therapy. 5 (5), 117 (2014).
  31. Feyen, D. A. M., et al. Metabolic maturation media improve physiological function of human iPSC-derived cardiomyocytes. Cell Reports. 32 (3), 107925 (2020).
  32. Gintant, G., et al. Use of human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes in preclinical cancer drug cardiotoxicity testing: a scientific statement from the American Heart Association. Circulation Research. 125 (10), 75-92 (2019).
  33. Kussauer, S., David, R., Lemcke, H. hiPSCs Derived cardiac cells for drug and toxicity screening and disease modeling: what micro- electrode-array analyses can tell us. Cells. 8 (11), (2019).
  34. Ng, C. A., et al. High-throughput phenotyping of heteromeric human ether-a-go-go-related gene potassium channel variants can discriminate pathogenic from rare benign variants. Heart Rhythm. 17 (3), 492-500 (2020).
  35. Obergrussberger, A., Friis, S., Bruggemann, A., Fertig, N. Automated patch clamp in drug discovery: major breakthroughs and innovation in the last decade. Expert Opinion on Drug Discovery. 16 (1), 1-5 (2021).
  36. Kozek, K. A., et al. High-throughput discovery of trafficking-deficient variants in the cardiac potassium channel KV11.1. Heart Rhythm. 17 (12), 2180-2189 (2020).
  37. Heyne, H. O., et al. Predicting functional effects of missense variants in voltage-gated sodium and calcium channels. Science Translational Medicine. 12 (556), (2020).
  38. Li, W., et al. Establishment of an automated patch-clamp platform for electrophysiological and pharmacological evaluation of hiPSC-CMs. Stem Cell Research. 41, 101662 (2019).
  39. Li, W., Luo, X., Ulbricht, Y., Guan, K. Blebbistatin protects iPSC-CMs from hypercontraction and facilitates automated patch-clamp based electrophysiological study. Stem Cell Research. 56, 102565 (2021).
  40. Milligan, C. J., Möller, C., Gamper, N. . Ion Channels: Methods and Protocols. , 171-187 (2013).
check_url/it/64265?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Zhao, S. R., Mondéjar-Parreño, G., Li, D., Shen, M., Wu, J. C. Technical Applications of Microelectrode Array and Patch Clamp Recordings on Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (186), e64265, doi:10.3791/64265 (2022).

View Video